תוספי שומנים לאריכות ימים וניתוח שעתוק גנים ב - Caenorhabditis elegans
Summary
הפרוטוקול הנוכחי מתאר שיטות לתוספי שומנים בתרביות נוזליות ובתרביות על צלחת עבור Caenorhabditis elegans, יחד עם מחקרי אורך וניתוח שעתוק גנים מכמות גדולה או כמה תולעים ורקמות תולעים.
Abstract
הזדקנות היא תהליך מורכב המאופיין בשינויים פיזיולוגיים מתקדמים הנובעים הן מתרומה סביבתית והן מתרומה גנטית. ליפידים חיוניים למרכיבים מבניים של קרומי התאים, לאגירת אנרגיה וכמולקולות איתות. ויסות חילוף החומרים והאיתותים של השומנים חיוני להפעלת מסלולים ברורים לאריכות ימים. התולעת העגולה Caenorhabditis elegans היא אורגניזם מצוין וחזק לנתח את התרומה של מטבוליזם שומנים ואיתות בוויסות אריכות ימים. מחקרים רבים תיארו כיצד תוספי תזונה של מולקולות שומנים ספציפיות יכולים להאריך את תוחלת החיים של C. elegans ; עם זאת, הבדלים קלים בתנאי התוספים עלולים לגרום לבעיות שכפול בקרב מדענים במעבדות שונות. כאן, דווח על שתי שיטות מפורטות של תוספי תזונה עבור C. elegans המשתמשות בתוספי שומנים עם חיידקים שנזרעו על צלחות או תרחיף חיידקים בתרבית נוזלית. כמו כן מסופקים כאן הפרטים לביצוע בדיקות תוחלת חיים עם תוספת שומנים לכל החיים וניתוח qRT-PCR באמצעות ליזאט תולעת שלמה או רקמות מנותקות שמקורן בכמה תולעים. באמצעות שילוב של מחקרי אורך ומחקרי שעתוק על תוספי שומנים, מבחני ההזנה מספקים גישות מהימנות לנתח כיצד שומנים משפיעים על אריכות ימים והזדקנות בריאה. מתודולוגיה זו יכולה להיות מותאמת גם לגישות סינון תזונתיות שונות כדי להעריך שינויים בתת-קבוצה של תעתיקים באמצעות מספר קטן של רקמות מנותחות או כמה בעלי חיים.
Introduction
שומנים
ליפידים הם מולקולות הידרופוביות או אמפיפתיות קטנות המסיסות בממיסים אורגניים אך אינן מסיסות במים 1,2. מולקולות ליפידים נפרדות נבדלות זו מזו בהתבסס על מספר הפחמן הכלול בשרשראות שלהן, מיקומן, מספר הקשרים הכפולים והמבנים הקשורים אליהן, כולל גליצרול או פוספטים. ליפידים ממלאים תפקידים מכריעים בתוך ובין תאים שונים כדי לווסת תפקודים אורגניזמיים, כולל דו-שכבתיות של ממברנות, אספקת אגירת אנרגיה ופעולה כמולקולות איתות 3,4.
ראשית, שומנים הם מרכיבים מבניים של ממברנות ביולוגיות, כולל קרום הפלזמה והממברנות התת-תאיות התוך-תאיות המפרידות בין התאים הפנימיים לבין הסביבה החוץ-תאית. שנית, שומנים הם הצורה העיקרית של אגירת אנרגיה בבעלי חוליות וחסרי חוליות. שומנים ניטרליים, כולל טריאצילגליצרולים, מאוחסנים לתקופה ממושכת ברקמות שונות, כולל ברקמת השומן. בנמטודה Caenorhabditis elegans, המעי הוא איבר אחסון השומן המטבולי העיקרי; תפקידו אינו מעורב רק בעיכול וספיגה של חומרים מזינים, אלא גם בתהליך של דטוקסיפיקציה, הדומה לפעילות של הפטוציטים של יונקים. רקמות אגירת שומן אחרות כוללות את הנבט, שבו שומנים חיוניים להתפתחות ביציות, ואת היפודרמיס, המורכב מתאי אפידרמיס דמויי עור 3,5. שלישית, בשנים האחרונות, עדויות נוספות מצביעות על כך שליפידים הם מולקולות איתות חזקות המעורבות באיתות תוך-תאי וחוץ-תאי על-ידי פעולה ישירה על מגוון קולטנים, כולל קולטנים מצומדים לחלבון G וקולטנים גרעיניים, או בעקיפין באמצעות אפנון נזילות הממברנה או שינויים לאחר תרגום 6,7,8,9 . מחקרים נוספים ימשיכו להבהיר את המנגנונים המולקולריים הבסיסיים של איתות שומנים בקידום אריכות ימים ותוחלת חיים.
אורגניזמי מודל חשובים כדי לענות על שאלות ביולוגיות ספציפיות שהן מורכבות מכדי לחקור בבני אדם. לדוגמה, התולעת העגולה C. elegans היא מודל מצוין לביצוע ניתוח גנטי לניתוח תהליכים ביולוגיים הרלוונטיים לתזונת האדם ולמחלות10. המסלולים המולקולריים המשומרים ביותר הרלוונטיים לפיזיולוגיה האנושית, לרקמות מורכבות, לדפוסי התנהגות ולשפע של כלים למניפולציה גנטית הופכים את C. elegans לאורגניזם מודל יוצא דופן11. לדוגמה, C. elegans מצוין בהעברת בדיקות גנטיות לזיהוי גנים ספציפיים לפנוטיפ, כמו גם בבדיקות גנטיות הפוכות ברחבי הגנום באמצעות הפרעת RNA12.
במעבדות, הנמטודות גדלות על צלחות אגר פטרי שנזרעו עם מדשאה של חיידקי Escherichia coli, המספקות מקרונוטריאנטים כגון חלבונים, פחמימות וחומצות שומן רוויות ובלתי רוויות כמקורות אנרגיה ואבני בניין, ומיקרונוטריאנטים כגון קו-פקטורים וויטמינים13. בדומה ליונקים, נמטודות מסנתזות מולקולות של חומצות שומן הן מחומצה פלמיטית והן מחומצה סטארית (מולקולות רוויות של 16 פחמן ו-18 פחמן, בהתאמה) שהן רוויות ברצף ומוארכות למגוון חומצות שומן חד-בלתי רוויות (MUFAs) וחומצות שומן רב-בלתי רוויות (PUFAs)14,15,16,17,18. באופן מעניין, C. elegans מסוגל לסינתזה דה נובו של כל חומצות השומן ואנזימי הליבה הנדרשים המעורבים בביוסינתזה של חומצות שומן, דה-סטורציה והתארכות, מה שמקל על הסינתזה של PUFAsארוכי שרשרת 19. בשונה ממינים אחרים של בעלי חיים, C. elegans יכולים להמיר חומצות שומן 18-פחמן ו-20-פחמן ω-6 לחומצות שומן ω-3 עם אנזימי ω-3 דסטוראז משלהם. בנוסף, לתולעים יש דסטוראז Δ12 המזרז היווצרות חומצה לינולאית (LA) מחומצה אולאית (OA, 18:1)20,21. רוב בעלי החיים או הצמחים חסרים גם Δ12 וגם ω-3 desaturases ולכן מסתמכים על צריכה תזונתית של ω-6 ו- ω-3 כדי להשיג את ה- PUFA שלהם, בעוד ש– C. elegans אינו זקוק לחומצות שומן תזונתיות22. מוטנטים מבודדים ללא אנזימי דסטוראז פונקציונליים שימשו לחקר התפקודים של חומצות שומן ספציפיות בתהליכים ביולוגיים שונים, כולל רבייה, גדילה, אריכות ימים והעברה עצבית. ניתן לטפל בהשפעה של חומצות שומן בודדות על מסלולים ביולוגיים ספציפיים באמצעות גישה גנטית ותוספי תזונה16,17,23. עד כה, מחקר השומנים התמקד באפיון גנים המעורבים בסינתזה של שומנים, פירוק, אחסון ופירוק במצבים נוירולוגיים והתפתחותיים24. עם זאת, התפקידים של שומנים בוויסות אריכות ימים רק מתחילים להתגלות.
איתות שומנים בוויסות תוחלת החיים
ליפידים ממלאים תפקידים מכריעים בוויסות תוחלת החיים על ידי הפעלת מפלי איתות תאיים ברקמות ובסוגי תאים שונים. מחקרים אחרונים הדגישו את התפקידים הפעילים של שומנים בוויסות שעתוק ותקשורת בין תאים באמצעות חלבונים קושרי שומנים או זיהוי קולטני ממברנה25. בנוסף, תוספי שומנים תזונתיים מציעים כלי מצוין לנתח כיצד חילוף החומרים של שומנים משפיע על תוחלת החיים של C. elegans. הוכח כי MUFAs ו-PUFA שונים מקדמים אריכות ימים על-ידי הפעלת גורמי שעתוק26,27.
מודלים של אריכות ימים, כולל איתות אינסולין/IGF-1 ואבלציה של תאים מבשרי נבט, קשורים למסלול הביוסינתזה של MUFA, ותוספי MUFA, כולל חומצה אולאית, חומצה פלמיטולאית וציס-vaccenic, מספיקים כדי להאריך את תוחלת החיים של C. elegans 26. למרות שאפקט אריכות הימים שהוענק על ידי ממשל MUFA דורש חקירה נוספת, המנגנון הבסיסי צפוי להיות מתווך על ידי גורם השעתוק SKN-1/Nrf2, שהוא מפעיל מרכזי של תגובת עקה חמצונית ותקנה לאריכות ימים28,29. בקרב MUFAs, קבוצה מסוימת של אתנולמידים אציליים שומניים הנקראים N-acylethanolamines (NAEs) ממלאת תפקידים מכריעים במנגנונים שונים כולל דלקת, אלרגיות, למידה, זיכרון ומטבוליזם של אנרגיה30. במיוחד, מולקולת השומנים המכונה אולאויל-אתנול-אמיד (OEA) זוהתה כרגולטור חיובי של אריכות ימים על ידי קידום הטרנסלוקציה של החלבון קושר השומנים 8 (LBP-8) לתוך הגרעין כדי להפעיל את קולטני ההורמון הגרעיני NHR-49 ו- NHR-807. תוספת של האנלוגי OEA KDS-5104 מספיקה להארכת תוחלת החיים, וגורמת לביטוי של גנים המעורבים בתגובות עקה חמצונית ובחמצון β מיטוכונדריאלי 7,8.
יחד עם זאת, תפקידם של PUFAs נקשר גם לרגולציה של אריכות ימים. מתן PUFA ω-3 חומצת שומן α-חומצה לינולנית (ALA) מקדם אריכות ימים על ידי הפעלת NHR-49/PPARα, גורמי שעתוק SKN-1/NRF וגרימת חמצון β מיטוכונדריאלי31. באופן מעניין, מוצרים מחומצנים של ALA, המכונים אוקסיליפינים, מפעילים את SKN-1/NRF, מה שמרמז על כך שגם PUFA וגם הנגזרות החמצוניות שלהם יכולים להעניק יתרונות לאריכות ימים23. תוספת של חומצת שומן ω-6 חומצה ארכידונית (AA) וחומצה דיהומו-γ-לינולנית (DGLA) מאריכה את תוחלת החיים באמצעות הפעלת אוטופגיה, מקדמת בקרת איכות חלבון וכתוצאה מכך פוגעת בצברי חלבון מבוזבזים ורעילים27,32. לאחרונה, ויסות איתות תאי לא אוטונומי המתווך על ידי החלבון קושר השומנים 3 (LBP-3) ו-DGLA הוכח כחיוני לקידום אריכות ימים על-ידי שליחת אותות היקפיים לנוירונים, מה שמרמז על תפקיד ארוך טווח של מולקולות שומנים בתקשורת בין רקמות ברמות מערכתיות33. המחקר הנוכחי מדווח על כל שלב לביצוע תוספי שומנים עם חיידקים שנזרעו על צלחות או תרחיף חיידקים בתרבית נוזלית. מתודולוגיות אלה משמשות להערכת תוחלת חיים וניתוח שעתוק, תוך שימוש בתכולת גוף שלמה או ברקמות מנותקות שמקורן בכמה תולעים. ניתן להתאים את הטכניקות הבאות למגוון מחקרים תזונתיים ולהציע כלי תקף לנתח כיצד חילוף החומרים של השומנים משפיע על אריכות ימים והזדקנות בריאה.
Protocol
Representative Results
Discussion
תוספי שומנים שימשו במחקרי הזדקנות כדי להבהיר את ההשפעה הישירה של מיני שומנים מסוימים על הזדקנות בריאה 6,7,23,26,27,31. עם זאת, הליך נטילת תוספי שומנים יכול להיות מאתגר, וכל חוסר עקביות בי?…
Disclosures
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
אנו מודים ל- P. Svay על התמיכה בתחזוקה. עבודה זו נתמכה על ידי מענקי NIH R01AG045183 (MCW), R01AT009050 (MCW), R01AG062257 (MCW), DP1DK113644 (MCW), קרן מארס אוף דימס (MCW), קרן וולש (MCW), חוקר HHMI (M.C.W.) ועמית קדם-דוקטורט (M.S.) של NIH T32 ES027801. חלק מהזנים סופקו על ידי CGC, הממומן על ידי משרד תוכניות תשתית המחקר של NIH (P40 OD010440).
Materials
| 1.5 mL Pestle | Genesee Scientific | 93-165P15 | For worm grinding with Trizol |
| Agarose | Sigma | A9639-500G | |
| AmfiRivert cDNA Synthesis Platinum Master Mix | GenDEPOT | R5600 | For reverse transcription from bulk worm samples |
| Applied Biosystems QuanStudio 3 Real-Time PCR | ThermoFisher | A28567 | For qRT-PCR |
| Benchmark Scientific StripSpin 12 Microcentrifuge | Benchmark Scientific | C1248 | For spin down PCR tubes |
| Branson 450 Digital Sonifier, w/ 1/8" tip | Branson Ultrasonic Corporation | 100-132-888R | |
| Chloroform | Fisher Scientific | C298-500 | |
| Cholesterol | Sigma | C8503-25G | |
| Dimethyl sulfoxide (DMSO) | Sigma | D8418-100ML | |
| Eppendorf 5424 R centrifuge | Eppendorf | 22620444R | For RNA extraction |
| Eppendorf vapo protect mastercycler pro | Eppendorf | 950030010 | For reverse transcription |
| Ethanol, Absolute (200 Proof) | Fisher Scientific | BP2818-500 | |
| Greiner Bio-One CELLSTAR, 12 W Plate | Neta Scientific | 665180 | 12-well plates for licuid feeding |
| Greiner Bio-One Petri Dish, Ps, 100 x 20 mm | Neta Scientific | 664161 | For bacterial LB plates and worm 10-cm NGM plates |
| Greiner Bio-One Petri Dish, Ps, 60 x 15 mm | Neta Scientific | 628161 | For worm6-cm NGM plates |
| Invitrogen nuclease-free water | ThermoFisher | AM9937 | |
| Isoproanol | Sigma | PX1835-2 | |
| Levamisole hydrochloride | VWR | SPCML1054 | |
| lipl-4Tg | MCW Lab | N/A | Transgenic C. elegans |
| lipl-4Tg;fat-3(wa22) | MCW Lab | N/A | Transgenic C. elegans |
| Luria Broth Base | ThermoFisher | 12795-084 | |
| Magnesium sulfate (MgSO4) | Sigma | M2643-500G | |
| MicroAmp EnduraPlate Optical 96-Well Fast Clear Reaction Plate with Barcode | ThermoFisher | 4483354 | 96-well qPCR plate |
| MicroAmp Optical Adhesive Film | Applied BioSystem | 4311971 | For sealing the 96-well qPCR plate |
| Milli-Q Advantage A10 Water Purification System | Sigma | Z00Q0V0WW | Deionized water used to make all reagents, including buffer and cultural media, unless specified as nuclease-free water in the protocol |
| N2 | Caenorhabditis Genetics Center | N/A | C. elegans wild isolate |
| NanoDrop ND-1000 Spectrophotometer | ThermoFisher | N/A | For measuring RNA concentration |
| OP50 | Caenorhabditis Genetics Center | N/A | Bacteria used as C. elegans food |
| Potasium phosphate dibasic trihydrate (K2HPO4·3H2O) | Sigma | P5504-1KG | |
| Potasium phosphate monobasic (KH2PO4) | Sigma | P0662-2.5KG | |
| Power SYBR Green cells-to-Ct kit | ThermoFisher | 4402953 | For reverse transcription and qPCR from a few worms or worm tissue |
| Power SYBR Green Master Mix | ThermoFisher | 4367659 | For qPCR from bulk worm samples |
| Pure Bright germicidal ultra bleach | KIK International LLC. | 59647210143 | 6% house bleach For worm egg preparation |
| Pyrex spot plate with nine depressions | Sigma | CLS722085-18EA | Watch glass for dissecting the worms |
| RNaseZap RNase Decontamination Solution | ThermoFisher | AM9780 | |
| Sodium cloride (NaCl) | Sigma | S7653-1KG | |
| Sodium hydroxide (NaOH) | Sigma | SX0590-3 | |
| Sodium phosphate dibasic heptahydrate (Na2HPO4·7H2O) | Sigma | S9390-1KG | |
| Thermo Sorvall Legend Mach 1.6R Centrifuge | Thermo | 7500-4337 | For bacteria collection |
| Thermo Sorvall ST 8 centrifuge | Thermo | 7500-7200 | For worm egg preparation |
| TRIzol Reagent | TheroFisher | 15596018 | RNA extraction reagent |
| Turbo DNA-free kit | ThermoFisher | AM1907 | For removing DNA contamination in RNA extractions |
| Vortexer 59 | Denville Scientific INV | S7030 | |
| VWR Disposable Pellet Mixers and Cordless Motor | VWR | 47747-370 | For worm grinding with Trizol |
| VWR Kinetic Energy 26 Joules Mini Centrifuge C1413 V-115 | VWR | N/A | For worm collection. Discontinued model, a similar one available at VWR with Cat# 76269-064 |
| Worm picker | WormStuff | 59-AWP |
References
- Fahy, E., et al. Update of the LIPID MAPS comprehensive classification system for lipids 1. Journal of Lipid Research. 50, 9-14 (2009).
- Liebisch, G., et al. Update on LIPID MAPS classification, nomenclature, and shorthand notation for MS-derived lipid structures. Journal of Lipid Research. 61 (12), 1539-1555 (2020).
- Mutlu, A. S., Duffy, J., Wang, M. C. Lipid metabolism and lipid signals in aging and longevity. Developmental Cell. 56 (10), 1394-1407 (2021).
- Kimura, T., Jennings, W., Epand, R. M. Roles of specific lipid species in the cell and their molecular mechanism. Progress in Lipid Research. 62, 75-92 (2016).
- Duffy, J., Mutlu, A. S., Wang, M. C., Olsen, A., Gill, M. Lipid Metabolism, Lipid Signalling and Longevity. Ageing: Lessons from C. elegans. Healthy Ageing and Longevity. , 307-329 (2017).
- Lesa, G. M., et al. Long chain poly-unsaturated fatty acids are required for efficient neurotransmission in C. elegans. Journal of Cell Science. 116 (24), 4965-4975 (2003).
- Folick, A., et al. Lysosomal signaling molecules regulate longevity in Caenorhabditis elegans. Science. 347 (6217), 83-86 (2015).
- Ramachandran, P. V., et al. Lysosomal signaling promotes longevity by adjusting mitochondrial activity. Developmental Cell. 48 (5), 685-696 (2019).
- Byrne, E. F. X., et al. Structural basis of Smoothened regulation by its extracellular domains. Nature. 535 (7613), 517-522 (2016).
- Corsi, A. K., Wightman, B., Chalfie, M. A. Transparent window into biology: a primer on Caenorhabditis elegans. 유전학. 200 (2), 387-407 (2015).
- Nigon, V. M., Félix, M. -. A. History of research on C. elegans and other free-living nematodes as model organisms. WormBook. , 1-84 (2017).
- Kutscher, L. M., Shaham, S. Forward and reverse mutagenesis in C. elegans. WormBook. , 1-26 (2014).
- Brooks, K. K., Liang, B., Watts, J. L. The influence of bacterial diet on fat storage in C. elegans. PloS ONE. 4 (10), 7545 (2009).
- Brock, T. J., Browse, J., Watts, J. L. Fatty acid desaturation and the regulation of adiposity in Caenorhabditis elegans. 유전학. 176 (2), 865-875 (2007).
- Brock, T. J., Browse, J., Watts, J. L. Genetic regulation of unsaturated fatty acid composition in C. elegans. PloS Genetics. 2 (7), 108 (2006).
- Watts, J. L., Phillips, E., Griffing, K. R., Browse, J. Deficiencies in C20 poly-unsaturated fatty acids cause behavioral and developmental defects in Caenorhabditis elegans fat-3 mutants. 유전학. 163 (2), 581-589 (2003).
- Watts, J. L., Browse, J. Genetic dissection of poly-unsaturated fatty acid synthesis in Caenorhabditis elegans. Proceedings of the National Academy of Sciences. 99 (9), 5854-5859 (2002).
- Watts, J. L., Browse, J. A. Palmitoyl-CoA-specific Δ9 fatty acid desaturase from Caenorhabditis elegans. Biochemical and Biophysical Research Communications. 272 (1), 263-269 (2000).
- Watts, J. L. Fat synthesis and adiposity regulation in Caenorhabditis elegans. Trends in Endocrinology & Metabolism. 20 (2), 58-65 (2009).
- Peyou-Ndi, M. M., Watts, J. L., Browse, J. Identification and characterization of an animal Δ12 fatty acid desaturase gene by heterologous expression in Saccharomyces cerevisiae. Archives of Biochemistry and Biophysics. 376 (2), 399-408 (2000).
- Spychalla, J. P., Kinney, A. J., Browse, J. Identification of an animal ω-3 fatty acid desaturase by heterologous expression in Arabidopsis. Proceedings of the National Academy of Sciences. 94 (4), 1142-1147 (1997).
- Watts, J. L., Browse, J. Isolation and characterization of a Δ5-fatty acid desaturase from Caenorhabditis elegans. Archives of Biochemistry and Biophysics. 362 (1), 175-182 (1999).
- Deline, M. L., Vrablik, T. L., Watts, J. L. Dietary supplementation of polyunsaturated fatty acids in Caenorhabditis elegans. Journal of Visualized Experiments. (81), e50879 (2013).
- Estes, R. E., Lin, B., Khera, A., Davis, M. Y. Lipid metabolism influence on neurodegenerative disease progression: is the vehicle as important as the cargo. Frontiers in Molecular Neuroscience. 14, 788695 (2021).
- Sunshine, H., Iruela-Arispe, M. L. Membrane lipids and cell signaling. Current Opinion in Lipidology. 28 (5), 408-413 (2017).
- Han, S., et al. Mono-unsaturated fatty acids link H3K4me3 modifiers to C. elegans lifespan. Nature. 544 (7649), 185-190 (2017).
- O’Rourke, E. J., Kuballa, P., Xavier, R., Ruvkun, G. ω-6 Poly-unsaturated fatty acids extend life span through the activation of autophagy. Genes & Development. 27 (4), 429-440 (2013).
- Steinbaugh, M. J., et al. Lipid-mediated regulation of SKN-1/Nrf in response to germ cell absence. eLife. 4, 07836 (2015).
- Blackwell, T. K., Steinbaugh, M. J., Hourihan, J. M., Ewald, C. Y., Isik, M. SKN-1/Nrf, stress responses, and aging in Caenorhabditis elegans. Free Radical Biology and Medicine. 88, 290-301 (2015).
- Ezzili, C., Otrubova, K., Boger, D. L. Fatty acid amide signaling molecules. Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters. 20 (20), 5959-5968 (2010).
- Qi, W., et al. The ω-3 fatty acid α-linolenic acid extends Caenorhabditis elegans lifespan via NHR-49/PPARα and oxidation to oxylipins. Aging Cell. 16 (5), 1125-1135 (2017).
- Shemesh, N., Meshnik, L., Shpigel, N., Ben-Zvi, A. Dietary-induced signals that activate the gonadal longevity pathway during development regulate a proteostasis switch in Caenorhabditis elegans adulthood. Frontiers in Molecular Neuroscience. 10, 254 (2017).
- Savini, M., et al. Lysosome lipid signalling from the periphery to neurons regulates longevity. Nature Cell Biology. 24 (6), 906-916 (2022).
- Stiernagle, T. Maintenance of C. elegans. WormBook. , (2006).
- Wang, M. C., O’Rourke, E. J., Ruvkun, G. Fat metabolism links germline stem cells and longevity in C. elegans. Science. 322 (5903), 957-960 (2008).
- Jacob, T. C., Kaplan, J. M. The EGL-21 carboxypeptidase E facilitates acetylcholine release at Caenorhabditis elegans neuromuscular junctions. The Journal of Neuroscience. 23 (6), 2122-2130 (2003).
- Kass, J., Jacob, T. C., Kim, P., Kaplan, J. M. The EGL-3 proprotein convertase regulates mechanosensory responses of Caenorhabditis elegans. The Journal of Neuroscience. 21 (23), 9265-9272 (2001).
- Bael, S. V., et al. Mass spectrometric evidence for neuropeptide-amidating enzymes in Caenorhabditis elegans. Journal of Biological Chemistry. 293 (16), 6052-6063 (2018).
- Fu, D., et al. In vivo metabolic fingerprinting of neutral lipids with hyperspectral stimulated Raman scattering microscopy. Journal of the American Chemical Society. 136 (24), 8820-8828 (2014).
