Summary

Lipidtilskudd for lang levetid og gentranskripsjonsanalyse i Caenorhabditis elegans

Published: December 09, 2022
doi:

Summary

Den nåværende protokollen beskriver lipidtilskuddsmetoder i flytende og on-plate kulturer for Caenorhabditis elegans, kombinert med longitudinelle studier og gentranskripsjonsanalyse fra bulk eller noen få ormer og ormvev.

Abstract

Aldring er en kompleks prosess preget av progressive fysiologiske endringer som følge av både miljømessige og genetiske bidrag. Lipider er avgjørende for å utgjøre strukturelle komponenter i cellemembraner, lagre energi og som signalmolekyler. Regulering av lipidmetabolisme og signalering er viktig for å aktivere forskjellige levetidsveier. Rundorm Caenorhabditis elegans er en utmerket og kraftig organisme for å dissekere bidraget av lipidmetabolisme og signalering i levetidsregulering. Flere forskningsstudier har beskrevet hvordan dietttilskudd av spesifikke lipidmolekyler kan forlenge C. elegans levetid; Imidlertid kan mindre forskjeller i tilskuddsbetingelsene forårsake reproduserbarhetsproblemer blant forskere i forskjellige laboratorier. Her rapporteres to detaljerte tilskuddsmetoder for C. elegans ved bruk av lipidtilskudd enten med bakterier frøet på plater eller bakteriell suspensjon i flytende kultur. Også gitt her er detaljene for å utføre levetidsanalyser med livslang lipidtilskudd og qRT-PCR-analyse ved hjelp av et helt ormlysat eller dissekert vev avledet fra noen få ormer. Ved hjelp av en kombinasjon av longitudinelle studier og transkripsjonsundersøkelser ved lipidtilskudd, gir fôringsanalysene pålitelige tilnærminger for å dissekere hvordan lipider påvirker levetid og sunn aldring. Denne metoden kan også tilpasses ulike ernæringsmessige screeningtilnærminger for å vurdere endringer i en delmengde av transkripsjoner ved hjelp av enten et lite antall dissekerte vev eller noen få dyr.

Introduction

Lipider
Lipider er små hydrofobe eller amfipatiske molekyler som er oppløselige i organiske løsningsmidler, men uoppløselige i vann 1,2. Distinkte lipidmolekyler skiller seg fra hverandre basert på antall karboner inneholdt i deres kjeder, plassering, antall dobbeltbindinger og bundne strukturer, inkludert glyserol eller fosfater. Lipider spiller avgjørende roller i og på tvers av forskjellige celler for å regulere organismefunksjoner, inkludert konstituering av membran dobbeltlag, gir energilagring og fungerer som signalmolekyler 3,4.

For det første er lipider strukturelle komponenter av biologiske membraner, inkludert plasmamembranen og intracellulære subcellulære membraner som deler de indre rommene fra det ekstracellulære miljøet. For det andre er lipider den viktigste formen for energilagring hos virveldyr og virvelløse dyr. Nøytrale lipider, inkludert triacylglyceroler, lagres i lengre tid i forskjellige vev, inkludert i fettvev. I nematoden Caenorhabditis elegans er tarmen det viktigste metabolske fettlagringsorganet; Dens funksjon er ikke bare involvert i fordøyelse og absorpsjon av næringsstoffer, men også i avgiftningsprosessen, som ligner aktiviteten til pattedyrs hepatocytter. Andre fettlagringsvev inkluderer kimlinjen, der lipider er essensielle for å utvikle oocytter, og hypodermis, som består av hudlignende epidermale celler 3,5. For det tredje har flere bevis de siste årene antydet at lipider er kraftige signalmolekyler involvert i intra- og ekstracellulær signalering ved å virke direkte på en rekke reseptorer, inkludert G-proteinkoblede og nukleære reseptorer, eller indirekte via membranfluiditetsmodulasjon eller posttranslasjonelle modifikasjoner 6,7,8,9 . Videre studier vil fortsette å belyse de underliggende molekylære mekanismene for lipidsignalering for å fremme lang levetid og helsespan.

Modellorganismer er viktige for å løse spesifikke biologiske spørsmål som er for komplekse til å studere hos mennesker. For eksempel er rundorm C. elegans en utmerket modell for å gjennomføre genetisk analyse for å dissekere biologiske prosesser som er relevante for menneskelig ernæring og sykdom10. De svært konserverte molekylære veiene som er relevante for menneskelig fysiologi, komplekse vev, atferdsmønstre og rikelig genetiske manipulasjonsverktøy gjør C. elegans til en bemerkelsesverdig modellorganisme11. For eksempel er C. elegans utmerket i å videresende genetiske skjermer for å identifisere fenotypespesifikke gener, så vel som i genom-brede omvendte genetiske skjermer via RNA-interferens12.

I laboratorier dyrkes nematodene på agar petriplater frøet med en plen av Escherichia coli-bakterier, som gir makronæringsstoffer som proteiner, karbohydrater og mettede og umettede fettsyrer som energikilder og byggesteiner, og mikronæringsstoffer som kofaktorer og vitaminer13. I likhet med pattedyr syntetiserer nematoder fettsyremolekyler fra både palmitinsyre og stearinsyre (henholdsvis mettet 16-karbon og 18-karbonmolekyler) som er sekvensielt desaturert og langstrakt til en rekke mono-umettede fettsyrer (MUFA) og poly-umettede fettsyrer (PUFA) 14,15,16,17,18. Interessant nok er C. elegans i stand til de novo syntese av alle nødvendige fettsyrer og kjerneenzymer involvert i fettsyrebiosyntese, desaturasjon og forlengelse, noe som letter syntesen av langkjedede PUFA19. Forskjellig fra andre dyrearter, kan C. elegans konvertere 18-karbon og 20-karbon ω-6 fettsyrer til ω-3 fettsyrer med egne ω-3 desaturase enzymer. I tillegg har ormer en Δ12 desaturase som katalyserer dannelsen av linolsyre (LA) fra oljesyre (OA, 18: 1) 20,21. De fleste dyr eller planter mangler både Δ12 og ω-3 desaturaser og er dermed avhengige av diettinntak på ω-6 og ω-3 for å få sine PUFAer, mens C. elegans ikke krever diettfettsyrer22. Isolerte mutanter som mangler funksjonelle desaturase enzymer har blitt brukt til å studere funksjonene til spesifikke fettsyrer i forskjellige biologiske prosesser, inkludert reproduksjon, vekst, lang levetid og nevrotransmisjon. Effekten av individuelle fettsyrer på spesifikke biologiske veier kan løses ved hjelp av både en genetisk tilnærming og dietttilskudd16,17,23. Hittil har lipidforskning fokusert på å karakterisere gener involvert i lipidsyntese, nedbrytning, lagring og nedbrytning i nevrologiske og utviklingsmessige forhold24. Imidlertid begynner lipidens roller i levetidsregulering bare å bli avslørt.

Lipidsignalering i levetidsregulering
Lipider spiller avgjørende roller i levetidsregulering ved å aktivere cellulære signalkaskader i forskjellige vev og celletyper. Nylige studier har fremhevet lipidens aktive roller i modulering av transkripsjon og cellecellekommunikasjon via lipidbindende proteiner eller anerkjennelse av membranreseptorer25. I tillegg tilbyr kosttilskudd lipidtilskudd et utmerket verktøy for å dissekere hvordan lipidmetabolismen påvirker levetiden i C. elegans. Distinkte MUFAer og PUFAer har vist seg å fremme lang levetid ved å aktivere transkripsjonsfaktorer26,27.

Levetidsmodeller, inkludert insulin / IGF-1-signalering og ablasjon av kimlinjeforløperceller, er assosiert med MUFA-biosynteseveien, og MUFA-tilskudd, inkludert oljesyre, palmitolsyre og cis-vaccenic, er tilstrekkelig til å forlenge C. elegans levetid26. Selv om levetidseffekten gitt av MUFA-administrasjonen krever ytterligere undersøkelser, vil den underliggende mekanismen sannsynligvis bli formidlet av SKN-1/Nrf2-transkripsjonsfaktoren, som er en nøkkelaktivator for oksidativ stressrespons og levetidsregulering28,29. Blant MUFA spiller en bestemt klasse av fete acyletanolamider kalt N-acyletanolaminer (NAE) avgjørende roller i forskjellige mekanismer, inkludert betennelse, allergier, læring, minne og energimetabolisme30. Spesielt har lipidmolekylet kjent som oleoyletanolamid (OEA) blitt identifisert som en positiv regulator av lang levetid ved å fremme translokasjonen av det lipidbindende proteinet 8 (LBP-8) inn i kjernen for å aktivere nukleære hormonreseptorer NHR-49 og NHR-807. Tilskudd av OEA-analogen KDS-5104 er tilstrekkelig til å forlenge levetiden, og induserer uttrykket av gener involvert i oksidative stressresponser og mitokondriell β-oksidasjon 7,8.

Samtidig har PUFA-rollen også vært knyttet til levetidsregulering. Administrering av PUFA ω-3 fettsyre α-linolensyre (ALA) fremmer lang levetid ved å aktivere transkripsjonsfaktorene NHR-49/PPARα, SKN-1/NRF og indusere mitokondriell β-oksidasjon31. Interessant nok aktiverer peroksiderte produkter av ALA, referert til som oksylipiner, SKN-1 / NRF, noe som tyder på at både PUFA og deres oksidative derivater kan gi levetidsfordeler23. Tilskudd av ω-6 fettsyre arakidonsyre (AA) og dihomo-γ-linolensyre (DGLA) forlenger levetiden via autofagiaktivering, fremmer proteinkvalitetskontroll og resulterer i nedbrytning av bortkastede og giftige proteinaggregater27,32. Mer nylig har en celle-ikke-autonom signalregulering mediert av lipidbindende protein 3 (LBP-3) og DGLA vist seg å være avgjørende for å fremme lang levetid ved å sende perifere signaler til nevroner, noe som tyder på en langdistanserolle av lipidmolekyler i kommunikasjon mellom vev på systemiske nivåer33. Den foreliggende studien rapporterer hvert trinn for å utføre lipidtilskudd med bakterier frøet på plater eller bakteriell suspensjon i flytende kultur. Disse metodene brukes til å vurdere levetid og transkripsjonsanalyse, ved hjelp av helkroppsinnhold eller dissekert vev avledet fra noen få ormer. Følgende teknikker kan tilpasses en rekke ernæringsstudier og tilbyr et gyldig verktøy for å dissekere hvordan lipidmetabolismen påvirker lang levetid og sunn aldring.

Protocol

Figur 1 viser et skjema for lipidfôring ved hjelp av forskjellige eksperimentelle innstillinger. 1. Fremstilling av lipidbetingede bakterier Forbered bakteriell fortynning diettbegrensning (BDR) baseløsning ved å oppløse 5,85 g NaCl, 1,0 g K 2 HPO 4 og6,0 g KH2PO4 (se materialtabell) i 999 ml avionisert vann. Juster pH til 6,0 med 0,5 M KOH, og filtrer deretter gjennom et 0…

Representative Results

Validering av transkripsjonsendringer ved bruk av noen få hele ormer ved lipidtilskuddFor å undersøke om protokollen for å trekke ut og retrotranskribere RNA til cDNA fra noen få hele ormer er reproduserbar og sammenlignbar med dataene fra bulkormer, ble en langlivet ormstamme som overuttrykker lysosomalsyrelipase lipl-4 i tarmen ansatt 7,8,33,35. Transkripsjo…

Discussion

Lipidtilskudd har blitt brukt i aldringsforskning for å belyse den direkte effekten av visse lipidarter på sunn aldring 6,7,23,26,27,31. Imidlertid kan lipidtilskuddsprosedyren være utfordrende, og enhver inkonsekvens mellom eksperimenter kan forårsake ikke-reproduserbare resultater. Her er den første detaljerte trinnvis…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi takker P. Svay for vedlikeholdsstøtte. Dette arbeidet ble støttet av NIH-tilskudd R01AG045183 (MCW), R01AT009050 (MCW), R01AG062257 (MCW), DP1DK113644 (MCW), March of Dimes Foundation (MCW), Welch Foundation (MCW), HHMI investigator (M.C.W.) og NIH T32 ES027801 pre-doctoral student fellow (MS). Noen stammer ble levert av CGC, som er finansiert av NIH Office of Research Infrastructure Programs (P40 OD010440).

Materials

1.5 mL Pestle Genesee Scientific 93-165P15 For worm grinding with Trizol
Agarose Sigma A9639-500G
AmfiRivert cDNA Synthesis Platinum Master Mix GenDEPOT R5600 For reverse transcription from bulk worm samples
Applied Biosystems QuanStudio 3 Real-Time PCR ThermoFisher A28567 For qRT-PCR
Benchmark Scientific StripSpin 12 Microcentrifuge Benchmark Scientific C1248 For spin down PCR tubes
Branson 450 Digital Sonifier, w/ 1/8" tip Branson Ultrasonic Corporation 100-132-888R
Chloroform Fisher Scientific C298-500
Cholesterol Sigma C8503-25G
Dimethyl sulfoxide (DMSO) Sigma D8418-100ML
Eppendorf 5424 R centrifuge Eppendorf 22620444R For RNA extraction
Eppendorf vapo protect mastercycler pro Eppendorf 950030010 For reverse transcription
Ethanol, Absolute (200 Proof) Fisher Scientific BP2818-500
Greiner Bio-One CELLSTAR, 12 W Plate Neta Scientific 665180 12-well plates for licuid feeding
Greiner Bio-One Petri Dish, Ps, 100 x 20 mm Neta Scientific 664161 For bacterial LB plates and worm 10-cm NGM plates
Greiner Bio-One Petri Dish, Ps, 60 x 15 mm Neta Scientific 628161 For worm6-cm NGM plates
Invitrogen nuclease-free water ThermoFisher AM9937
Isoproanol Sigma PX1835-2
Levamisole hydrochloride VWR SPCML1054
lipl-4Tg MCW Lab N/A Transgenic C. elegans
lipl-4Tg;fat-3(wa22) MCW Lab N/A Transgenic C. elegans
Luria Broth Base ThermoFisher 12795-084
Magnesium sulfate (MgSO4) Sigma M2643-500G
MicroAmp EnduraPlate Optical 96-Well Fast Clear Reaction Plate with Barcode ThermoFisher 4483354 96-well qPCR plate
MicroAmp Optical Adhesive Film Applied BioSystem 4311971 For sealing the 96-well qPCR plate
Milli-Q Advantage A10 Water Purification System Sigma Z00Q0V0WW Deionized water used to make all reagents, including buffer and cultural media, unless specified as nuclease-free water in the protocol
N2 Caenorhabditis Genetics Center N/A C. elegans wild isolate
NanoDrop ND-1000 Spectrophotometer ThermoFisher N/A For measuring RNA concentration
OP50 Caenorhabditis Genetics Center N/A Bacteria used as C. elegans food
Potasium phosphate dibasic trihydrate (K2HPO4·3H2O) Sigma P5504-1KG
Potasium phosphate monobasic (KH2PO4) Sigma P0662-2.5KG
Power SYBR Green cells-to-Ct kit ThermoFisher 4402953 For reverse transcription and qPCR from a few worms or worm tissue
Power SYBR Green Master Mix ThermoFisher 4367659 For qPCR from bulk worm samples
Pure Bright germicidal ultra bleach  KIK International LLC. 59647210143 6% house bleach For worm egg preparation
Pyrex spot plate with nine depressions Sigma CLS722085-18EA Watch glass for dissecting the worms
RNaseZap RNase Decontamination Solution ThermoFisher AM9780
Sodium cloride (NaCl) Sigma S7653-1KG
Sodium hydroxide (NaOH) Sigma SX0590-3
Sodium phosphate dibasic heptahydrate (Na2HPO4·7H2O) Sigma S9390-1KG
Thermo Sorvall Legend Mach 1.6R Centrifuge Thermo 7500-4337 For bacteria collection
Thermo Sorvall ST 8 centrifuge Thermo 7500-7200 For worm egg preparation
TRIzol Reagent TheroFisher 15596018 RNA extraction reagent
Turbo DNA-free kit ThermoFisher AM1907 For removing DNA contamination in RNA extractions
Vortexer 59 Denville Scientific INV S7030
VWR Disposable Pellet Mixers and Cordless Motor VWR 47747-370 For worm grinding with Trizol
VWR Kinetic Energy 26 Joules Mini Centrifuge C1413 V-115 VWR N/A For worm collection. Discontinued model, a similar one available at VWR with Cat# 76269-064
Worm picker WormStuff 59-AWP

References

  1. Fahy, E., et al. Update of the LIPID MAPS comprehensive classification system for lipids 1. Journal of Lipid Research. 50, 9-14 (2009).
  2. Liebisch, G., et al. Update on LIPID MAPS classification, nomenclature, and shorthand notation for MS-derived lipid structures. Journal of Lipid Research. 61 (12), 1539-1555 (2020).
  3. Mutlu, A. S., Duffy, J., Wang, M. C. Lipid metabolism and lipid signals in aging and longevity. Developmental Cell. 56 (10), 1394-1407 (2021).
  4. Kimura, T., Jennings, W., Epand, R. M. Roles of specific lipid species in the cell and their molecular mechanism. Progress in Lipid Research. 62, 75-92 (2016).
  5. Duffy, J., Mutlu, A. S., Wang, M. C., Olsen, A., Gill, M. Lipid Metabolism, Lipid Signalling and Longevity. Ageing: Lessons from C. elegans. Healthy Ageing and Longevity. , 307-329 (2017).
  6. Lesa, G. M., et al. Long chain poly-unsaturated fatty acids are required for efficient neurotransmission in C. elegans. Journal of Cell Science. 116 (24), 4965-4975 (2003).
  7. Folick, A., et al. Lysosomal signaling molecules regulate longevity in Caenorhabditis elegans. Science. 347 (6217), 83-86 (2015).
  8. Ramachandran, P. V., et al. Lysosomal signaling promotes longevity by adjusting mitochondrial activity. Developmental Cell. 48 (5), 685-696 (2019).
  9. Byrne, E. F. X., et al. Structural basis of Smoothened regulation by its extracellular domains. Nature. 535 (7613), 517-522 (2016).
  10. Corsi, A. K., Wightman, B., Chalfie, M. A. Transparent window into biology: a primer on Caenorhabditis elegans. 유전학. 200 (2), 387-407 (2015).
  11. Nigon, V. M., Félix, M. -. A. History of research on C. elegans and other free-living nematodes as model organisms. WormBook. , 1-84 (2017).
  12. Kutscher, L. M., Shaham, S. Forward and reverse mutagenesis in C. elegans. WormBook. , 1-26 (2014).
  13. Brooks, K. K., Liang, B., Watts, J. L. The influence of bacterial diet on fat storage in C. elegans. PloS ONE. 4 (10), 7545 (2009).
  14. Brock, T. J., Browse, J., Watts, J. L. Fatty acid desaturation and the regulation of adiposity in Caenorhabditis elegans. 유전학. 176 (2), 865-875 (2007).
  15. Brock, T. J., Browse, J., Watts, J. L. Genetic regulation of unsaturated fatty acid composition in C. elegans. PloS Genetics. 2 (7), 108 (2006).
  16. Watts, J. L., Phillips, E., Griffing, K. R., Browse, J. Deficiencies in C20 poly-unsaturated fatty acids cause behavioral and developmental defects in Caenorhabditis elegans fat-3 mutants. 유전학. 163 (2), 581-589 (2003).
  17. Watts, J. L., Browse, J. Genetic dissection of poly-unsaturated fatty acid synthesis in Caenorhabditis elegans. Proceedings of the National Academy of Sciences. 99 (9), 5854-5859 (2002).
  18. Watts, J. L., Browse, J. A. Palmitoyl-CoA-specific Δ9 fatty acid desaturase from Caenorhabditis elegans. Biochemical and Biophysical Research Communications. 272 (1), 263-269 (2000).
  19. Watts, J. L. Fat synthesis and adiposity regulation in Caenorhabditis elegans. Trends in Endocrinology & Metabolism. 20 (2), 58-65 (2009).
  20. Peyou-Ndi, M. M., Watts, J. L., Browse, J. Identification and characterization of an animal Δ12 fatty acid desaturase gene by heterologous expression in Saccharomyces cerevisiae. Archives of Biochemistry and Biophysics. 376 (2), 399-408 (2000).
  21. Spychalla, J. P., Kinney, A. J., Browse, J. Identification of an animal ω-3 fatty acid desaturase by heterologous expression in Arabidopsis. Proceedings of the National Academy of Sciences. 94 (4), 1142-1147 (1997).
  22. Watts, J. L., Browse, J. Isolation and characterization of a Δ5-fatty acid desaturase from Caenorhabditis elegans. Archives of Biochemistry and Biophysics. 362 (1), 175-182 (1999).
  23. Deline, M. L., Vrablik, T. L., Watts, J. L. Dietary supplementation of polyunsaturated fatty acids in Caenorhabditis elegans. Journal of Visualized Experiments. (81), e50879 (2013).
  24. Estes, R. E., Lin, B., Khera, A., Davis, M. Y. Lipid metabolism influence on neurodegenerative disease progression: is the vehicle as important as the cargo. Frontiers in Molecular Neuroscience. 14, 788695 (2021).
  25. Sunshine, H., Iruela-Arispe, M. L. Membrane lipids and cell signaling. Current Opinion in Lipidology. 28 (5), 408-413 (2017).
  26. Han, S., et al. Mono-unsaturated fatty acids link H3K4me3 modifiers to C. elegans lifespan. Nature. 544 (7649), 185-190 (2017).
  27. O’Rourke, E. J., Kuballa, P., Xavier, R., Ruvkun, G. ω-6 Poly-unsaturated fatty acids extend life span through the activation of autophagy. Genes & Development. 27 (4), 429-440 (2013).
  28. Steinbaugh, M. J., et al. Lipid-mediated regulation of SKN-1/Nrf in response to germ cell absence. eLife. 4, 07836 (2015).
  29. Blackwell, T. K., Steinbaugh, M. J., Hourihan, J. M., Ewald, C. Y., Isik, M. SKN-1/Nrf, stress responses, and aging in Caenorhabditis elegans. Free Radical Biology and Medicine. 88, 290-301 (2015).
  30. Ezzili, C., Otrubova, K., Boger, D. L. Fatty acid amide signaling molecules. Bioorganic & Medicinal Chemistry Letters. 20 (20), 5959-5968 (2010).
  31. Qi, W., et al. The ω-3 fatty acid α-linolenic acid extends Caenorhabditis elegans lifespan via NHR-49/PPARα and oxidation to oxylipins. Aging Cell. 16 (5), 1125-1135 (2017).
  32. Shemesh, N., Meshnik, L., Shpigel, N., Ben-Zvi, A. Dietary-induced signals that activate the gonadal longevity pathway during development regulate a proteostasis switch in Caenorhabditis elegans adulthood. Frontiers in Molecular Neuroscience. 10, 254 (2017).
  33. Savini, M., et al. Lysosome lipid signalling from the periphery to neurons regulates longevity. Nature Cell Biology. 24 (6), 906-916 (2022).
  34. Stiernagle, T. Maintenance of C. elegans. WormBook. , (2006).
  35. Wang, M. C., O’Rourke, E. J., Ruvkun, G. Fat metabolism links germline stem cells and longevity in C. elegans. Science. 322 (5903), 957-960 (2008).
  36. Jacob, T. C., Kaplan, J. M. The EGL-21 carboxypeptidase E facilitates acetylcholine release at Caenorhabditis elegans neuromuscular junctions. The Journal of Neuroscience. 23 (6), 2122-2130 (2003).
  37. Kass, J., Jacob, T. C., Kim, P., Kaplan, J. M. The EGL-3 proprotein convertase regulates mechanosensory responses of Caenorhabditis elegans. The Journal of Neuroscience. 21 (23), 9265-9272 (2001).
  38. Bael, S. V., et al. Mass spectrometric evidence for neuropeptide-amidating enzymes in Caenorhabditis elegans. Journal of Biological Chemistry. 293 (16), 6052-6063 (2018).
  39. Fu, D., et al. In vivo metabolic fingerprinting of neutral lipids with hyperspectral stimulated Raman scattering microscopy. Journal of the American Chemical Society. 136 (24), 8820-8828 (2014).
check_url/kr/64092?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Savini, M., Lee, Y., Wang, M. C., Zhou, Y. Lipid Supplementation for Longevity and Gene Transcriptional Analysis in Caenorhabditis elegans. J. Vis. Exp. (190), e64092, doi:10.3791/64092 (2022).

View Video