Summary

Yaprak Kesici Karıncaların (Atta) Laboratuvar Koşullarında Toplanması ve Uzun Süreli Bakımı

Published: August 30, 2022
doi:

Summary

Burada, sağlıklı Atta (Hymenoptera: Formicidae) karınca kolonilerini laboratuvar koşullarında başarılı bir şekilde toplamak ve sürdürmek için bir protokol açıklanmaktadır. Ek olarak, farklı yuva tipleri ve konfigürasyonları olası deneysel prosedürlerle birlikte detaylandırılmıştır.

Abstract

Karıncalar, gezegendeki en biyolojik çeşitlilik gösteren hayvan gruplarından biridir ve farklı ortamlarda yaşarlar. Karınca kolonilerinin kontrollü ortamlarda korunması, uygulamalı araştırmalara katkıda bulunabilecek biyolojilerinin zenginleştirilmiş bir şekilde anlaşılmasını sağlar. Bu uygulama genellikle Atta karıncaları gibi ekonomik kayba neden olan türlerin nüfus kontrol çalışmalarında kullanılır. Karşılıklı mantarlarını yetiştirmek için, bu yaprak kesici karıncalar yaprak toplar ve bunun için Amerika kıtasında yaygın olarak dağılmış tarımsal zararlılar olarak kabul edilir. Son derece sosyal olarak organize olmuşlar ve çeşitli odalardan oluşan ayrıntılı yeraltı yuvalarında yaşıyorlar. Kontrollü bir ortamda bakımları, burada açıklanan çeşitli prosedürlerin ve sık bakımın günlük rutinine bağlıdır. Üreme mevsimi boyunca kraliçelerin toplanmasıyla başlar (yani, evlilik uçuşu), daha sonra ayrı ayrı plastik kaplara aktarılır. Kraliçelerin yüksek ölüm oranı nedeniyle, evlilik uçuşundan yaklaşık 6 ay sonra, gelişmiş mantar değnekleri olan yeni başlayan yuvalar kazıldığında, elle toplandığında ve plastik kaplara yerleştirildiğinde ikinci bir toplama gerçekleştirilebilir. Laboratuvarda, yapraklar günlük olarak kurulan kolonilere verilir ve karınca tarafından üretilen atıklar, kalan kuru bitki materyali ile birlikte haftalık olarak uzaklaştırılır. Mantar bahçesi büyümeye devam ettikçe, koloniler deneysel amaca göre farklı kaplara aktarılır. Yaprak kesen karınca kolonileri, doğada bu böcekler tarafından inşa edilen fonksiyonel odalarla organizasyon sistemini temsil eden birbirine bağlı kaplara yerleştirilir. Bu kurulum, atık miktarı, mantar bahçe sağlığı ve işçilerin ve kraliçenin davranışları gibi faktörleri izlemek için idealdir. Kolaylaştırılmış veri toplama ve daha ayrıntılı gözlemler, karınca kolonilerini kontrollü koşullarda tutmanın en büyük avantajı olarak kabul edilir.

Introduction

Karıncalar, çoğu karasal ortam üzerinde etkisi olan çeşitli bir grup birey oluşturur1. Verimli dağıtıcılar 2,3,4, avcılar5 ve ekosistem mühendisleri 6,7,8,9,10 olarak hareket ederler ve doğal ekosistemler üzerindeki önemlerini ve ekolojik başarılarını vurgularlar. Tüm karınca türleri eusosyal böcekler olarak sınıflandırılır; Bununla birlikte, toplumsal örgütlenmeleri farklı tür grupları arasında, yani iş bölümü sistemleri, işlevsel gruplar, bireyler arasındaki iletişim, yem örgütlenmesi, koloni temeli ve üreme süreci arasında büyük farklılıklar gösterir11. Çok çeşitli bir grup olarak, çeşitli gıda kaynaklarına ve özel beslenme davranışlarına başvururlar. Nitekim, tarım sadece insan uygarlığı için değil, aynı zamanda karınca türleri için de büyük bir adımdı. Yaklaşık 55 ila 65 Ma önce12, attine karıncaları mantarları kültürlemeye ve onları neredeyse özel bir diyete dahil etmeye başladı. O kadar uzmanlaştılar ki, bir bireyin diğeri olmadan hayatta kalamayacağı simbiyoz olarak sınıflandırılan katı, bağımlı ve zorunlu etkileşimler geliştirdiler.

Düşük mantar yetiştiriciliği yapan karıncalar, karşılıklı mantarlarını büyütmek için çürüyen yaprak parçaları gibi ölü organik maddeleri toplar ve işler; daha yüksek mantar yetiştiren karıncalar taze bitki materyali toplarken, en başarılı simbiyotik doğal sistemlerden birini oluşturur13. Bu son derece uzmanlaşmış tarım tekniği, yeni bir niş yakalamalarına izin verdi. Daha yüksek attinli karıncalar, dört geçerli cinsten oluşan 19 Ma (15-24 Ma) ve 18 Ma (14-22 Ma)14,15,16 arasında uyanan monofiletik bir grup olan yaprak kesici karıncaları içerir: Atta Fabricius, Acromyrmex Mayr, Amoimyrmex Cristiano ve Pseudoatta Gallardo. Yaprak kesici karıncalar tarafından gerçekleştirilen yaprak kesici tarım sistemi, türetilmiş tarım sistemlerinden evrimleşmiştir17. Bu türlerin çoğu, yalnızca karşılıklı mantar türleri Leucoagaricus gongylophorus Singer18’den (Leucocoprinus gongylophorus Heim 19 olarak da adlandırılır) yararlanır ve önemli bir evrimsel geçişe işaret eder 11. Mantar çeşitleri, orijinal yuvalardan yavrulara dikey olarak iletilir, bu da klonal olarak yayıldıklarını düşündürür20.

Dikkat çekici bir şekilde, Atta toplumları, çevrelerinde muazzam öneme sahip ve mirmekologlar için büyük ilgi gören karmaşık bir organizasyon yapısı geliştirdiler. Nüfusları, çoğu vurgulanmış bir polimorfizm, yani farklı boyut ve anatomik morfoloji sergileyen steril kadın işçiler olan milyonlarca kişiden oluşabilir. Popülasyon, yaş, fizyolojik durum, morfolojik tip, davranışlar ve kolonideki uzmanlaşmış faaliyetlere göre kastlarla ayırt edilir21. İşçiler bahçıvanlara ve hemşirelere, yuva içi genelcilere, toplayıcılara ve ekskavatörlere ve savunuculara veya askerlere ayrımcılığa uğrayabilir21. Bu organizasyon, görevlerin işbirliği içinde yerine getirilmesine ve son derece yapılandırılmış kolektif davranışlar üretebilen, çevresel rahatsızlıklara verimli bir şekilde yanıt vermelerini sağlayan kendi kendini organize eden bir sisteme izin verir22.

Nüfusun yenilenmesinin rolü, yaşadığı sürece tek bir kraliçe (yani tek eşli) tarafından oynanır ve kalıcı üreme kastını oluşturur22. Atta kraliçelerinin 20 yıldan fazla yaşadıkları ve ömürleri boyunca yumurta bıraktıkları bilinmektedir23. Kraliçenin yeri doldurulamaz olduğundan, dayanıklılığı koloninin hayatta kalması için çok önemlidir 13,20,23,24. Yine de, üreme mevsimlerinde yuvada binlerce kanatlı üreme dişi ve erkek bulunabilir, ancak hiçbiri orijinal yuvada kalmaz ve geçici bir kastoluşturur 22. Atta sexdens kolonilerinde, yaklaşık 3.000 üreme dişi ve 14.000 üreme erkeği25 üretilir. Bir koloni cinsel olgunluğa ulaştığında, uygulanmasından yaklaşık 38 ay sonra ortaya çıkar ve söndürülene kadar her yıl tekrarlanır23,25. Yeni Atta kolonileri, bir kraliçenin yeni bir yuvaya başladığı haplometroz yoluyla kurulur.

Çevresel koşullar uygun olduğunda, reprodüktörler evlilik uçuşuna başlamak için yeraltı yuvasını terk ederler. Oluşum dönemi, türlere bağlı olarak Brezilya toprakları boyunca yıl boyunca değişen bölgeye göre farklılık gösterir. Bununla birlikte, olaydan önce yağışlar ve nem yüksekliği26 gibi görünmektedir, bu da toprak nemi22 nedeniyle kazı kolaylaştırma ile ilişkili olabilir. Sıklıkla, evlilik uçuşundan 1-5 hafta önce, üreme bireylerinin ayrılmasını kolaylaştırmak için yuva girişleri ve kanalları genişletilir. Ana kolonilerini terk etmeden önce, kanatlı dişiler, karşılıklı mantarın bir kısmını toplar ve depolar20,27. Uçuş ortasında çoklu çiftleşmeler yapılır ve bir kraliçenin bazı türlerde üç ila sekiz erkek (yani poliandri) tarafından döllenebileceği hesaplanır28, genetik değişkenlik sağlar29. Daha sonra, kraliçeler toprağa ilerler ve kanatlarını çıkardıkları ve ilk yuva odalarını kazdıkları25 bitki örtüsü olmayan veya az olan yerleri tercih ederler. Bu, kraliçelerin yuvanın dışında görülebileceği tek dönemdir. Geçici kastın bireyleri yapay yuvalarda görülmüş olsa da, laboratuvar koşullarında başarılı bir çiftleşme (yani evlilik uçuşu) yapılıp yapılmadığı bilinmemektedir24.

İlk yuva yapısı, koloninin 6 saatten 8 saate kadar23,25 saat sürebilen en önemli dönemine karşılık gelir. Şu anda, kraliçe ilk odada kendini kapatır ve birkaç gün içinde yumurtlama başlar. İlk yumurtalar, kraliçenin yetersizlik yaptığı miselile beslenir ve koloninin mantar bahçesinin başlangıcını işaretler. İlk larvalar yaklaşık 25 gün22’de ortaya çıkar ve neredeyse ilk ayın sonunda, koloni, olgunlaşmamışların (yumurtalar, larvalar ve pupalar) yuvalandığı çoğalan bir mantar paspasından ve ilk yavrularını izole olarak yetiştiren kraliçeden oluşur23. Yumurtalar aynı zamanda ilk larvaların besin kaynağıdır ve kraliçe13 tarafından çok tüketilir. Ek olarak, kraliçe kendini yağ gövdesi rezervleri ve artık kullanılmayan kanat kaslarını katabolize ederek sürdürür13. İlk mantar kültürü, koloninin hayatta kalması gelişimine bağlı olduğu için tüketilmez ve bu süre zarfında kraliçe onu dışkı sıvısı13 ile döllenir. Ortaya çıktıktan günler sonra, ilk işçiler yuva girişini açar ve yuvanın13’ün hemen yakınında bir yiyecek arama faaliyetine başlar. Mantar bahçesinin substratı olarak toplanan malzemeyi içeriyorlar, bu da şimdi işçiler için yiyecek olarak hizmet veriyor13,22. Mantar kültürüne eklenmeden önce, işçiler tarafından taşınan bitki materyali küçük parçalar halinde kesilir ve dışkı sıvısı13 ile nemlendirilir. Karıncalar, büyümesini arttırmak ve kontrol etmek için mantar inokulumunu manipüle eder, bu da bahçenin 13,22,25 şartlandırılmasında uzmanlaşmış büyük toprak kazılmış odaların bölünmesine hizmet edecektir.

Evlilik uçuşundan yaklaşık 6 ay sonra, A. sexdens yuvaları bir mantar odası ve birkaç kanal içerir. Yaprak kesen karınca yuvalarının yapımındaki büyük uzmanlık, doğal düşmanlara ve olumsuz çevresel faktörlere karşı bir savunma mekanizması olarak çalışır22. Yaprak kesen karıncaların mantar bahçesini parçaladığı ve odalar kurumaya başladığında yüksek neme sahip odalara aktardığı bilinmektedir13. Böylece, yuvanın kazılmasına rağmen, önemli bir enerji maliyetine sahip olmasına rağmen, yatırılan enerji koloninin kendisi için faydalar olarak tersine çevrilir22. Birkaç istisna dışında, Atta türleri ayrıca koloninin atıkları için, çoğunlukla tükenmiş mantar substratından ve ölü karıncaların vücutlarından yapılmış, yuvanın geri kalanından izole edilen ve önemli bir sosyal bağışıklık stratejisi oluşturan özel odalar yapar30. Ek olarak, ayrı bir işçi grubu, diğer bireylerin kirlenmesini önlemek için reddi doğrudan manipüle eder. İşçiler, koloninin ana besin kaynağı olan mantarı beslemek için sürekli olarak beslenirler. Bununla birlikte, parçaları keserken bitki özü ile de beslenebilirler. Bitki materyali, mantar bahçesinin bakımı için özenle seçilir ve yaprak özellikleri ve ekosistemin özellikleri gibi birçok faktörden etkilenir13.

Yaprak kesen karıncaların taze malzeme elde etmek için yiyecek arama stratejisi oldukça karmaşıktır ve yerleşik kolonilerin yüksek hasat talebi ile birleştiğinde, tarımsal üreticiler için önemli ekonomik kayıplara neden olur ve orman restorasyon alanlarını tehlikeye atar22,31. Bu nedenle, bu karıncalar, güney Amerika Birleşik Devletleri’nden kuzeydoğu Arjantin’e kadar 11,13,22,32 arasında karşılaşılabilecekleri çoğu alanda zararlılar olarak kategorize edilebilir. Sorunlu kolonilerin söndürülmesi, bu böceklerin biyolojisinde bulunan bir dizi adaptasyon nedeniyle zordur (yani, sosyal organizasyon, yiyecek arama, mantar yetiştiriciliği, hijyen ve karmaşık yuva yapıları)33. Bu nedenle, nüfus kontrol stratejileri genellikle diğer böcek zararlılarına uygulananlardan farklıdır ve esas olarak çekici kontamine yem tekliflerine başvurur33,34. Bununla birlikte, bu karıncalar hem mantar hem de koloni bireyleri için zararlı maddeleri reddedebildikleri ve ekili alanları tehlikeye atabildikleri için 33, yeni doğal bileşikler ve kontrol alternatifleri sürekli olarak test edilmektedir33,35,36. Deney sonuçları sahada test edilmiş koloniler üzerinde zorlukla izlenemediğinden, ön denemeler kontrollü bir ortamda yürütülür.

Bu nedenle, deneysel protokoller, karıncaların heterojen yaşam tarzını göz önünde bulundurarak, tür düzeyindeki çalışmaları destekleyen ve kolonileri bir karıncanın karmaşık bir süperorganizmanın bir unsuru olduğu operasyonel birimler olarak hesaba katan ilgi gruplarına uyarlanmalıdır11. Atta cinsi ile ilgili bugüne kadar toplanan raporlar, kolonilerin laboratuvar koşullarında başarılı bir şekilde toplanmasını ve sürdürülmesini ve temel ihtiyaçlarının ve genel işlevlerinin kabul edilmesini mümkün kılmıştır. Üreme, koloni kurma ve beslenme davranışları gibi doğal süreçlerine dayanarak, farklı yuva türlerinde kolonilerin uzun vadeli kurulmasına izin veren bir uygulama rutini geliştirilmiştir. Burada, yaprak kesen karıncaları laboratuvarda tutmak için prosedürel bir protokol tanımlanmıştır ve farklı deney amaçları ve bilimsel sosyal yardım ile olası genel araştırmaları vurgulamaktadır.

Protocol

1. Kraliçelerin toplanması İlgilenilen bölgede Atta üreme mevsimi dönemi için literatürde arama yapın. Evlilik uçuşlarının üreme mevsimi oluşumu, sıklığı ve gündüz saatleri, bölgesel iklim koşullarına göre değişmektedir (Tablo 1). Genellikle ilkbaharda gerçekleşmekle birlikte, bu bilgilerin toplamanın gerçekleşmesi amaçlanan yer için toplanması gerekir 37,38,39,40,41,42,43,44,45,46….

Representative Results

Karınca toplama sürecini gösteren bir akış şeması Şekil 6’da gösterilmiştir. Burada, yukarıda açıklanan toplama, bakım ve yuva kurulumları protokolünü kullanarak elde edilen bazı sonuçlar gösterilmiştir. Şekil 6: Yaprak kesen karınca kolonilerinin toplanması için akış şema…

Discussion

Yaprak kesen karınca kolonilerini korumak için burada açıklanan protokol, otuz yılı aşkın bir süredir iddialı ve tekrarlanabilir bir şekilde geliştirilmiş ve uygulanmıştır. Saha koşullarıyla sınırlı olacak araştırmaların geliştirilmesine izin verdi. Böylece, sağlıklı karıncalar ve koloniler, bireysel ve koloni düzeyinde karşılaştırmalı morfoloji, toksikoloji51,52, histoloji 53 ve mikrobiyoloji54,55,56<su…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Mario Autuori (anısına) ve Walter Hugo de Andrade Cunha’ya adanmıştır ve yaprak kesme karınca çalışmalarına büyük katkıda bulunmuştur. São Paulo Eyalet Üniversitesi ve Biyoloji Bilimleri Enstitüsü’nün desteğini kabul ediyoruz. Bu çalışma kısmen Coordenação de Aperfeiçoamento de Pessoal de Nível Superior-Brasil (CAPES) – Finance Code 001, Conselho Nacional de Desenvolvimento Científico e Tecnológico (CNPq), Fundação de Amparo à Pesquisa do Estado de São Paulo (FAPESP) ve Fundação para o Desenvolvimento da UNESP (Fundunesp) tarafından finanse edilmiştir.

Materials

Entomologic forceps N/A N/A N/A
Glass tank N/A N/A Tempered glass, custom made
Hose N/A N/A Transparent, PVC 1/2 Inch x 2,0 mm
Latex gloves Descarpack 550301 N/A
Nitrile gloves Descarpack 433301 N/A
Open arena N/A N/A Polypropylene crate
Plaster pouder N/A N/A Plaster pouder used in construction, must be absorbant
Plastic Containers for collection Prafesta Natural Cód.: 8231/Natural Cód.: 8262 Lidded, transparent , polypropylene
Plastic containers for nests Prafesta Discontinued Polystyrene, hermetic
Teflon Dupont N/A Polytetrafluoroethylene liquid (PTFE Dispertion 30)

References

  1. Wilson, E. O. . The Insect Societies. , (1971).
  2. Ortiz, D. P., Elizalde, L., Pirk, G. I. Role of ants as dispersers of native and exotic seeds in an understudied dryland. Ecological Entomology. 46 (3), 626-636 (2021).
  3. Christianini, A. V., Oliveira, P. S. Birds and ants provide complementary seed dispersal in a neotropical savanna. Journal of Ecology. 98 (3), 573-582 (2010).
  4. Camargo, P. H. S. A., Martins, M. M., Feitosa, R. M., Christianini, A. V. Bird and ant synergy increases the seed dispersal effectiveness of an ornithochoric shrub. Oecologia. 181 (2), 507-518 (2016).
  5. Sanders, D., van Veen, F. J. F. Ecosystem engineering and predation: the multi-trophic impact of two ant species. Journal of Animal Ecology. 80 (3), 569-576 (2011).
  6. Swanson, A. C., et al. Welcome to the Atta world: A framework for understanding the effects of leaf-cutter ants on ecosystem functions. Functional Ecology. 33 (8), 1386-1399 (2019).
  7. Meyer, S. T., et al. Leaf-cutting ants as ecosystem engineers: topsoil and perturbations around Atta cephalotes nests reduce nutrient availability. Ecological Entomology. 38 (5), 497-504 (2013).
  8. Sosa, B., Brazeiro, A. Positive ecosystem engineering effects of the ant Atta vollenweideri on the shrub Grabowskia duplicata. Journal of Vegetation Science. 21 (3), 597-605 (2010).
  9. De Almeida, T., et al. Above- and below-ground effects of an ecosystem engineer ant in Mediterranean dry grasslands. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 287 (1935), 20201840 (2020).
  10. Folgarait, P. J. Ant biodiversity and its relationship to ecosystem functioning: a review. Biodiversity & Conservation. 7 (9), 1221-1244 (1998).
  11. Hölldobler, B., Wilson, E. O. . The Ants. , (1990).
  12. Barrera, C. A., Sosa-Calvo, J., Schultz, T. R., Rabeling, C., Bacci, M. Phylogenomic reconstruction reveals new insights into the evolution and biogeography of Atta leaf-cutting ants (Hymenoptera: Formicidae). Systematic Entomology. 47 (1), 13-35 (2021).
  13. Hölldobler, B., Wilson, E. O. . The Leafcutter Ants: Civilization By Instinct. , (2011).
  14. Branstetter, M. G., et al. Dry habitats were crucibles of domestication in the evolution of agriculture in ants. Proceedings of the Royal Society B: Biological Sciences. 284 (1852), 20170095 (2017).
  15. Solomon, S. E., et al. The molecular phylogenetics of Trachymyrmex Forel ants and their fungal cultivars provide insights into the origin and coevolutionary history of ‘higher-attine’ ant agriculture. Systematic Entomology. 44 (4), 939-956 (2019).
  16. Cristiano, M. P., Cardoso, D. C., Sandoval-Gómez, V. E., Simões-Gomes, F. C. Amoimyrmex Cristiano, Cardoso & Sandoval, gen. nov. (Hymenoptera: Formicidae): a new genus of leaf-cutting ants revealed by multilocus molecular phylogenetic and morphological analyses. Austral Entomology. 59 (4), 643-676 (2020).
  17. Schultz, T. R., Brady, S. G. Major evolutionary transitions in ant agriculture. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 105 (14), 5435-5440 (2008).
  18. Mueller, U. G., et al. Phylogenetic patterns of ant–fungus associations indicate that farming strategies, not only a superior fungal cultivar, explain the ecological success of leafcutter ants. Molecular Ecology. 27 (10), 2414-2434 (2018).
  19. Mueller, U. G., et al. Biogeography of mutualistic fungi cultivated by leafcutter ants. Molecular Ecology. 26 (24), 6921-6937 (2017).
  20. Weber, N. A. The fungus-culturing behavior of ants. American Zoologist. 12 (3), 577-587 (1972).
  21. Wilson, E. O. Caste and division of labor in leaf-cutter ants (Hymenoptera: Formicidae: Atta). Behavioral Ecology and Sociobiology. 7 (2), 157-165 (1980).
  22. Della Lucia, T. M. C. Formigas cortadeiras: da bioecologia ao manejo. Viçosa Editora UFV. 421, (2011).
  23. Autuori, M. Contribuição para o conhecimento da saúva (Atta spp). I. Evolução do sauveiro (Atta sex dens rubolpilosa Forel, 1908). Arquivos do Instituto Biologico Saul Paulo. 12, 197-228 (1941).
  24. Bueno, O. C., Hebling, M. J. A., Schneider, M. O., Pagnocca, F. C. Ocorrência de formas aladas de Atta sexdens rubropilosa Forel (Hymenoptera: Formicidae) em colônias de laboratório. Neotropical Entomology. 31 (3), 469-473 (2002).
  25. Mariconi, F. A. M. Biologo. As Saúvas. , (2021).
  26. Bento, J. M. S. . Condições climáticas para o vôo nupcial e reconhecimento dos indivíduos em Atta sexdens rubropilosa (Hymenoptera: Formicidae). , (1993).
  27. Little, A. E. F., Murakami, T., Mueller, U. G., Currie, C. R. The infrabuccal pellet piles of fungus-growing ants. Naturwissenschaften. 90 (12), 558-562 (2003).
  28. Kerr, W. E. Acasalamento de rainhas com vários machos em duas espécies da tribo Attini. Revista Brasileira de Biologia. 21, 45-48 (1961).
  29. Kerr, W. E. Tendências evolutivas na reprodução dos himenópteros sociais. Arquivos do Museu Nacional. 52, (1962).
  30. Cremer, S., Armitage, S. A. O., Schmid-Hempel, P. Social immunity. Current Biology. 17 (16), 693-702 (2007).
  31. Hernández, J. V., Jaffé, K. Dano econômico causado por populações de formigas Atta laevigata (F. Smith) em plantações de Pinus caribaea (Mor.) e elementos para o manejo da praga. Anais da Sociedade Entomológica do Brasil. 24 (2), 287-298 (1995).
  32. Kempf, W. W. Catálogo abreviado das formigas da Região Neotropical Studia Entomologica. antbase.org. 15, 3 (1972).
  33. Della Lucia, T. M. C., Gandra, L. C., Guedes, R. N. C. Managing leaf-cutting ants: peculiarities, trends and challenges. Pest Management Science. 70 (1), 14-23 (2013).
  34. Boaretto, M. A. C., Forti, L. C. Perspectivas no controle de formigas-cortadeiras. Série Técnica IPEF. 11 (30), 31-46 (1997).
  35. Folgarait, P. J., Goffré, D. Conidiobolus lunulus, a newly discovered entomophthoralean species, pathogenic and specific to leaf-cutter ants. Journal of Invertebrate Pathology. 186, 107685 (2021).
  36. Cardoso, S. R. S., Rodrigues, A., Forti, L. C., Nagamoto, N. S. Pathogenicity of filamentous fungi towards Atta sexdens rubropilosa (Hymenoptera: Formicidae). International Journal of Tropical Insect Science. 42 (2), 1215-1223 (2022).
  37. Ichinose, K., Rinaldi, I., Forti, L. C. Winged leaf-cutting ants on nuptial flights used as transport by Attacobius spiders for dispersal. Ecological Entomology. 29 (5), 628-631 (2004).
  38. Pagnocca, F. C., Rodrigues, A., Nagamoto, N. S., Bacci, M. Yeasts and filamentous fungi carried by the gynes of leaf-cutting ants. Antonie Van Leeuwenhoek. 94 (4), 517-526 (2008).
  39. Attili-Angelis, D., et al. Novel Phialophora species from leaf-cutting ants (tribe Attini). Fungal Diversity. 65 (1), 65-75 (2014).
  40. Delabie, J. H. C., do Nascimento, I. C., Mariano, C. S. F. Estratégias de reprodução e dispersão em formigas attines, com exemplos do sul da Bahia. XIX Congresso Brasileiro de Entomologia. , 16-21 (2002).
  41. Fjerdingstad, E. J., Boomsma, J. J. Variation in size and sperm content of sexuals in the leafcutter ant Atta colombica. Insectes Sociaux. 44 (3), 209-218 (1997).
  42. Currie, C. R., Mueller, U. G., Malloch, D. The agricultural pathology of ant fungus gardens. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 96 (14), 7998-8002 (1999).
  43. Moser, J. C., et al. Eye size and behaviour of day-and night-flying leafcutting ant alates. Journal of Zoology. 264 (1), 69-75 (2004).
  44. Moreira, S. M., Rodrigues, A., Forti, L. C., Nagamoto, N. S. Absence of the parasite Escovopsis in fungus garden pellets carried by gynes of Atta sexdens. Sociobiology. 62 (1), 34-38 (2015).
  45. Arcuri, S. L., et al. Yeasts found on an ephemeral reproductive caste of the leaf-cutting ant Atta sexdens rubropilosa. Antonie Van Leeuwenhoek. 106 (3), 475-487 (2014).
  46. Staab, M., Kleineidam, C. J. Initiation of swarming behavior and synchronization of mating flights in the leaf-cutting ant Atta vollenweideri FOREL, 1893 (Hymenoptera: Formicidae). Myrmecol. News. 19, 93-102 (2014).
  47. Gálvez, D., Chapuisat, M. Immune priming and pathogen resistance in ant queens. Ecology and Evolution. 4 (10), 1761-1767 (2014).
  48. Baer, B., Armitage, S. A. O., Boomsma, J. J. Sperm storage induces an immunity cost in ants. Nature. 441 (7095), 872-875 (2006).
  49. Carlos, A. A. . Semioquímicos e comunicação sonora em formigas cortadeiras (Hymenoptera: Formicidae). , (2013).
  50. Veja um FORMIGUEIRO por DENTRO. Boravê Available from: https://youtu.be/sN99x_Rjf90 (2021)
  51. Ortiz, G., Vieira, A. S., Bueno, O. C. Toxicological and morphological comparative studies of insecticides action in leaf-cutting ants. International Journal of Agriculture Innovations and Research. 6 (3), 516-522 (2017).
  52. Decio, P., Silva-Zacarin, E. C. M., Bueno, F. C., Bueno, O. C. Toxicological and histopathological effects of hydramethylnon on Atta sexdens rubropilosa (Hymenoptera: Formicidae) workers. Micron. 45, 22-31 (2013).
  53. Vieira, A. S., Morgan, E. D., Drijfhout, F. P., Camargo-Mathias, M. I. Chemical composition of metapleural gland secretions of fungus-growing and non-fungus-growing ants. Journal of Chemical Ecology. 38 (10), 1289-1297 (2012).
  54. Vieira, A. S., Ramalho, M. O., Martins, C., Martins, V. G., Bueno, O. C. Microbial communities in different tissues of Atta sexdens rubropilosa leaf-cutting ants. Current Microbiology. 74 (10), 1216-1225 (2017).
  55. Ramalho, M. d. e. O., Martins, C., Morini, M. S. C., Bueno, O. C. What can the bacterial community of Atta sexdens (Linnaeus, 1758) tell us about the habitats in which this ant species evolves. Insects. 11 (6), 332 (2020).
  56. Machado, L. M., et al. Attractivity or repellence: relation between the endophytic fungi of Acalypha, Colocasia and the leaf-cutting ants—Atta sexdens. Advances in Entomology. 9 (2), 85-99 (2021).
  57. Moreira, A., Forti, L. C., Andrade, A. P., Boaretto, M. A., Lopes, J. Nest architecture of Atta laevigata (F. Smith, 1858) (Hymenoptera: Formicidae). Studies on Neotropical Fauna and Environment. 39 (2), 109-116 (2004).
  58. Della Lucia, T. M. C., Moreira, D. D. O., Oliveira, M. A., Araújo, M. S. Perda de peso de rainhas de Atta durante a fundação e o estabelecimento das colônias. Revista Brasileira de Biologia. 55 (4), 533-536 (1995).
  59. Fujihara, R. T., Camargo, R. d. a. S., Forti, L. C. Lipid and energy contents in the bodies of queens of Atta sexdens rubropilosa Forel (Hymenoptera, Formicidae): pre-and post-nuptial flight. Revista Brasileira de Entomologia. 56 (1), 73-75 (2012).
  60. da Silva Camargo, R., Forti, L. C. Queen lipid content and nest growth in the leaf cutting ant (Atta sexdens rubropilosa) (Hymenoptera: Formicidae). Journal of Natural History. 47, 65-73 (2013).
  61. Camargo, R. S., Forti, L. C., Fujihara, R. T., Roces, F. Digging effort in leaf-cutting ant queens (Atta sexdens rubropilosa) and its effects on survival and colony growth during the claustral phase. Insectes Sociaux. 58 (1), 17-22 (2011).
  62. Mota Filho, T. M. M., Garcia, R. D. M., Camargo, R. S., Stefanelli, L. E. P., Forti, L. C. Observations about founding queens (Atta sexdens) and their unusual behavior. International Journal of Agriculture Innovations and Research. 9, 352-357 (2021).
  63. Barcoto, M. O., Pedrosa, F., Bueno, O. C., Rodrigues, A. Pathogenic nature of Syncephalastrum in Atta sexdens rubropilosa fungus gardens. Pest Management Science. 73 (5), 999-1009 (2017).
  64. Silva, A., Bacci, M., Pagnocca, F. C., Bueno, O. C., Hebling, M. J. A. Production of polysaccharidases in different carbon sources by Leucoagaricus gongylophorus Möller (Singer), the symbiotic fungus of the leaf-cutting ant Atta sexdens Linnaeus. Curr. Microbiology. 53 (1), 68-71 (2006).
  65. Majoe, M., Libbrecht, R., Foitzik, S., Nehring, V. Queen loss increases worker survival in leaf-cutting ants under paraquat-induced oxidative stress. Philosophical Transactions of the Royal Society B. 376 (1823), 20190735 (2021).
  66. Della Lucia, T. M. C., Peternelli, E. F. O., Lacerda, F. G., Peternelli, L. A., Moreira, D. D. O. Colony behavior of Atta sexdens rubropilosa (Hymenoptera: Formicidae) in the absence of the queen under laboratory conditions. Behavioural Processes. 64 (1), 49-55 (2003).
  67. Sales, T. A., Toledo, A. M. O., Zimerer, A., Lopes, J. F. S. Foraging for the fungus: why do Acromyrmex subterraneus (Formicidae) queens need to forage during the nest foundation phase. Ecological Entomology. 46 (6), 1364-1372 (2021).
  68. Forti, L. C., et al. Do workers from subspecies Acromyrmex subterraneus prepare leaves and toxic baits in similar ways for their fungus garden. Neotropical Entomology. 49 (1), 12-23 (2020).
  69. Dorigo, A. S., et al. Projeto Primeiros Passos na Ciência: rompendo barreiras sociais e estreitando laços entre a comunidade acadêmica e o ensino médio público. Revista Brasileira de Extensão Universitária. 11 (1), 47-59 (2020).

Play Video

Cite This Article
Nogueira, B. R., de Oliveira, A. A., da Silva, J. P., Bueno, O. C. Collection and Long-Term Maintenance of Leaf-Cutting Ants (Atta) in Laboratory Conditions. J. Vis. Exp. (186), e64154, doi:10.3791/64154 (2022).

View Video