Summary

Skapande av en knäled-på-ett-chip för modellering av ledsjukdomar och testning av läkemedel

Published: January 27, 2023
doi:

Summary

Vi tillhandahåller detaljerade metoder för att generera fyra typer av vävnader från humana mesenkymala stamceller, som används för att rekapitulera brosk, ben, fettkudde och synovium i den mänskliga knäleden. Dessa fyra vävnader är integrerade i en anpassad bioreaktor och anslutna via mikrofluidik, vilket genererar en knäled-på-ett-chip.

Abstract

Den höga förekomsten av försvagande ledsjukdomar som artros (OA) utgör en hög socioekonomisk börda. För närvarande är de tillgängliga läkemedlen som riktar sig mot ledsjukdomar mestadels palliativa. Det ouppfyllda behovet av effektiva sjukdomsmodifierande OA-läkemedel (DMOAD) har främst orsakats av avsaknaden av lämpliga modeller för att studera sjukdomsmekanismerna och testa potentiella DMOAD. Här beskriver vi etableringen av ett miniatyr synovialt ledliknande mikrofysiologiskt system (miniJoint) bestående av fett-, fibrösa och osteokondrala vävnadskomponenter härledda från humana mesenkymala stamceller (MSC). För att erhålla de tredimensionella (3D) mikrovävnaderna inkapslades MSC i fototvärbindningsbart metakrylerat gelatin före eller efter differentiering. De cellbelastade vävnadskonstruktionerna integrerades sedan i en 3D-printad bioreaktor och bildade miniJoint. Separata flöden av osteogena, fibrogena och adipogenic media infördes för att upprätthålla respektive vävnadsfenotyper. En gemensamt delad ström perfuserades genom brosk-, synovial- och fettvävnaderna för att möjliggöra vävnadsöverhörning. Detta flödesmönster möjliggör induktion av störningar i en eller flera av vävnadskomponenterna för mekanistiska studier. Dessutom kan potentiella DMOAD testas via antingen “systemisk administrering” genom alla medieströmmar eller “intraartikulär administrering” genom att lägga till läkemedlen till endast det delade “synovialvätska” -simulerande flödet. Således kan miniJoint fungera som en mångsidig in vitro-plattform för att effektivt studera sjukdomsmekanismer och testa läkemedel i personlig medicin.

Introduction

Gemensamma sjukdomar som artros (OA) är mycket vanliga och försvagande och utgör en ledande orsak till funktionshinder över hela världen1. Det uppskattas att enbart i USA påverkar OA 27 miljoner patienter och förekommer hos 12,1% av vuxna i åldern 60 år och äldre2. Tyvärr är de flesta läkemedel som för närvarande används för att hantera ledsjukdomar palliativa, och inga effektiva sjukdomsmodifierande OA-läkemedel (DMOAD) finns tillgängliga3. Detta ouppfyllda medicinska behov härrör främst från avsaknaden av en effektiv modell för att studera sjukdomsmekanismerna och utveckla potentiella DMOAD. Den konventionella tvådimensionella (2D) cellkulturen återspeglar inte 3D-naturen hos ledvävnader, och kulturen av vävnadsexplantat hindras ofta av signifikant celldöd och misslyckas vanligtvis med att replikera de dynamiska vävnadskopplingarna4. Dessutom minskar genetiska och anatomiska skillnader signifikant den fysiologiska relevansen av djurmodeller4.

Organ-on-chips (OoCs), eller mikrofysiologiska system, är ett lovande forskningsområde i gränssnittet mellan teknik, biologi och medicin. Dessa in vitro-plattformar är minimala funktionella enheter som replikerar definierade friska eller patologiska egenskaper hos sina in vivo-motsvarigheter 5. Dessutom kan dessa miniatyriserade system vara värd för olika celler och matriser och simulera de biofysiska och biokemiska interaktionerna mellan olika vävnader. Därför lovar ett mikrofysiologiskt system som troget kan rekapitulera den ursprungliga synovialleden att erbjuda en effektiv plattform för modellering av ledsjukdomar och utveckla potentiella DMOAD.

Mänskliga mesenkymala stamceller (MSC) kan isoleras från många vävnader i hela kroppen och differentieras till osteogena, kondrogeniska och adipogena linjer6. MSC har framgångsrikt använts för att konstruera olika vävnader, inklusive ben, brosk och fettvävnad6, vilket innebär att de representerar en lovande cellkälla för att konstruera vävnadskomponenterna i knäleden. Vi utvecklade nyligen ett miniatyr gemensamt efterliknande mikrofysiologiskt system, kallat miniJoint, som består av MSC-härledda ben-, brosk-, fibrösa och fettvävnader7. I synnerhet möjliggör den nya designen vävnadsöverhörning genom mikrofluidiskt flöde eller genomträngning (figur 1). Här presenterar vi protokollen för tillverkning av chipkomponenterna, konstruktion av vävnadskomponenterna, odling av de konstruerade vävnaderna i chipet och insamling av vävnader för nedströmsanalyser.

Figure 1
Figur 1: Schematisk bild av miniJoint-chipet som visar arrangemanget av de olika vävnadskomponenterna och medieflödena. OC = osteokondral vävnad. Klicka här för att se en större version av denna figur.

Protocol

Följande protokoll följer de etiska riktlinjerna från University of Pittsburgh och den mänskliga forskningsetiska kommittén vid University of Pittsburgh. Information om de material som används i denna studie finns i materialförteckningen. 1. Tillverkning av 3D-tryckta bioreaktorer Använd en datorprogramvara för att designa osteokondrala (figur 2A) och minigemensamma bioreaktorer (figur 2B</s…

Representative Results

Alla vävnader i miniJoint samlades in för att analysera deras fenotyper efter 28 dagars odling i miniJoint (figur 4A). Detta har beskrivits i vår tidigare publikation7. Genom användning av RT-qPCR, immunfärgning och histologisk färgning bekräftades att de vävnadsspecifika fenotyperna var väl underhållna för de enskilda mikrovävnaderna (figur 4). Till exempel uttryckte den osseösa komponenten i OC-m…

Discussion

I den här artikeln presenterar vi ett protokoll för att skapa ett knäled-på-ett-chip-system, där ben, brosk, fettvävnad och synoviumliknande vävnader bildas från MSC och samodlas i en anpassad bioreaktor. Detta flerkomponents, humana cell-härledda system med plug-and-play-funktioner representerar ett nytt verktyg för att studera patogenesen av ledsjukdomar och utveckla läkemedel.

Med tanke på att olika vävnader gynnar specifika odlingsmedier är det viktigt att tillhandahålla re…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denna forskning stöddes främst av finansiering från National Institutes of Health (UG3 / UH3TR002136, UG3 / UH3TR003090). Dessutom tackar vi Dr. Paul Manner (University of Washington) för att ha tillhandahållit de mänskliga vävnadsproverna och Dr. Jian Tan för deras hjälp med att isolera MSC: erna och skapa cellpoolen.

Materials

3-isobutyl-1-methylxanthine Sigma -Aldrich I17018-1G
6 well non-tissue culture plate Corning Falcon® Plates 351146
24 well non-tissue culture plate Corning Falcon® Plates 351147
30 mL syringes BD Syringe Luer Lock Cascade Health 302832
Alcian blue stain EK Industries 1198 1% w/v, pH 1.0
Advanced DMEM Gibco 12491-015
αMEM Gibco 12571-063
Antibiotic-antimycotic Gibco 15240-062
Biopsy punch Integra Miltex 12-460-407
BODIPY® fluorophore Molecular Probes
Bone morphogenic protein 7 (BMP7) Peprotech
Curved forceps Fisher Brand 16100110
DMEM Gibco 11995-065 Dulbecco’s Modified Eagle Medium
Dexmethasome Sigma -Aldrich 02-05-2002
E-Shell 450 photopolymer in EnvisionTec RES-01-4022
Fetal Bovine Serum Gemini-Bio Products 900-208
GlutaMAX Gibco 3505-061
gelatin from bovine skin Hyclone 1003372809
Hank’s Balanced Salt Solution Sigma -Aldrich SH30588.02
indomethacin Sigma -Aldrich I7378-56
Insulin-Transferrin-Selenium-Ethanolamine (ITS) Gibco 51500-056
interleukin 1β Peprotech 200-01B
Leur-loc connectors Cole-Parmer Instruments 45508-50
L-proline Sigma -Aldrich 115388-93-7
β-glycerophosphate Sigma -Aldrich 1003129352
Medium bags KiYATEC FC045
Methacrylic Anhydride Sigma -Aldrich 102378580
Phosphate buffered Saline Corning 21-040-CM
Pointed forceps Fisher Brand 12000122
Silicon mold McMaster-Carr RC00114P
Silicon o-rings McMaster-Carr ZMCCs1X5 1mm x 5mm
SolidWorks Dassault Systèmes SE, Vélizy-Villacoublay, France
Surgical Blades Integra Miltex 4-122
Syringe pump Lagato210P, KD Scientific Z569631 10 syringe racks
T-182 tissue culture flasks Fisher Brand FB012939
Tissue Culture Dish 150 mm Fisher Brand FB012925
Transforming Growth Factor Beta (TGF-β3) Peprotech 100-36E
Trypsin Gibco 25200-056
UV Flashlight KBS KB70109 395 nm
Vida Desktop 3D Printer EnvisionTec
Vitamin D3 Sigma -Aldrich 32222-06-3 1,25-dihydroxyvitamin D3

References

  1. Safiri, S., et al. Global, regional and national burden of osteoarthritis 1990-2017: A systematic analysis of the Global Burden of Disease Study 2017. Annals of the Rheumatic Diseases. 79 (6), 819-828 (2020).
  2. Lawrence, R. C., et al. Estimates of the prevalence of arthritis and other rheumatic conditions in the United States: Part II. Arthritis and Rheumatism. 58 (1), 26-35 (2008).
  3. Makarczyk, M. J., et al. Current models for development of disease-modifying osteoarthritis drugs. Tissue Engineering. Part C, Methods. 27 (2), 124-138 (2021).
  4. He, Y., et al. Pathogenesis of osteoarthritis: risk factors, regulatory pathways in chondrocytes, and experimental models. 생물학. 9 (8), 194 (2020).
  5. Ronaldson-Bouchard, K., Vunjak-Novakovic, G. Organs-on-a-chip: A fast track for engineered human tissues in drug development. Cell Stem Cell. 22 (3), 310-324 (2018).
  6. Lin, H., Sohn, J., Shen, H., Langhans, M. T., Tuan, R. S. Bone marrow mesenchymal stem cells: aging and tissue engineering applications to enhance bone healing. Biomaterials. 203, 96-110 (2019).
  7. Li, Z., et al. Human mesenchymal stem cell-derived miniature joint system for disease modeling and drug testing. Advanced Science. 9 (21), 2105909 (2022).
  8. Lin, H., Cheng, A. W., Alexander, P. G., Beck, A. M., Tuan, R. S. Cartilage tissue engineering application of injectable gelatin hydrogel with in situ visible-light-activated gelation capability in both air and aqueous solution. Tissue Engineering. Part A. 20 (17-18), 2402-2411 (2014).
  9. Fairbanks, B. D., Schwartz, M. P., Bowman, C. N., Anseth, K. S. Photoinitiated polymerization of PEG-diacrylate with lithium phenyl-2,4,6-trimethylbenzoylphosphinate: polymerization rate and cytocompatibility. Biomaterials. 30 (35), 6702-6707 (2009).
  10. Lin, H., Lozito, T. P., Alexander, P. G., Gottardi, R., Tuan, R. S. Stem cell-based microphysiological osteochondral system to model tissue response to interleukin-1β. Molecular Pharmaceutics. 11 (7), 2203-2212 (2014).
  11. Yin, B., et al. Hybrid macro-porous titanium ornamented by degradable 3D gel/nHA micro-scaffolds for bone tissue regeneration. International Journal of Molecular Sciences. 17 (4), 575 (2016).
  12. Lin, Z., et al. Osteochondral tissue chip derived from iPSCs: Modeling OA pathologies and testing drugs. Frontiers in Bioengineering and Biotechnology. 7, 411 (2019).
  13. Atukorala, I., et al. Synovitis in knee osteoarthritis: A precursor of disease. Annals of the Rheumatic Diseases. 75 (2), 390-395 (2016).
  14. Occhetta, P., et al. Hyperphysiological compression of articular cartilage induces an osteoarthritic phenotype in a cartilage-on-a-chip model. Nature Biomedical Engineering. 3 (7), 545-557 (2019).
  15. He, C., et al. Modeling early changes associated with cartilage trauma using human-cell-laden hydrogel cartilage models. Stem Cell Research and Therapy. 13 (1), 400 (2022).
  16. Elsissy, J. G., et al. Bacterial septic arthritis of the adult native knee joint: A review. JBJS Reviews. 8 (1), 0059 (2020).
  17. Romero-Lopez, M., et al. Macrophage effects on mesenchymal stem cell osteogenesis in a three-dimensional in vitro bone model. Tissue Engineering. Part A. 26 (19-20), 1099-1111 (2020).
check_url/kr/64186?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Makarcyzk, M. J., Li, Z. A., Yu, I., Yagi, H., Zhang, X., Yocum, L., Li, E., Fritch, M. R., Gao, Q., Bunnell, B. A., Goodman, S. B., Tuan, R. S., Alexander, P. G., Lin, H. Creation of a Knee Joint-on-a-Chip for Modeling Joint Diseases and Testing Drugs. J. Vis. Exp. (191), e64186, doi:10.3791/64186 (2023).

View Video