Her presenterer vi en protokoll for en musemodell av støyindusert hørselstap (NIHL). For å indusere NIHL utviklet vi en ny og enkel enhet ved hjelp av bølgepapp, et rottefellebur og en høyttaler. Auditiv hjernestammerespons og immunfluorescensavbildning ble brukt for å vurdere henholdsvis hørselsfunksjonen og ytre hårcelleskader.
En dyremodell av støyindusert hørselstap (NIHL) er nyttig for patologer, terapeuter, farmakologer og hørselsforskere for å forstå mekanismen til NIHL grundig, og deretter optimalisere de tilsvarende behandlingsstrategiene. Denne studien tar sikte på å skape en forbedret protokoll for å utvikle en musemodell av NIHL. Mannlige C57BL/6J-mus ble brukt i denne studien. Unanesthetized mus ble utsatt for høye lyder (1 og 6 kHz, presentert samtidig ved 115-125 dB SPL-A) kontinuerlig i 6 timer per dag i 5 påfølgende dager. Hørselsfunksjonen ble vurdert 1 dag og 1 uke etter støyeksponering, ved hjelp av auditiv hjernestammerespons (ABR). Etter ABR-målingen ble musene ofret, og deres organer av Corti ble samlet for immunfluorescensfarging. Fra målinger av auditiv hjernestammerespons (ABR) ble det observert signifikant hørselstap 1 dag etter støyeksponering. Etter 1 uke sank hørselstersklene til eksperimentmusene til ~80 dB SPL, som fortsatt var et betydelig høyere nivå enn kontrollmusene (~40 dB SPL). Fra resultatene av immunfluorescensavbildning ble ytre hårceller (OHC) vist å være skadet. Oppsummert opprettet vi en modell av NIHL ved hjelp av mannlige C57BL/6J-mus. En ny og enkel enhet for å generere og levere ren tonestøy ble utviklet og deretter benyttet. Både kvantitative målinger av hørselsterskler og morfologisk bekreftelse av OHC-skade viste at den påførte støyen induserte et forventet hørselstap.
Omtrent 1,3 milliarder mennesker over hele verden lider av hørselstap på grunn av støyeksponering1. I denne studien hadde vi som mål å etablere en klar trinnvis prosess for å indusere og bekrefte støyindusert hørselstap (NIHL). NIHL skyldes en degenerasjon / ødeleggelse av hårceller (HCs) og spiral ganglion nevroner (SGN), skade i HC stereocilia, og / eller tap av synapser mellom cochlea indre HCs og SGNs. Slike avvik kan også forårsake tinnitus og nedsatt taleoppfattelse (spesielt i et komplekst akustisk miljø) i tillegg til NIHL. Sosiale, psykologiske og kognitive funksjoner kan bli sekvensielt påvirket av disse fysiologiske manglene 2,3,4,5,6.
I NIHL-relaterte prekliniske studier basert på mus er de mest populære musestammene CBA / CaJ 2,3,6,7 og C57BL / 6 4,5,8. De mannlige 3,4,7 musene er dessuten mer vanlig brukt enn de kvinnelige, da østrogen har en beskyttende effekt på hørselen. Derfor brukte vi bare hannmus i denne studien9. Etter å ha referert til litteraturen, valgte vi 1 kHz og 6 kHz som frekvensene til den påførte støyen. Intensiteten av den påførte støyen var 115 dB SPL-A (rundt merden) til 125 dB SPL-A (i midten av merden). Etter å ha utsatt de eksperimentelle musene for støyen kontinuerlig i 6 timer per dag, i 5 påfølgende dager, indikerte en optimal økning i hørselsterskelen at en optimal grad av NIHL ble generert i eksperimentelle mus. Operasjonene for å håndtere dyrene, bygge det eksperimentelle oppsettet og indusere støy er alle tydelig beskrevet trinn for trinn i den medfølgende protokollen.
NIHL kan deles inn i to typer: midlertidig NIHL, som viser en midlertidig forskyvning av hørselsterskelen, og permanent NIHL, som kjennetegnes av en permanent hørselsterskelforskyvning. Hørselstapet som vi observerte på den 6. dagen (1 dag etter støyeksponeringen) antas å være en kombinasjon av disse to typene. I dette tilfellet vil hørselsterskelen vise en gradvis bedring over tid på grunn av den tidsmessige komponenten av hørselstap. I våre foreløpige eksperimentelle studier, resultatene oppnådd…
The authors have nothing to disclose.
Vi takker tilskuddene fra departementet for vitenskap og teknologi (MOST) fra Taiwans regjering (MOST 110-2314-B-715-005, MOST 111-2314-B-715-009-MY3), og intramural forskningsstipend fra Mackay Medical College (MMC-RD-110-1B-P030, MMC-RD-111-CF-G002-03).
1/4" CCP Free-field Standard Microphone Set | GRAS | 428158 | For noise exposure |
Amplifier Input Module, AMI100D | BIOPAC | For auditory brainstem response | |
Bio-amplifier, BIO100C | BIOPAC | For auditory brainstem response | |
Bovine Serum Albumin | SIGMA | A9647 | Immunofluorescence staining |
Cellsens software | Olympus life science | Image acquisition | |
Corrugated plastic | |||
DAPI fluoromount | SouthernBiotech | 0100-20 | Immunofluorescence staining |
Ethylenediaminetetraacetic acid | SIGMA | E5134 | Decalcification |
Evoked Response Amplifier, ERS100C | BIOPAC | For auditory brainstem response | |
Formaldehyde | APLHA | F030410 | Fixation of cochlear |
High Performance Data Acquisition System, MP160 | BIOPAC | For auditory brainstem response | |
Modular Extension Cable, MEC110C | BIOPAC | For auditory brainstem response | |
Myo7A primary antibody | Proteus | 25-6790 | Immunofluorescence staining |
Myo7A secondary antibody | Jackson immunoresearch | 711-545-152 | Immunofluorescence staining |
Needle Electrode, Unipolar 12 mmTp, EL452 | BIOPAC | For auditory brainstem response | |
phalloidin antibody | Alexa Fluor | A12381 | Immunofluorescence staining |
phosphate-buffered saline | SIGMA | P4417 | |
Rat trap cage | 14 cm x 17 cm x 24cm | ||
ROMPUN- xylazine injection, solution | Bayer HealthCare, LLC | ||
Sound amplifier, MT-1000 | unika | For noise exposure | |
Sound generator/analyzer/miscellaneous, FW-02 | CLIO | 620300719 | For noise exposure |
Soundproof chamber | IEA Electro-Acoustic Technology | For noise exposure and ABR | |
Speaker | IEA Electro-Acoustic Technology | For noise exposure | |
Stimulator Module, STM100C | BIOPAC | For auditory brainstem response | |
Triton X-100 | SIGMA | T8787 | Immunofluorescence staining |
Tubephone Set, OUT101 | BIOPAC | For auditory brainstem response | |
Upright Microscope, BX53 | Olympus | Image acquisition | |
Zoletil | Virbac |