Summary

जागृत, सिर-स्थिर चूहों की न्यूरोइमेजिंग के लिए हेड इम्प्लांट्स

Published: September 07, 2022
doi:

Summary

जागृत, सिर-निश्चित चूहों की कार्यात्मक इमेजिंग के लिए एक विस्तृत नई प्रक्रिया का वर्णन किया गया है।

Abstract

एनेस्थेटिक्स, आमतौर पर प्रीक्लिनिकल और मौलिक वैज्ञानिक अनुसंधान में उपयोग किया जाता है, मस्तिष्क के चयापचय, न्यूरोनल और संवहनी कार्यों पर अवसादग्रस्तता प्रभाव डालता है और न्यूरोफिज़ियोलॉजिकल परिणामों पर प्रतिकूल प्रभाव डाल सकता है। अनुसंधान अध्ययनों के लिए जागृत जानवरों का उपयोग फायदेमंद है, लेकिन डेटा अधिग्रहण के दौरान गति कलाकृतियों को कम करने के लिए जानवरों को शांत और स्थिर रखने की प्रमुख चुनौती है। छोटे आकार के कृन्तकों (जैसे, चूहों) में अवेक इमेजिंग बहुत आम है, लेकिन चूहों में कम रहती है क्योंकि चूहे बड़े, मजबूत होते हैं, और इमेजिंग के लिए आवश्यक लंबी अवधि में आंदोलन संयम और सिर निर्धारण का विरोध करने की अधिक प्रवृत्ति रखते हैं। अनुकूलित हाथ-सिलाई स्लिंग, 3 डी-मुद्रित सिर प्रत्यारोपण, हेड कैप और एक हेडफ्रेम का उपयोग करके जागृत, सिर-निश्चित चूहों के न्यूरोइमेजिंग का एक नया मॉडल वर्णित है। एकल-मूंछ उत्तेजना के एकल परीक्षण के बाद प्राप्त परिणाम उत्पन्न कार्यात्मक प्रतिक्रिया की तीव्रता में वृद्धि का सुझाव देते हैं। जागृत, सिर-स्थिर चूहों से उत्पन्न कार्यात्मक प्रतिक्रिया का अधिग्रहण एनेस्थेटाइज्ड चूहों की तुलना में तेज है, विश्वसनीय, प्रतिलिपि प्रस्तुत करने योग्य है, और इसका उपयोग बार-बार अनुदैर्ध्य अध्ययन के लिए किया जा सकता है।

Introduction

अधिकांश बुनियादी, प्रीक्लिनिकल और ट्रांसलेशनल वैज्ञानिक न्यूरोइमेजिंग जांच एनेस्थेटाइज्ड जानवरों 1,2 से प्राप्त की जाती हैं। एनेस्थेटिक्स प्रयोग को आसान बनाते हैं लेकिन लगातार मस्तिष्क और शरीर के चयापचय, रक्तचाप और हृदय गति को प्रभावित करतेहैं। एनेस्थेटिक का प्रकार और प्रशासन की अवधि और मार्ग डेटा व्याख्या में भ्रामक चर जोड़ते हैं जो प्रजनन क्षमता और अनुवादविफलताओं में योगदान कर सकते हैं। जागृत, सिर-निश्चित चूहे न्यूरोइमेजिंग अध्ययनों की एक प्रमुख बाधा तैयारी और डेटा अधिग्रहण प्रक्रियाओं के दौरान चूहे को स्थिर और शांत रखने की आवश्यकता है। छोटे आंदोलन अनुचित गति कलाकृतियों का उत्पादन करते हैं, जो डेटा विश्लेषण और व्याख्याओं पर प्रतिकूल प्रभाव डाल सकते हैं।

अनुकूलित स्लिंग, त्रि-आयामी (3 डी)-मुद्रित सिर प्रत्यारोपण, हेड कैप और एक हेडफ्रेम का उपयोग करके जागृत, सिर-स्थिर चूहों से न्यूरोइमेजिंग का एक नया मॉडल तैयार किया गया है जो आसान प्रयोग के लिए कई फायदे प्रदान करता है। 3 डी हेड इम्प्लांट हल्का होता है और ट्रांसफिक्सिंग के लिए आवश्यक खोपड़ी के एक छोटे से हिस्से को कवर करता है। 3 डी-मुद्रित सिर प्रत्यारोपण और कैप कंप्यूटर-एडेड डिज़ाइन (सीएडी) सॉफ्टवेयर का उपयोग करके डिज़ाइन किए गए हैं। मूंछ उत्तेजना, डेटा अधिग्रहण, डेटा विश्लेषण और एनेस्थेटाइज्ड चूहों के परिणामों के प्रोटोकॉल को पिछले काम 5,6,7 में विस्तार से वर्णित किया गया है।

Protocol

सभी प्रक्रियाएं राष्ट्रीय स्वास्थ्य संस्थान के दिशानिर्देशों के अनुरूप थीं और कैलिफोर्निया विश्वविद्यालय, इरविन पशु देखभाल और उपयोग समिति द्वारा अनुमोदित थीं। इस अध्ययन में सात नर और एक मादा चूहा (?…

Representative Results

एक एनेस्थेटाइज्ड चूहे के एकल परीक्षण से प्रतिनिधि ऑप्टिकल इमेजिंग संकेत और एक जागृत चूहे की अभिव्यक्त प्रतिक्रिया (40 एकत्र परीक्षणों की) को दिखाया गया है (चित्रा 4)। एक जागृत चूहे की एकल-मूंछ…

Discussion

जागृत, सिर-निश्चित चूहे इमेजिंग का उपयोग आसानी और अनुकूलन के मामले में कई फायदे प्रदान करता है। कस्टम-डिज़ाइन किए गए स्लिंग चूहों को सांस लेने योग्य जाल सामग्री के माध्यम से लपेटने की अनुमति देते हैं, ज…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

हम क्लारा जोन्स, जेम्स स्टिरवाल्ट, लिन्ह होआंग, यंग जून हा और अमीरसोहील ज़रेह को चूहों के प्रशिक्षण और स्लिंग की तैयारी के दौरान उनकी मदद के लिए स्वीकार करते हैं। फंडिंग राष्ट्रीय स्वास्थ्य संस्थान (एनआईएच, अनुदान संख्या: एनएस 119852) और लेडुक फाउंडेशन (अनुदान संख्या: 15 सीवीडी02) द्वारा प्रदान की गई थी।

Materials

Rats Charles River Sprague Dawley
Isoflurane Pivetal 21295098 General anesthetic
Lidocaine HCl 2% injection Phoenix L-2000-04 Local anesthetic
Atropine sulfate injection Vedco 5098907512 Help in respiration
Lactated Ringer's injection solution Vedco 50989088317
Flunixin injection Vedco 6064408670 Pain management
Enrosite injection (Enrofloxacin 2.27%) VetOne 501084 Avoid infection
PromAce injection (Acepromazine maleate) Beohringer Ingelheim 136059
Animax ointment Dechra Veterinary Products 122-75 active ingredients of nystatin 1000units per gram, neomycin sulfate 2.5mg per gram, thiostrepton 2500 units per gram, and triamcinolone acetonide 1mg per gram
Puralube ophthalmic ointment Dechra Veterinary Products 211-38
Povidone-iodine PVP prep pads Medline MDS093917 Betadine generic
Isopropyl alcohol swabs BD 326895
Vetbond tissue adhesive 3M 1469SB
Bur (drill bit), standard operatory carbide SS White Burs 14829 #3 bur
Screws, 00-90 x 1/8 flat head stainless steel J.I. Morris F0090CE125 Anchor screws
Stereotaxic system Kopf Instruments 1430
Homeothermic heating blanket Harvard Apparatus 50-7220-F
Pulse oximeter & heart rate monitor Kent Scientific MouseStat Jr.
Petrolatum Fisher Scientific P66-1LB Vaseline generic
Wire, bare copper Fisher Scientific 15-545-2C 20 gauge
Teets Cold Cure powder Pearson Dental C73-0054  active ingredient: Methyl Methacrylate
Teets Cold Cure liquid Pearson Dental C73-0078  active ingredient: Methyl Methacrylate
Silicone mold rubber Smooth-On Body Double Fast silicon polymer
Metricide 28 (Germicide) Metrex Oct-05
India ink, black Pelikan 301051
Dental drill NSK Dental Ultimate XL-F
3D printer Prusa Research i3 MK3S+
Sew on fasteners Velcro 90030
Pet screening utility fabric Joann 10173334 Netting material
Bur (drill bit), standard operatory carbide SS White Burs 14829 #1 bur

References

  1. Cicero, L., Fazzotta, S., Palumbo, V. D., Cassata, G., Lo Monte, A. I. Anesthesia protocols in laboratory animals used for scientific purposes. Acta Biomedica. 89 (3), 337-342 (2018).
  2. Lythgoe, M. F., Sibson, N. R., Harris, N. G. Neuroimaging of animal models of brain disease. British Medical Bulletin. 65, 235-257 (2003).
  3. Albrecht, M., Henke, J., Tacke, S., Markert, M., Guth, B. Influence of repeated anaesthesia on physiological parameters in male Wistar rats: A telemetric study about isoflurane, ketamine-xylazine and a combination of medetomidine, midazolam and fentanyl. BMC Veterinary Research. 10, 310 (2014).
  4. Uhlig, C., Krause, H., Koch, T., Gama de Abreu, M., Spieth, P. M. Anesthesia and monitoring in small laboratory mammals used in anesthesiology, respiratory and critical care research: A systematic review on the current reporting in top-10 impact factor ranked journals. PLoS One. 10 (8), 0134205 (2015).
  5. Chen-Bee, C. H., et al. Visualizing and quantifying evoked cortical activity assessed with intrinsic signal imaging. Journal of Neuroscience Methods. 97 (2), 157-173 (2000).
  6. Chen-Bee, C. H., Agoncillo, T., Xiong, Y., Frostig, R. D. The triphasic intrinsic signal: Implications for functional imaging. The Journal of Neuroscience. 27 (17), 4572-4586 (2007).
  7. Chen-Bee, C. H., Agoncillo, T., Lay, C. C., Frostig, R. D. Intrinsic signal optical imaging of brain function using short stimulus delivery intervals. Journal of Neuroscience Methods. 187 (2), 171-182 (2010).
  8. Scott, B. B., Brody, C. D., Tank, D. W. Cellular Resolution Functional Imaging in Behaving Rats Using Voluntary Head Restraint. Neuron. 80 (2), 371-384 (2013).
  9. Frostig, R. D., Lieke, E. E., Ts’o, D. Y., Grinvald, A. Cortical functional architecture and local coupling between neuronal activity and the microcirculation revealed by in vivo high-resolution optical imaging of intrinsic signals. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 87 (16), 6082-6086 (1990).
  10. Chang, P. C., et al. Novel method for functional brain imaging in awake minimally restrained rats. Journal of Neurophysiology. 116 (1), 61-80 (2016).
  11. Stenroos, P., et al. Awake rat brain functional magnetic resonance imaging using standard radio frequency coils and a 3D printed restraint kit. Frontiers in Neuroscience. 12, 548 (2018).
  12. Vogler, G. A., Suckow, M. A., Weisbroth, S. H., Franklin, C. L. Chapter 19 – Anesthesia and Analgesia (Second Edition). The Laboratory Rat. , 627-664 (2006).
  13. Schwarz, C., et al. The head-fixed behaving rat–Procedures and pitfalls. Somatosensory and Mot Research. 27 (4), 131-148 (2010).
  14. Roh, M., Lee, K., Jang, I. S., Suk, K., Lee, M. G. Acrylic resin molding based head fixation technique in rodents. Journal of Visualized Experiments. (107), e53064 (2016).
  15. Ferris, C. F. Applications in awake animal magnetic resonance imaging. Frontiers in Neuroscience. 16, 854377 (2022).
  16. Tiran, E., et al. Transcranial functional ultrasound imaging in freely moving awake mice and anesthetized young rats without contrast agent. Ultrasound in Medicine and Biology. 43 (8), 1679-1689 (2017).
  17. Desjardins, M., et al. Awake mouse imaging: From two-photon microscopy to blood oxygen level-dependent functional magnetic resonance imaging. Biological Psychiatry: Cognitive Neuroscience and Neuroimaging. 4 (6), 533-542 (2019).
  18. Koletar, M. M., Dorr, A., Brown, M. E., McLaurin, J., Stefanovic, B. Refinement of a chronic cranial window implant in the rat for longitudinal in vivo two-photon fluorescence microscopy of neurovascular function. Scientific Reports. 9, 5499 (2019).
  19. Drew, P. J., et al. Chronic optical access through a polished and reinforced thinned skull. Nature Methods. 7 (12), 981-984 (2010).
  20. Cao, R., et al. Functional and oxygen-metabolic photoacoustic microscopy of the awake mouse brain. Neuroimage. 150, 77-87 (2017).
  21. Grinvald, A., Frostig, R. D., Siegel, R. M., Bartfeld, E. High-resolution optical imaging of functional brain architecture in the awake monkey. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 88 (24), 11559-11563 (1991).
  22. Roe, A. W. Long-term optical imaging of intrinsic signals in anesthetized and awake monkeys. Applied Optics. 46 (10), 1872-1880 (2007).
  23. Polley, D., Kvašňák, E., Frostig, R. Naturalistic experience transforms sensory maps in the adult cortex of caged animals. Nature. 429 (6987), 67-71 (2004).
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Cite This Article
Bhatti, M., Malone, H., Hui, G., Frostig, R. D. Head Implants for the Neuroimaging of Awake, Head-Fixed Rats. J. Vis. Exp. (187), e64324, doi:10.3791/64324 (2022).

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