Summary

Zebrafisk dyremodel til undersøgelse af allergiske reaktioner som reaktion på flåtspytbiomolekyler

Published: September 16, 2022
doi:

Summary

Her bruges zebrafisk (Danio rerio) som model til at studere allergiske reaktioner og immunresponser relateret til alfa-Gal syndrom (AGS) ved at evaluere allergiske reaktioner på flåtspyt og pattedyrs kødforbrug.

Abstract

Flåter er leddyrvektorer, der forårsager sygdom ved patogenoverførsel, og hvis bid kan være relateret til allergiske reaktioner, der påvirker menneskers sundhed over hele verden. Hos nogle individer er høje niveauer af immunglobulin E-antistoffer mod glycanen Galα1-3Galβ1-(3)4GlcNAc-R (α-Gal) blevet induceret af flåtbid. Anafylaktiske reaktioner medieret af glycoproteiner og glycolipider indeholdende glycan α-Gal, der er til stede i flåtspyt, er relateret til alfa-Gal syndrom (AGS) eller pattedyrs kødallergi. Zebrafisk (Danio rerio) er blevet en meget anvendt hvirveldyrmodel til undersøgelse af forskellige patologier. I denne undersøgelse blev zebrafisk brugt som model for undersøgelsen af allergiske reaktioner som reaktion på α-Gal og pattedyrs kødforbrug, fordi de ligesom mennesker ikke syntetiserer denne glykan. Til dette formål blev adfærdsmønstre og hæmoragiske anafylaktiske allergiske reaktioner som reaktion på Ixodes ricinus tick spyt og pattedyrs kødforbrug evalueret. Denne eksperimentelle tilgang gør det muligt at indhente gyldige data, der understøtter zebrafiskens dyremodel til undersøgelse af flåtbårne allergier, herunder AGS.

Introduction

Flåter er vektorer af patogener, der forårsager sygdomme og er også årsagen til allergiske reaktioner, der påvirker menneskers og dyrs sundhed over hele verden 1,2. Under flåtfodring letter biomolekyler i krydsspyt, især proteiner og lipider, fodring af disse ektoparasitter og undgår værtsforsvar3. Nogle spytbiomolekyler med glycan Galα1-3Galβ1-(3)4GlcNAc-R (α-Gal) modifikationer fører til produktion af høje anti-α-Gal IgE-antistofniveauer efter flåtbiddet, kun hos nogle individer, som er kendt som α-Gal syndrom (AGS)4. Dette er en sygdom forbundet med IgE-medieret allergi, der kan resultere i anafylaksi til flåtbid, ikke-primatpattedyrs kødforbrug og nogle lægemidler såsom cetuximab5. Reaktioner på α-Gal er ofte alvorlige og kan undertiden være dødelige 6,7,8,9,10,11,12,13,14,15.

α-Gal findes i alle pattedyr undtagen aber, aber og mennesker fra den gamle verden, der ikke har evnen til at syntetisere α-Gal13. Imidlertid udtrykker patogener som bakterier og protozoer denne glycan på deres overflade, hvilket kan fremkalde produktion af store mængder anti-α-Gal IgM / IgG-antistoffer og kan være en beskyttelsesmekanisme mod disse patogener16,17. Imidlertid øger produktionen af anti-α-Gal-antistoffer risikoen for at udvikle IgE-medierede anti-α-Gal-allergier 7,13. Naturlige anti-α-Gal-antistoffer produceret hos mennesker, hovedsageligt af IgM/IgG-undertyperne, kunne være forbundet med denne modifikation, der findes i bakterier fra tarmmikrobiota16. AGS kan være en udfordrende klinisk diagnose, da den vigtigste diagnostiske metode i øjeblikket er baseret på en klinisk historie med forsinkede allergiske reaktioner, især forbundet med fødevareallergier (dvs. kløe, lokaliserede nældefeber eller tilbagevendende angioødem til anafylaksi, urticaria og gastrointestinale symptomer) og måling af IgE-anti-α-Gal-antistofniveauer9. Aktuelle resultater tyder på, at flåtbid udgør en af de største risici ved forekomsten af AGS 18,19, en 20 gange eller større stigning i IgE-niveauer til α-Gal efter et flåtbid 19, en historie med flåtbid hos patienter med AGS20,21,22, eksistensen af antistoffer, der er reaktive over for flåtantigener hos AGS-patienter 19, og at anti-α-Gal IgE er stærkt relateret til anti-tick IgE-niveauer19,23, men yderligere undersøgelser er nødvendige for at vurdere, hvilke biomolekyler der faktisk er involveret.

Derudover er et andet muligt scenario patienter, der udviser stærke allergiske reaktioner på flåtbid og høje niveauer af anti-α-Gal IgE-antistoffer, men er tolerante over for pattedyrs kødforbrug12. Derfor kan pattedyrs kødallergi være en særlig type flåtbidrelateret allergi. De vigtigste flåtarter, der er forbundet med AGS, omfatter Amblyomma americanum (USA), Amblyomma sculptum (Brasilien), Amblyomma testudinarium og Haemaphysalis longicornis (Japan), Ixodes holocyclus (Australien) og Ixodes ricinus (den vigtigste vektor for borreliose i Europa)11,24.

Den eneste model, der er blevet brugt til at evaluere IgE-produktion relateret til flåtbid, er musemodellen genetisk modificeret med genet for α-1,3-galactosyltransferase slået ud (α-Gal KO) mus25,26, fordi mus ligesom andre pattedyr også udtrykker α-Gal på proteiner og lipider og ikke producerer IgE til α-Gal. Zebrafisk (Danio rerio) er imidlertid en nyttig model for biomedicinsk forskning anvendt på pattedyr, fordi den deler mange anatomiske ligheder med pattedyr og ligesom mennesker heller ikke er i stand til at syntetisere α-Gal. Da α-Gal ikke produceres naturligt i zebrafisk, er det en overkommelig model, let at manipulere og tillader en høj prøvestørrelse til undersøgelse af α-Gal-relaterede allergiske reaktioner.

I denne undersøgelse anvendes zebrafisk som modelorganisme til at karakterisere og beskrive lokale allergiske reaktioner, adfærdsmønstre og de molekylære mekanismer, der er forbundet med respons på perkutan sensibilisering over for flåtspyt26,27 og efterfølgende kødforbrug hos pattedyr. Til dette formål udsættes fisk for flåtspyt ved intradermal injektion og fodres derefter med hundefoder, der indeholder kødafledte produkter fra pattedyr, der er egnede til dyrebrug, og som indeholder α-Gal27, hvorefter mulige relaterede allergiske reaktioner vurderes. Denne metode kan anvendes til undersøgelse af andre biomolekyler relateret til allergiske processer, især dem, der er relateret til AGS.

Protocol

Alle metoder, der er beskrevet her, er godkendt af den etiske komité for dyreforsøg ved University of Castilla La Mancha under undersøgelsen “Evaluering af immunresponset på inaktiveret M. bovis vaccine og udfordring med M. marinum i zebrafiskens modelnummer PR-2017-05-12.” Flåter blev opnået fra laboratoriekolonien, hvor repræsentative prøver af flåter i kolonien blev testet af PCR for almindelige flåtpatogenerfor at bekræfte fraværet af patogener og vedligeholdt…

Representative Results

Protokollen, der præsenteres her, er baseret på flere aspekter af tidligere offentliggjorte eksperimenter27,30 og resultater udført i vores laboratorium, hvor zebrafiskmodellen er etableret og valideret til undersøgelse af AGS og immunresponset på α-Gal, fordi både mennesker og zebrafisk ikke syntetiserer dette molekyle13. Denne model tillader karakterisering og evaluering af en række allergiske reaktioner som følge af værtsrespo…

Discussion

Zebrafisk er en omkostningseffektiv og let håndterbar model, der også har været et meget gennemførligt værktøj til undersøgelse af molekylære mekanismer for immunrespons, patogensygdomme, test af nye lægemidler og vaccination og beskyttelse mod infektioner33,34,35. Undersøgelsen af zebrafiskens adfærd er nyttig, da tidligere undersøgelser har vist, at nogle fiskearter forbliver ubevægelige i bunden af tanken, når d…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Vi vil gerne takke medlemmerne af SaBio-gruppen for deres samarbejde i det eksperimentelle design og teknisk assistance med fiskeforsøgsanlægget og Juan Galcerán Sáez (IN-CSIC-UMH, Spanien) for at levere zebrafisk. Dette arbejde blev støttet af Ministerio de Ciencia e Innovación/Agencia Estatal de Investigación MCIN/AEI/10.13039/501100011033, Spanien og EU-FEDER (tilskud BIOGAL PID2020-116761GB-I00). Marinela Contreras finansieres af Ministerio de Ciencia, Innovación y Universidades, Spanien, tilskud IJC2020-042710-I.

Materials

1.5 mL tube VWR 525-0990
All Prep DNA/RNA Qiagen 80284
Aquatics facilities
BCA Protein Assay Kit  Thermo Fisher Scientific 23225
Disection set VWR 631-1279
Dog Food – Red Classic Acana
ELISA plates-96 well Thermo Fisher Scientific 10547781
Gala1-3Gal-BSA 3 (α-Gal)  Dextra NGP0203
iScript Reverse Transcription Supermix Supermix 1708840
Microliter syringes Hamilton 7638-01
Plate reader any
Phosphate buffered saline Sigma P4417-50TAB
pilocarpine hydrochloride  Sigma P6503
Pipette tip P10  VWR 613-0364
Pipette tip P1000 VWR 613-0359
Premium food tropical fish DAPC
Sponge Animal Holder  Made from scrap foam
Stereomicroscope any
Thermal Cycler Real-Time PCR any
Tricaine methanesulphonate (MS-222) Sigma E10521

References

  1. de la Fuente, J., Estrada-Pena, A., Venzal, J. M., Kocan, K. M., Sonenshine, D. E. Overview: Ticks as vectors of pathogens that cause disease in humans and animals. Frontiers in Bioscience: A Journal and Virtual Library. 13 (18), 6938-6946 (2008).
  2. de la Fuente, J., et al. Tick-pathogen interactions and vector competence: identification of molecular drivers for tick-borne diseases. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 7, 114 (2017).
  3. Villar, M., et al. Characterization of tick salivary gland and saliva alphagalactome reveals candidate alpha-gal syndrome disease biomarkers. Expert Review of Proteomics. 18 (12), 1099-1116 (2021).
  4. Chmelař, J., Kotál, J., Kovaříková, A., Kotsyfakis, M. The use of tick salivary proteins as novel therapeutics. Frontiers in Physiology. 10, 812 (2019).
  5. Chung, C. H., et al. Cetuximab-induced anaphylaxis and IgE specific for galactose-alpha-1,3-galactose. The New England Journal of Medicine. 358 (11), 1109-1117 (2008).
  6. Van Nunen, S. A., O’Connor, K. S., Clarke, L. R., Boyle, R. X., Fernando, S. L. An association between tick bite reactions and red meat allergy in humans. The Medical Journal of Australia. 190 (9), 510-511 (2009).
  7. Cabezas-Cruz, A., et al. Environmental and molecular drivers of the α-Gal syndrome. Frontiers in Immunology. 10, 1210 (2019).
  8. de la Fuente, J., Pacheco, I., Villar, M., Cabezas-Cruz, A. The alpha-Gal syndrome: new insights into the tick-host conflict and cooperation. Parasites & Vectors. 12 (1), 154 (2019).
  9. Platts-Mills, T. A. E., et al. On the cause and consequences of IgE to galactose-α-1,3-galactose: A report from the National Institute of Allergy and Infectious Diseases workshop on understanding IgE-mediated mammalian meat allergy. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 145 (4), 1061-1071 (2020).
  10. Commins, S. P., et al. Delayed anaphylaxis, angioedema, or urticaria after consumption of red meat in patients with IgE antibodies specific for galactose-alpha-1,3-galactose. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 123 (2), 426-433 (2009).
  11. Platts-Mills, T. A. E., Schuyler, A. J., Tripathi, A., Commins, S. P. Anaphylaxis to the carbohydrate side chain alpha-gal. Immunology and Allergy Clinics of North America. 35 (2), 247-260 (2015).
  12. Mateos-Hernández, L., et al. Tick-host conflict: immunoglobulin E antibodies to tick proteins in patients with anaphylaxis to tick bite. Oncotarget. 8 (13), 20630-20644 (2017).
  13. Galili, U. Evolution in primates by "Catastrophic-selection" interplay between enveloped virus epidemics, mutated genes of enzymes synthesizing carbohydrate antigens, and natural anti-carbohydrate antibodies. American Journal of Physical Anthropology. 168 (2), 352-363 (2019).
  14. Hilger, C., Fischer, J., Wölbing, F., Biedermann, T. Role and mechanism of galactose-alpha-1,3-galactose in the elicitation of delayed anaphylactic reactions to red meat. Current Allergy and Asthma Reports. 19 (1), 3 (2019).
  15. Cabezas-Cruz, A., Valdés, J., de la Fuente, J. Cancer research meets tick vectors for infectious diseases. The Lancet. Infectious Diseases. 14 (10), 916-917 (2014).
  16. Yilmaz, B., et al. Gut microbiota elicits a protective immune response against malaria transmission. Cell. 159 (6), 1277-1289 (2014).
  17. Cabezas-Cruz, A., et al. Regulation of the immune response to α-Gal and vector-borne diseases. Trends in Parasitology. 31 (10), 470-476 (2015).
  18. Weins, A. B., Eberlein, B., Biedermann, T. Diagnostics of alpha-gal syndrome: Current standards, pitfalls and perspectives. Der Hautarzt; Zeitschrift Fur Dermatologie, Venerologie, Und Verwandte Gebiete. 70 (1), 36-43 (2019).
  19. Commins, S. P., et al. The relevance of tick bites to the production of IgE antibodies to the mammalian oligosaccharide galactose-α-1,3-galactose. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 127 (5), 1286-1293 (2011).
  20. Fischer, J., Yazdi, A. S., Biedermann, T. Clinical spectrum of α-Gal syndrome: from immediate-type to delayed immediate-type reactions to mammalian innards and meat. Allergo Journal International. 25 (2), 55-62 (2016).
  21. Hodžić, A., et al. Infection with Toxocara canis inhibits the production of IgE antibodies to α-Gal in humans: towards a conceptual framework of the hygiene hypothesis. Vaccines. 8 (2), 167 (2020).
  22. Kiewiet, M. B. G., et al. Clinical and serological characterization of the α-Gal syndrome-importance of atopy for symptom severity in a European cohort. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. In Practice. 8 (6), 2027-2034 (2020).
  23. Steinke, J. W., Platts-Mills, T. A. E., Commins, S. P. The alpha-gal story: lessons learned from connecting the dots. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 135 (3), 589-596 (2015).
  24. Hashizume, H., et al. Repeated Amblyomma testudinarium tick bites are associated with increased galactose-α-1,3-galactose carbohydrate IgE antibody levels: A retrospective cohort study in a single institution. Journal of the American Academy of Dermatology. 78 (6), 1135-1141 (2018).
  25. Chandrasekhar, J. L., et al. Cutaneous exposure to clinically relevant lone star ticks promotes IgE production and hypersensitivity through CD4+ T cell- and MyD88-dependent pathways in mice. Journal of Immunology. 203 (4), 813-824 (2019).
  26. Araujo, R. N., et al. Amblyomma sculptum tick saliva: α-Gal identification, antibody response and possible association with red meat allergy in Brazil. International Journal for Parasitology. 46 (3), 213-220 (2016).
  27. Contreras, M., et al. Allergic reactions and immunity in response to tick salivary biogenic substances and red meat consumption in the zebrafish model. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 10, 78 (2020).
  28. Poole, N. M., Mamidanna, G., Smith, R. A., Coons, L. B., Cole, J. A. Prostaglandin E(2) in tick saliva regulates macrophage cell migration and cytokine profile. Parasites & Vectors. 6 (2), 261 (2013).
  29. Seibel, H., Baßmann, B., Rebl, A. Blood will tell: what hematological analyses can reveal about fish welfare. Frontiers in Veterinary Science. 8, 616955 (2021).
  30. Pacheco, I., et al. Vaccination with alpha-gal protects against mycobacterial infection in the zebrafish model of tuberculosis. Vaccines. 8 (2), 195 (2020).
  31. Gupta, T., Mullins, M. C. Dissection of organs from the adult zebrafish. Journal of Visualized Experiments. (37), e1717 (2010).
  32. Lu, M. -. W., et al. The interferon response is involved in nervous necrosis virus acute and persistent infection in zebrafish infection model. Molecular Immunology. 45 (4), 1146-1152 (2008).
  33. Saralahti, A., et al. Adult zebrafish model for pneumococcal pathogenesis. Developmental and Comparative Immunology. 42 (2), 345-353 (2014).
  34. Gore, A. V., Pillay, L. M., Venero Galanternik, M., Weinstein, B. M. The zebrafish: A fintastic model for hematopoietic development and disease. Wiley Interdisciplinary Reviews. Developmental Biology. 7 (3), 312 (2018).
  35. Katoch, S., Patial, V. Zebrafish: An emerging model system to study liver diseases and related drug discovery. Journal of Applied Toxicology. 41 (1), 33-51 (2021).
  36. Kalueff, A. V., et al. Towards a comprehensive catalog of zebrafish behavior 1.0 and beyond. Zebrafish. 10 (1), 70-86 (2013).
  37. Xin, N., Jiang, Y., Liu, S., Zhou, Y., Cheng, Y. Effects of prednisolone on behavior and hypothalamic-pituitary-interrenal axis activity in zebrafish. Environmental Toxicology and Pharmacology. 75, 103325 (2020).
  38. Aleström, P., et al. Zebrafish: Housing and husbandry recommendations. Laboratory Animals. 54 (3), 213-224 (2020).
check_url/kr/64378?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Contreras, M., González-García, A., de la Fuente, J. Zebrafish Animal Model for the Study of Allergic Reactions in Response to Tick Saliva Biomolecules. J. Vis. Exp. (187), e64378, doi:10.3791/64378 (2022).

View Video