Summary

ダニ唾液生体分子に反応するアレルギー反応の研究のためのゼブラフィッシュ動物モデル

Published: September 16, 2022
doi:

Summary

ここでは、ゼブラフィッシュ(Danio rerio)をモデルとして、ダニの唾液や哺乳類の肉の消費に対するアレルギー反応を評価することにより、α-Gal症候群(AGS)に関連するアレルギー反応と免疫応答を研究しています。

Abstract

ダニは、病原体の伝染によって病気を引き起こす節足動物のベクターであり、その咬傷は世界中の人間の健康に影響を与えるアレルギー反応に関連している可能性があります。一部の個体では、グリカンGalα1-3Galβ1-(3)4GlcNAc-R(α-Gal)に対する高レベルの免疫グロブリンE抗体がダニ刺されによって誘導されています。.ダニの唾液中に存在する糖鎖α-Galを含む糖タンパク質と糖脂質によって媒介されるアナフィラキシー反応は、α-Gal症候群(AGS)または哺乳類の肉アレルギーに関連しています。ゼブラフィッシュ(Danio rerio)は、さまざまな病状の研究に広く使用されている脊椎動物モデルとなっています。この研究では、ゼブラフィッシュは、人間のようにこの糖鎖を合成しないため、α-Galおよび哺乳類の肉の消費に反応するアレルギー反応の研究のモデルとして使用されました。この目的のために、 Ixodes ricinus ダニ唾液および哺乳類肉の消費に応答した行動パターンおよび出血性アナフィラキシー型アレルギー反応を評価した。この実験的アプローチは、AGSを含むダニ媒介性アレルギーの研究のためのゼブラフィッシュ動物モデルを支持する有効なデータの観察を可能にする。

Introduction

ダニは病気を引き起こす病原体の媒介者であり、アレルギー反応の原因でもあり、世界中の人間や動物の健康に影響を与えます1,2。ダニの摂食中、ダニの唾液中の生体分子、特にタンパク質と脂質は、これらの外部寄生虫の摂食を促進し、宿主防御を回避します3。グリカンGalα1-3Galβ1-(3)4GlcNAc-R(α-Gal)修飾を有する一部の唾液生体分子は、ダニ咬傷後に高い抗α-Gal IgE抗体レベルを産生し、一部の個体でのみ、これはα-Gal症候群(AGS)4として知られています。これは、ダニ刺されに対するアナフィラキシー、非霊長類の哺乳類の肉の消費、およびセツキシマブ5などの一部の薬物を引き起こす可能性のあるIgEを介したアレルギーに関連する疾患です。α-Galに対する反応はしばしば重篤であり、時には致命的となる可能性があります6,7,8,9,10,11,12,13,14,15。

α-Galは、旧世界のサル、類人猿、およびα-Gal13を合成する能力を持たない人間を除くすべての哺乳類に見られます。しかし、細菌や原生動物などの病原体は、その表面にこの糖鎖を発現し、大量の抗α-Gal IgM / IgG抗体の産生を誘導する可能性があり、これらの病原体に対する保護メカニズムである可能性があります16,17。しかし、抗α-Gal抗体の産生は、IgEを介した抗α-Galアレルギーを発症するリスクを高めます7,13。主にIgM / IgGサブタイプのヒトで産生された天然の抗α-Gal抗体は、腸内細菌叢の細菌に存在するこの修飾に関連している可能性があります16。現時点での主な診断方法は、特に食物アレルギー(すなわち、そう痒症、限局性じんましん、またはアナフィラキシー、じんましん、および胃腸症状に対する再発性血管浮腫)およびIgE抗α-Gal抗体レベルの測定に関連する遅延性アレルギー反応の病歴に基づいているため、AGSは困難な臨床診断になる可能性があります9。現在の知見は、ダニ咬傷がAGS18,19の出現における主要なリスクの1つを構成することを示唆しており、ダニ咬傷後のIgEレベルのα-Galへの20倍以上の増加19、AGS20,21,22患者のダニ咬傷の病歴、AGS患者におけるダニ抗原に反応する抗体の存在19 抗α-Gal IgEは抗ダニIgEレベル19,23と強く関連していますが、どの生体分子が実際に関与しているかを評価するにはさらなる研究が必要です。

さらに、別の考えられるシナリオは、ダニ刺されおよび高レベルの抗α-Gal IgE抗体に対して強いアレルギー反応を示すが、哺乳類の肉の消費に耐性がある患者です12。したがって、哺乳類の肉アレルギーは、特定のタイプのダニ咬傷関連アレルギーである可能性があります。AGSに関連する主なダニ種には、Amblyomma americanum(米国)、Amblyomma sculptum(ブラジル)、Amblyomma testudinariumおよびHaemaphysalis longicornis(日本)、Ixodes holocyclus(オーストラリア)、およびIxodes ricinus(ヨーロッパにおけるライムボレリア症の主なベクター)が含まれます11,24

マダニ刺されに関連するIgE産生を評価するために使用された唯一のモデルは、他の哺乳類と同様に、マウスもタンパク質および脂質上にα-Galを発現し、α-GalにIgEを産生しないため、α−1,3−ガラクトース転移酵素ノックアウト(α−Gal KO)マウス25,26の遺伝子で遺伝子改変されたマウスモデルである。しかし、ゼブラフィッシュ(Danio rerio)は、哺乳類と解剖学的に多くの類似点を共有し、人間と同様にα-Galを合成することができないため、哺乳類に適用される生物医学研究に有用なモデルです。α-Galはゼブラフィッシュで自然に生成されないため、手頃な価格のモデルであり、操作が容易で、α-Gal関連のアレルギー反応の研究に高いサンプルサイズを可能にします。

この研究では、ゼブラフィッシュをモデル生物として使用して、局所アレルギー反応、行動パターン、およびダニ唾液26,27およびその後の哺乳類肉消費に対する経皮感作への反応に関連する分子メカニズムを特徴付け、説明しています。この目的のために、魚は皮内注射によってダニの唾液にさらされ、次にα-Gal27を含む動物の使用に適した哺乳類の肉由来製品を含む犬の飼料を与え、次に関連するアレルギー反応の可能性を評価します。この方法は、アレルギープロセスに関連する他の生体分子、特にAGSに関連する生体分子の研究に適用できます。

Protocol

ここに記載されているすべての方法は、カスティーリャラマンチャ大学の動物実験に関する倫理委員会によって、「不活化M. ボビス ワクチンに対する免疫応答の評価とゼブラフィッシュモデル番号PR-2017-05-12の M.マリナム への挑戦」の研究の下で承認されています。 ダニは実験室コロニーから得られ、コロニー内のダニの代表的なサンプルは、病原体の不?…

Representative Results

ここで提示されたプロトコルは、以前に発表された実験27,30のいくつかの側面と、ゼブラフィッシュモデルが確立され、AGSの研究とα-Galに対する免疫応答のために検証された私たちの研究室で実行された結果に基づいています。このモデルは、ダニの唾液に対する宿主の反応(図4)の結果としてのさまざまなア…

Discussion

ゼブラフィッシュは費用対効果が高く扱いやすいモデルであり、免疫応答、病原体疾患、新薬検査、ワクチン接種および感染に対する防御の分子メカニズムの研究のための非常に実行可能なツールでもあります33,34,35。ゼブラフィッシュの行動に関する研究は、以前の研究では、ストレスがかかっても水槽の底で動かず、?…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

SaBioグループのメンバーが実験計画に協力し、魚類実験施設とゼブラフィッシュを提供してくれたフアンガルセランサエス(IN-CSIC-UMH、スペイン)との技術支援に感謝します。この作業は、スペインおよびEU-FEDERのMCIN/AEI/10.13039/501100011033のMinisterio de Ciencia e Innovación/Agencia Estatal de Investigación MCIN/AEI/10.13039/(Grant BIOGAL PID2020-116761GB-I00)の支援を受けました。マリネラコントレラスは、スペインのイノバシオン大学シエンシア大臣から資金提供を受けており、IJC2020-042710-Iの助成金を受けています。

Materials

1.5 mL tube VWR 525-0990
All Prep DNA/RNA Qiagen 80284
Aquatics facilities
BCA Protein Assay Kit  Thermo Fisher Scientific 23225
Disection set VWR 631-1279
Dog Food – Red Classic Acana
ELISA plates-96 well Thermo Fisher Scientific 10547781
Gala1-3Gal-BSA 3 (α-Gal)  Dextra NGP0203
iScript Reverse Transcription Supermix Supermix 1708840
Microliter syringes Hamilton 7638-01
Plate reader any
Phosphate buffered saline Sigma P4417-50TAB
pilocarpine hydrochloride  Sigma P6503
Pipette tip P10  VWR 613-0364
Pipette tip P1000 VWR 613-0359
Premium food tropical fish DAPC
Sponge Animal Holder  Made from scrap foam
Stereomicroscope any
Thermal Cycler Real-Time PCR any
Tricaine methanesulphonate (MS-222) Sigma E10521

References

  1. de la Fuente, J., Estrada-Pena, A., Venzal, J. M., Kocan, K. M., Sonenshine, D. E. Overview: Ticks as vectors of pathogens that cause disease in humans and animals. Frontiers in Bioscience: A Journal and Virtual Library. 13 (18), 6938-6946 (2008).
  2. de la Fuente, J., et al. Tick-pathogen interactions and vector competence: identification of molecular drivers for tick-borne diseases. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 7, 114 (2017).
  3. Villar, M., et al. Characterization of tick salivary gland and saliva alphagalactome reveals candidate alpha-gal syndrome disease biomarkers. Expert Review of Proteomics. 18 (12), 1099-1116 (2021).
  4. Chmelař, J., Kotál, J., Kovaříková, A., Kotsyfakis, M. The use of tick salivary proteins as novel therapeutics. Frontiers in Physiology. 10, 812 (2019).
  5. Chung, C. H., et al. Cetuximab-induced anaphylaxis and IgE specific for galactose-alpha-1,3-galactose. The New England Journal of Medicine. 358 (11), 1109-1117 (2008).
  6. Van Nunen, S. A., O’Connor, K. S., Clarke, L. R., Boyle, R. X., Fernando, S. L. An association between tick bite reactions and red meat allergy in humans. The Medical Journal of Australia. 190 (9), 510-511 (2009).
  7. Cabezas-Cruz, A., et al. Environmental and molecular drivers of the α-Gal syndrome. Frontiers in Immunology. 10, 1210 (2019).
  8. de la Fuente, J., Pacheco, I., Villar, M., Cabezas-Cruz, A. The alpha-Gal syndrome: new insights into the tick-host conflict and cooperation. Parasites & Vectors. 12 (1), 154 (2019).
  9. Platts-Mills, T. A. E., et al. On the cause and consequences of IgE to galactose-α-1,3-galactose: A report from the National Institute of Allergy and Infectious Diseases workshop on understanding IgE-mediated mammalian meat allergy. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 145 (4), 1061-1071 (2020).
  10. Commins, S. P., et al. Delayed anaphylaxis, angioedema, or urticaria after consumption of red meat in patients with IgE antibodies specific for galactose-alpha-1,3-galactose. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 123 (2), 426-433 (2009).
  11. Platts-Mills, T. A. E., Schuyler, A. J., Tripathi, A., Commins, S. P. Anaphylaxis to the carbohydrate side chain alpha-gal. Immunology and Allergy Clinics of North America. 35 (2), 247-260 (2015).
  12. Mateos-Hernández, L., et al. Tick-host conflict: immunoglobulin E antibodies to tick proteins in patients with anaphylaxis to tick bite. Oncotarget. 8 (13), 20630-20644 (2017).
  13. Galili, U. Evolution in primates by "Catastrophic-selection" interplay between enveloped virus epidemics, mutated genes of enzymes synthesizing carbohydrate antigens, and natural anti-carbohydrate antibodies. American Journal of Physical Anthropology. 168 (2), 352-363 (2019).
  14. Hilger, C., Fischer, J., Wölbing, F., Biedermann, T. Role and mechanism of galactose-alpha-1,3-galactose in the elicitation of delayed anaphylactic reactions to red meat. Current Allergy and Asthma Reports. 19 (1), 3 (2019).
  15. Cabezas-Cruz, A., Valdés, J., de la Fuente, J. Cancer research meets tick vectors for infectious diseases. The Lancet. Infectious Diseases. 14 (10), 916-917 (2014).
  16. Yilmaz, B., et al. Gut microbiota elicits a protective immune response against malaria transmission. Cell. 159 (6), 1277-1289 (2014).
  17. Cabezas-Cruz, A., et al. Regulation of the immune response to α-Gal and vector-borne diseases. Trends in Parasitology. 31 (10), 470-476 (2015).
  18. Weins, A. B., Eberlein, B., Biedermann, T. Diagnostics of alpha-gal syndrome: Current standards, pitfalls and perspectives. Der Hautarzt; Zeitschrift Fur Dermatologie, Venerologie, Und Verwandte Gebiete. 70 (1), 36-43 (2019).
  19. Commins, S. P., et al. The relevance of tick bites to the production of IgE antibodies to the mammalian oligosaccharide galactose-α-1,3-galactose. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 127 (5), 1286-1293 (2011).
  20. Fischer, J., Yazdi, A. S., Biedermann, T. Clinical spectrum of α-Gal syndrome: from immediate-type to delayed immediate-type reactions to mammalian innards and meat. Allergo Journal International. 25 (2), 55-62 (2016).
  21. Hodžić, A., et al. Infection with Toxocara canis inhibits the production of IgE antibodies to α-Gal in humans: towards a conceptual framework of the hygiene hypothesis. Vaccines. 8 (2), 167 (2020).
  22. Kiewiet, M. B. G., et al. Clinical and serological characterization of the α-Gal syndrome-importance of atopy for symptom severity in a European cohort. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. In Practice. 8 (6), 2027-2034 (2020).
  23. Steinke, J. W., Platts-Mills, T. A. E., Commins, S. P. The alpha-gal story: lessons learned from connecting the dots. The Journal of Allergy and Clinical Immunology. 135 (3), 589-596 (2015).
  24. Hashizume, H., et al. Repeated Amblyomma testudinarium tick bites are associated with increased galactose-α-1,3-galactose carbohydrate IgE antibody levels: A retrospective cohort study in a single institution. Journal of the American Academy of Dermatology. 78 (6), 1135-1141 (2018).
  25. Chandrasekhar, J. L., et al. Cutaneous exposure to clinically relevant lone star ticks promotes IgE production and hypersensitivity through CD4+ T cell- and MyD88-dependent pathways in mice. Journal of Immunology. 203 (4), 813-824 (2019).
  26. Araujo, R. N., et al. Amblyomma sculptum tick saliva: α-Gal identification, antibody response and possible association with red meat allergy in Brazil. International Journal for Parasitology. 46 (3), 213-220 (2016).
  27. Contreras, M., et al. Allergic reactions and immunity in response to tick salivary biogenic substances and red meat consumption in the zebrafish model. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 10, 78 (2020).
  28. Poole, N. M., Mamidanna, G., Smith, R. A., Coons, L. B., Cole, J. A. Prostaglandin E(2) in tick saliva regulates macrophage cell migration and cytokine profile. Parasites & Vectors. 6 (2), 261 (2013).
  29. Seibel, H., Baßmann, B., Rebl, A. Blood will tell: what hematological analyses can reveal about fish welfare. Frontiers in Veterinary Science. 8, 616955 (2021).
  30. Pacheco, I., et al. Vaccination with alpha-gal protects against mycobacterial infection in the zebrafish model of tuberculosis. Vaccines. 8 (2), 195 (2020).
  31. Gupta, T., Mullins, M. C. Dissection of organs from the adult zebrafish. Journal of Visualized Experiments. (37), e1717 (2010).
  32. Lu, M. -. W., et al. The interferon response is involved in nervous necrosis virus acute and persistent infection in zebrafish infection model. Molecular Immunology. 45 (4), 1146-1152 (2008).
  33. Saralahti, A., et al. Adult zebrafish model for pneumococcal pathogenesis. Developmental and Comparative Immunology. 42 (2), 345-353 (2014).
  34. Gore, A. V., Pillay, L. M., Venero Galanternik, M., Weinstein, B. M. The zebrafish: A fintastic model for hematopoietic development and disease. Wiley Interdisciplinary Reviews. Developmental Biology. 7 (3), 312 (2018).
  35. Katoch, S., Patial, V. Zebrafish: An emerging model system to study liver diseases and related drug discovery. Journal of Applied Toxicology. 41 (1), 33-51 (2021).
  36. Kalueff, A. V., et al. Towards a comprehensive catalog of zebrafish behavior 1.0 and beyond. Zebrafish. 10 (1), 70-86 (2013).
  37. Xin, N., Jiang, Y., Liu, S., Zhou, Y., Cheng, Y. Effects of prednisolone on behavior and hypothalamic-pituitary-interrenal axis activity in zebrafish. Environmental Toxicology and Pharmacology. 75, 103325 (2020).
  38. Aleström, P., et al. Zebrafish: Housing and husbandry recommendations. Laboratory Animals. 54 (3), 213-224 (2020).
check_url/kr/64378?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Contreras, M., González-García, A., de la Fuente, J. Zebrafish Animal Model for the Study of Allergic Reactions in Response to Tick Saliva Biomolecules. J. Vis. Exp. (187), e64378, doi:10.3791/64378 (2022).

View Video