Her presenterer vi protokoller for identifisering og rensing av eggstokkceller fra antralfollikler. Vi utdyper metoder for behandling av hele eggstokker for kryopreservering av kortikale strimler samtidig som vi høster intakte antralfollikler som behandles enzymatisk for å frigjøre flere follikkelboende celletyper, inkludert granulosa, theca, endotel, hematopoietiske og stromale celler.
Aktivering, vekst, utvikling og modning av oocytter er en kompleks prosess som koordineres ikke bare mellom flere celletyper av eggstokken, men også over flere kontrollpunkter innenfor hypothalamus / hypofysen / eggstokkkretsen. Innenfor eggstokken vokser flere spesialiserte celletyper i nær tilknytning til oocytten i eggstokkfolliklene. Biologien til disse cellene har blitt godt beskrevet i senere stadier, når de lett gjenvinnes som biprodukter av assistert reproduktiv behandling. Imidlertid utføres den grundige analysen av små antralfollikler isolert direkte fra eggstokken ikke vanligvis på grunn av mangel på humant eggstokkvev og begrenset tilgang til eggstokken hos pasienter som gjennomgår assistert reproduktiv behandling.
Disse metodene for behandling av hele eggstokkene for kryopreservering av kortikale strimler med samtidig identifisering / isolering av ovariebosatte celler muliggjør høyoppløselig analyse av de tidlige stadiene av antralfollikelutvikling. Vi demonstrerer protokoller for å isolere diskrete celletyper ved å behandle antralfollikler enzymatisk og separere granulosa-, theca-, endotel-, hematopoietiske og stromale celler. Isoleringen av celler fra antralfolliklene i forskjellige størrelser og utviklingsstadier muliggjør omfattende analyse av de cellulære og molekylære mekanismene som driver follikelvekst og ovariefysiologi og gir en kilde til levedyktige celler som kan dyrkes in vitro for å rekapitulere follikelmikromiljøet.
De primære funksjonelle elementene i den menneskelige eggstokken er folliklene, som styrer veksten og utviklingen av oocytter. Protokoller for isolering av follikulære celler er godt etablert i sammenheng med in vitro-fertilisering , men disse er bare egnet for innsamling av celler fra luteiniserte follikler ved punktet for uthenting av oocytt1. Vi har utviklet en protokoll som muliggjør isolering av diskrete cellepopulasjoner fra antralfollikler i forskjellige utviklingsstadier som oppstår fra innfødte eggstokker eller xenotransplantert eggstokkvev2. Selv om det er enighet om at bidragene fra follikkelbosatte celler til dyrking av oocytten er svært viktige, har få studier prospektivt identifisert og ekstrahert de unike fenotypiske subtypene som er tilstede i antralstadiumfollikler. En dypere forståelse av differensieringshierarkiet og signaltransduksjon mellom spesialiserte celler under de forskjellige utviklingsstadiene kan utvide vår forståelse av ovariefysiologi under homeostatiske og patologiske forhold. Videre kan diskriminering av diskrete cellulære subtyper og deres molekylære bidrag til follikelvekst / modning gi et middel til å generere ex vivo surrogater som rekonstruerer ovariefunksjonen for å fremme oocytmodning og / eller behandle endokrin dysfunksjon.
Hver unik celletype i eggstokken bidrar til follikkelens komplekse funksjon, som effektivt fungerer som et diskret miniorgan for å fremme veksten og modningen av oocytten den inneholder. Oocytten, midtpunktet i follikkelen, er direkte innhyllet av et kontinuerlig lag av granulosa-celler (GC), med theca-cellene (TC) som danner et sekundært lag av celler som kombinerer med oocytten og GCene for å komponere follikulærenheten. Selv om de er klassifisert i to grupper, inneholder GC og TC mange undertyper. GC er klassifisert i henhold til deres posisjon i follikkelen; GCer som omgir oocytten versus de som ligger ved siden av kjellermembranen, er betegnet som henholdsvis oophorous og mural GCs, og disse undertypene viser unike transkriptomiske signaturer. TCs har mange subtyper som fungerer for å gi steroidogen, metabolsk og strukturell støtte. Endotel-, perivaskulære og immunceller spiller en sentral rolle i å opprettholde normal ovariefysiologi. Ovarial stroma tjener ikke bare som et substrat for follikelvekst, men gir også sannsynligvis en kilde til forfedre som gir opphav til TCS. Dette flerlagskomplekset av cellulære subtyper i eggstokken er det som gjør det mulig å fungere som både et endokrint og et reproduktivt organ.
Dette papiret presenterer en protokoll for identifisering og rensing av granulosa, theca, stromale, endoteliske og hematopoietiske celler fra antralfollikler. Vi har brukt denne protokollen til å isolere disse eggstokkcellene og analysere dem ved hjelp av enkeltcellesekvensering, etterfulgt av spesifikk farging i follikler av forskjellige utviklingsstadier. Protokollen gir en enkel metodikk som er replikerbar og vil muliggjøre høyoppløselig analyse av både fysiologi og patologi av eggstokken.
Bedre oppløsning av det cellulære mangfoldet i eggstokkfolliklene er klinisk viktig av flere grunner. Ved anvendelse av ovennevnte protokoll på isolering av de unike fenotypiske subtypene som ligger i antralstadiefollikler, bør flere faktorer vurderes. For det første er helsen og levedyktigheten til eggstokkvevet hvorfra antralfollikkelen er avledet, avgjørende for å bestemme kvaliteten på cellene og suksessen til nedstrøms applikasjoner. Dette kan optimaliseres ved å minimere det iskemiske intervallet, arbeide…
The authors have nothing to disclose.
Forfatterne anerkjenner støtte fra Queenie Victorina Neri Research Scholar Award (DJ) og Hung-Ching Liu Research Scholar Award (LM). N.L.G støttes av NYSTEM Stem Cell and Regenerative Medicine postdoctoral training grant.
Chemicals, reagents | |||
Antibiotic-Antimycotic 100x | Thermo Fisher Scientific | 15240062 | Anti-Anti |
Antifade Mountant solution | Thermo Fisher Scientific | P36930 | ProLong Gold |
Collagenase from Clostridium histolyticum | Millipore Sigma | C 2674 | |
DAPI | Thermo Fisher Scientific | D1306 | |
Dispase II, powder | Thermo Fisher Scientific | 17105041 | |
DMSO | Millipore Sigma | D 2650 | Dimethyl sulfoxide |
DPBS, no calcium, no magnesium | Thermo Fisher Scientific | 14190144 | |
Enzyme Cell Detachment Medium | Thermo Fisher Scientific | 00-4555-56 | Accutase |
Fetal Bovine Serum, heat-inactivated | Thermo Fisher Scientific | 10438026 | |
Hanks′ Balanced Salt solution | Thermo Fisher Scientific | 14175079 | no calcium, no magnesium, no phenol red |
Leibovitz’s L-15 medium | Thermo Fisher Scientific | 11415064 | |
Normal Saline | Quality Biological | 114-055-101 | |
Sucrose | Millipore Sigma | S 1888 | |
Freezing Medium (100 mL, filtered through a 0.2 micron filter) | |||
– 69.64 mL of Leibovitz's L-15 | |||
– 17.66 mL of fetal bovine serum | |||
– 3.42 g of sucrose | |||
– 10.65 mL of DMSO | |||
– 1 mL of antibiotic-antimycotic | |||
Lab Plasticware and Supplies | |||
6-well Clear Flat Bottom Not Treated | Corning | 351146 | Falcon |
Cell Strainer 100 µm | Fisher scientific | 352360 | Corning, Falcon |
Cryovials | Thermo Fisher Scientific | 377267 | CryoTube 1.8 mL |
Petri dish, D x H 150 mm x 25 mm | Millipore Sigma | CLS430599 | 60EA |
Round-Bottom Polystyrene Test Tubes with Cell Strainer Snap Cap, 5 mL | Fisher scientific | 352235 | Corning, Falcon |
Vacuum Filter/Storage Bottle System, 0.22 µm | Corning | 431154 | |
Antibodies | |||
ANPEP | BioLegend | 301703 | |
CD34 | R&D Systems | FAB7227A | |
CD45 | BioLegend | 304019 | |
CD55 | BioLegend | 311306 | |
CD 99 | BioLegend | 371308 | |
PVRL | BioLegend | 340404 | |
Surgical tools | |||
long forceps (~150 mm length) | Fisherbrand | 12-000-128 | Fisher Scientific |
medium forceps (~110 mm length) | Fisherbrand | 12-000-157 | Fisher Scientific |
number 21 scalpel | Andwin Scientific | EF7281H | Fisher Scientific |
number 11 scalpel | Andwin Scientific | FH/CX7281A | Fisher Scientific |
sharp fine curved scissors | Roboz Surgical | RS-5881 | |
Instruments | |||
FACSJazz Flourescence activated cell sorter | BD | ||
LSM 710 META Confocal microscope | Zeiss |