Her presenterer vi en detaljert protokoll som beskriver bruken av mikrovaskulære fragmenter isolert fra gnagere eller humant fettvev som en enkel tilnærming til å konstruere funksjonelt, vaskularisert beige fettvev.
Engineering termogenic fettvev (f.eks beige eller brunt fettvev) har blitt undersøkt som en potensiell terapi for metabolske sykdommer eller for utforming av personlige mikrovev for helse screening og narkotika testing. Nåværende strategier er ofte ganske komplekse og klarer ikke å nøyaktig skildre de multicellulære og funksjonelle egenskapene til termogent fettvev. Mikrovaskulære fragmenter, små intakte mikrofartøyer som består av arteriol, venuler og kapillærer isolert fra fettvev, tjener som en enkelt autolog kilde til celler som muliggjør vaskularisering og fettvevdannelse. Denne artikkelen beskriver metoder for å optimalisere kulturforhold for å muliggjøre generering av tredimensjonale, vaskulariserte og funksjonelle termogene fettvev fra mikrovaskulære fragmenter, inkludert protokoller for isolering av mikrovaskulære fragmenter fra fettvev og kulturforhold. I tillegg diskuteres beste praksis, som er teknikker for å karakterisere de konstruerte vevene, og prøveresultater fra både gnagere og humane mikrovaskulære fragmenter er gitt. Denne tilnærmingen har potensial til å bli utnyttet for forståelse og utvikling av behandlinger for fedme og metabolsk sykdom.
Målet med denne protokollen er å beskrive en tilnærming for å utvikle vaskularisert beige fettvev fra en enkelt, potensielt autolog kilde, mikrovaskulært fragment (MVF). Brunt og beige fettvev har vist seg å vise fordelaktige egenskaper knyttet til metabolsk regulering; Det lille volumet av disse fettvevsdepotene hos voksne begrenser imidlertid den potensielle effekten på systemisk metabolisme, spesielt ved syke tilstander som fedme eller type 2 diabetes 1,2,3,4,5,6,7. Det er betydelig interesse for brunt/beige fett som terapeutisk mål for å forebygge skadelige metabolske effekter knyttet til fedme og dets komorbiditeter 8,9,10,11,12.
MVFer er fartøystrukturer som kan isoleres direkte fra fettvev, dyrkes og opprettholdes i en tredimensjonal konfigurasjon i lengre perioder13,14,15. Tidligere arbeid fra vår gruppe, og andre, har begynt å utnytte den multicellulære og multipotente kapasiteten til MVFer, spesielt når det gjelder fettvevdannelse16,17,18. Som en oppbygging av dette arbeidet demonstrerte vi nylig at MVFer avledet fra gnagermodeller av sunn og type 2 diabetes19 og fra mennesker (voksne over 50 år)20 inneholdt celler som kunne induseres til å danne termogent eller beige fettvev.
Her er en innovativ tilnærming hvorfra en enkelt kilde MVF benyttes, ikke bare i stand til å skape beige fettvev, men også den tilhørende og kritiske vaskulære komponenten21. Bruken av denne teknikken kan være av stor verdi for studier som leter etter en enkel vevskonstruert tilnærming for termogen fettvevdannelse. I motsetning til andre metoder som aspirerer til å konstruere beige fettvev 22,23,24,25,26,27,28, krever prosessen beskrevet i denne studien ikke bruk av flere celletyper eller komplekse induksjonsregimer. Vaskulariserte beige og hvite fettmodeller kan opprettes med MVF-er som stammer fra gnagere og menneskelige kilder, noe som viser stort oversettelsespotensial. Sluttproduktet av denne protokollen er et konstruert beige termogent fettvev med en struktur og metabolsk funksjon som kan sammenlignes med brunt fettvev. Samlet sett presenterer denne protokollen ideen om at en lett tilgjengelig og muligens autolog kilde MVF kan være et verdifullt terapeutisk inngrep og verktøy for å studere metabolske forstyrrelser.
Feltet brun/beige fettvevsteknikk er stort sett umodent 22,23,24,25,26,27,28, med hovedtyngden av fettmodeller utviklet for hvitt fettvev 8,22,31. Konstruerte brune / beige mikrovev består vanligvi…
The authors have nothing to disclose.
Dr. Acosta støttes av National Institutes of Health tilskudd CA148724 og TL1TR002647. Dr. Gonzalez Porras støttes av National Institute of Diabetes og fordøyelses- og nyresykdommer ved National Institutes of Health, under prisnummer F32-0DK122754. Dette arbeidet ble delvis støttet av National Institutes of Health (5SC1DK122578) og University of Texas i San Antonio Department of Biomedical Engineering. Innholdet er utelukkende forfatternes ansvar og representerer ikke nødvendigvis de offisielle synspunktene til National Institutes of Health. Figurene ble delvis laget med Biorender.com.
Aminocaproic Acid | Sigma Aldrich | A2504-100G | Added in DMEM at the concentration of 1 mg/mL |
Blunt-Tipped Scissors | Fisher scientific | 12-000-172 | Sterilize in autoclave |
Bovin Serum Albumin (BSA) | Millipore | 126575-10GM | Diluted in PBS to 4 mg/mL and 1 mg/mL |
Collagenase Type 1 | Fisher scientific | NC9633623 | Diluted to 6 mg/mL in BSA 4 mg/mL, Digestion of minced fat |
Dexamethasone | Thermo Scientific | AC230302500 | Diluted in ethanol at a 2 mg/ml stock concentration |
Disposable underpads | Fisher scientific | 23-666-062 | For fluid absorption during surgery |
Dissecting Scissors | Fisher scientific | 08-951-5 | Sterilize in autoclave |
Dulbecco′s Modified Eagle′s Medium (DMEM) | Fisher scientific | 11885092 | |
Dulbecco′s Modified Eagle′s Medium/Nutrient Mixture F-12 Ham (DMEM/F12) | Sigma Aldrich | D8062 | |
Fetal Bovine Serum | Fisher scientific | 16140089 | Added in DMEM to 20% v/v. |
Fibrinogen | Sigma Aldrich | F8630-25G | Solubilized in DMEM at the concentration of 20 mg/mL, Protein found in blood plasma and main component of hydrogel |
Flask, 250 mL | Fisher scientific | FB500250 | Allows for digestion of fat using a large surface area |
Forceps | Fisher scientific | 50-264-21 | Sterilize in autoclave, For handling of tissue and filters |
Forskolin | Sigma Aldrich | F6886 | Diluted in ethanol at a 10 mM stock concentration |
Human MVF | Advanced Solutions Life Scienes, LLC | https://www.advancedsolutions.com/microvessels | Human MVFs (hMVFs) isolated from three different patients (52-, 54-, and 56-year old females) were used in the current study. |
Indomethacine | Sigma Aldrich | I7378 | Diluted in ethanol at a 12.5 mM stock concentration |
Insulin from porcine pancreas | Sigma Aldrich | I5523 | Diluted in 0.01 N HCl at a 5 mg/ml stock concentration |
MycoZap | Fisher scientific | NC9023832 | Added in DMEM to 0.2% w/v, Mycoplasma Prophylactic |
Pennycilin/Streptomycin (10,000 U/mL) | Fisher scientific | 15140122 | Added in DMEM to 1% v/v. |
Petri dishes, polystyrene (100 mm x 15 mm). | Fisher scientific | 351029 | 3 for removal of blood vessels and mincing, 8 (lid) for presoaking of screens & 8 (dish) for use when filtering with 500 or 37 µM screens |
Petri dishes, polystyrene (35 mm x 10 mm). | Fisher scientific | 50-202-036 | For counting fragments |
Phosphate Buffer Saline (PBS) | Fisher scientific | 14-190-250 | Diluted to 1x with sterile deionized water. |
Rat Clippers (Andwin Mini Arco Pet Trimmer) | Fisher scientific | NC0854141 | |
Rosiglitazone | Fisher scientific | R0106200MG | Diluted in DMSO at a 10 mM stock concentration |
Scissors | Fine Science Tools | 14059-11 | 1 for initial incision, 1 for epididymal incision, 1 for tip clipping |
Screen 37 µM | Carolina Biological Supply Company | 652222R | Cut into 3" rounded squares and sterilized in ethylene oxide, Fragment entrapment and removal of very small fragments/single cells and debris |
Screen 500 µM | Carolina Biological Supply Company | 652222F | Cut into 3" rounded squares and sterilized in ethylene oxide, Removes larger fragments/debris |
Serrated Hemostat | Fisher scientific | 12-000-171 | Sterilize in autoclave, For clamping of skin before incision |
Steriflip Filter 0.22 μm | Millipore | SE1M179M6 | |
Thrombin | Fisher scientific | 6051601KU | Diluted in deionzed water to 10 U/mL, Used as a clotting agent turning fibrinogen to fibrin |
Thyroid hormone (T3) | Sigma Aldrich | T2877 | Diluted in 1N NaOH at a 0.02 mM stock concentration |
Zucker diabetic fatty (ZDF) rats – obese (FA/FA) or lean (FA/+) male | Charles River | https://www.criver.com/products-services/find-model/zdf-rat-lean-fa?region=3611 https://www.criver.com/products-services/find-model/zdf-rat-obese?region=3611 |
Obtained from Charles River (Wilmington, MA). Rats were acquired at 4 weeks of age and fed Purina 5008 until euthanasia (15-19 weeks of age). Glucose levels (blood from the lateral saphenous vein) were greater than 300 mg/dL in all FA/FA rats used in the study. All animals were housed in a temperature-controlled environment with a 12-h light-dark cycle and fed ad libitum. |