Summary

Avaliação Ultrassonográfica Não Invasiva da Progressão do Câncer de Endométrio na Deleção Dirigida por Pax8 dos Supressores Tumorais Arid1a e Pten em Camundongos

Published: February 17, 2023
doi:

Summary

Este protocolo descreve um método para monitorar a progressão das alterações morfológicas ao longo do tempo no útero em um modelo induzível de câncer de endométrio em camundongos usando imagens ultrassonográficas com correlação com alterações macroscópicas e histológicas.

Abstract

Os cânceres uterinos podem ser estudados em camundongos devido à facilidade de manuseio e manipulação genética nesses modelos. No entanto, esses estudos são frequentemente limitados a avaliar patologia post-mortem em animais eutanasiados em vários momentos em diferentes coortes, o que aumenta o número de camundongos necessários para um estudo. Imagens de camundongos em estudos longitudinais podem rastrear a progressão da doença em animais individuais, reduzindo o número de camundongos necessários. Os avanços na tecnologia de ultrassom têm permitido a detecção de alterações no nível micrométrico dos tecidos. A ultrassonografia tem sido usada para estudar a maturação dos folículos nos ovários e o crescimento do xenoenxerto, mas não tem sido aplicada às alterações morfológicas no útero de camundongos. Este protocolo examina a justaposição de patologia com comparações de imagens in vivo em um modelo de camundongo com câncer de endométrio induzido. As características observadas pela ultrassonografia foram consistentes com o grau de alteração observado pela patologia macroscópica e histologia. A ultrassonografia mostrou-se altamente preditiva da patologia observada, apoiando a incorporação da ultrassonografia em estudos longitudinais de doenças uterinas, como câncer em camundongos.

Introduction

Camundongos continuam sendo um dos modelos animais mais importantes para distúrbios reprodutivos 1,2,3. Existem vários modelos de roedores geneticamente modificados ou induzidos de câncer de ovário e útero. Esses estudos tipicamente se baseiam em múltiplas coortes eutanasiadas em diferentes momentos para capturar tendências longitudinais em alterações morfológicas e patológicas. Isso impede a capacidade de adquirir dados contínuos sobre o desenvolvimento do câncer em um camundongo individual. Além disso, sem conhecer o estado de progressão da doença individual em camundongos, os estudos de intervenção são baseados em pontos de tempo predeterminados e achados médios de coortes anteriores, em vez de limiares individuais para a detecção de progressão em um animalespecífico4,5. Portanto, abordagens de imagem que permitam a avaliação longitudinal em animais vivos são necessárias para facilitar modelos pré-clínicos para testar novos fármacos ou compostos e acelerar o entendimento da fisiopatologia, além de aumentar o rigor e a reprodutibilidade6.

A ultrassonografia (US) é um método atraente para o monitoramento longitudinal da progressão do câncer uterino de camundongos, pois é relativamente fácil e barato em comparação com outros métodos de imagem, é fácil de realizar e pode ter resolução notável 6,7. Esta modalidade não invasiva pode capturar características à escala de mícrons em camundongos acordados ou com camundongos sob sedação breve usando um exame de 5-10 minutos. A microscopia ultrassônica foi validada como método para medir o desenvolvimento de folículos ovarianos de camundongos 8 e o crescimento de neoplasias implantadas ou induzidas 9,10,11. A US de alta frequência também tem sido utilizada para injeções intrauterinas percutâneas12 e observação de alterações uterinas em ratas ao longo do ciclo estral13. O US de alta frequência pode ser usado com ratos mantidos em plataformas estacionárias especializadas usando um sistema de trilho para segurar o transdutor/sonda para capturar imagens de alta resolução com posição e pressão padronizadas; no entanto, esse equipamento não está disponível em todas as instituições. Os métodos de varredura por transdutor portátil podem ser adotados com equipamentos menos dedicados e usados tanto para diagnósticos clínicos quanto para aplicações de pesquisa em camundongos.

Resta saber se as imagens dos EUA com sondas portáteis de alta frequência poderiam ser usadas para monitorar o desenvolvimento do câncer uterino ao longo de várias semanas. Semelhante aos intestinos, o útero do roedor é uma estrutura de paredes finas e delgadas, que é muito móvel dentro do abdômen e é contígua através de múltiplas profundidades de tecido, tornando a imagem mais desafiadora do que com órgãos relativamente imóveis, como os rins. Este estudo buscou estabelecer a correlação entre os tecidos observados pela ultrassonografia e histopatologia, definir pontos de referência para a localização do útero de camundongos e determinar a viabilidade da avaliação longitudinal do câncer de endométrio. Este estudo apresenta dados que mostram uma correspondência qualitativa entre a aparência das imagens uterinas por US e a histopatologia, bem como imagens seriadas de camundongos ao longo de várias semanas. Esses resultados indicam que o US portátil pode ser usado para monitorar o desenvolvimento do câncer de endométrio em camundongos, criando assim uma oportunidade para coletar dados longitudinais individuais de camundongos para estudar o câncer uterino sem a necessidade de equipamentos dedicados.

Protocol

Todos os procedimentos e experimentos envolvendo camundongos foram realizados de acordo com protocolos aprovados pelo Comitê de Cuidados e Uso Animal da Johns Hopkins. Para todos os procedimentos, foram utilizados EPIs adequados, incluindo luvas e aventais de isolamento descartáveis. Precauções foram tomadas ao manusear materiais perfurocortantes, que foram descartados corretamente em recipientes de caixa vermelha de materiais perfurocortantes imediatamente após o uso. Consulte a Tabela de Materiais </strong…

Representative Results

Camundongos transgênicos Pax8-Cre-Arid1a-Pten de dupla deleção (iPAD) foram mantidos em um background genético misto (129S, BALB/C, C57BL/6), como descrito anteriormente14. Todos os camundongos foram alimentados com uma ração de doxiciclina por 2 semanas para induzir Cre recombinase. Em trabalhos anteriores de nosso grupo, a doxiciclina foi dosada por gavagem14; No entanto, neste estudo, o método de indução alimentar com doxiciclina funcionou efic…

Discussion

Este protocolo examina a utilidade da ultrassonografia para avaliar alterações morfológicas uterinas na progressão do adenocarcinoma no útero em camundongos. Neste estudo, ao acompanhar a indução do câncer de endométrio em camundongos longitudinalmente, os detalhes anatômicos detectados pela ultrassonografia mostraram-se indicadores de patologia macroscópica e histológica. Isso abre a porta para o uso de estudos longitudinais com um número menor de camundongos monitorados por ultrassom em vários pontos de t…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Somos gratos pelo financiamento do NCI Ovarian Cancer SPORE Program P50CA228991, do programa de treinamento de pós-doutorado 5T32OD011089 e do Richard W. TeLinde Endowment, Johns Hopkins University. O projeto também foi parcialmente financiado pelos subsídios para despesas correntes para Instituições Privadas de Ensino Superior da Corporação de Promoção e Ajuda Mútua para Escolas Privadas do Japão.

Materials

Reagents and Equipment Used for Animal Care
Rodent Diet (2018, 625 Doxycycline) Envigio TD.01306 Mouse Feed
Reagents and Equipment Used for Ultrasound Imaging
10 mL injectable 0.9% NaCl  Hospira, Inc RL-7302 Isotonic Fluid
Absorbent Pad with Plastic Backing Daigger EF8313 Absorbant Pads
Anesthesia Induction Chambers Harvard Apparatus 75-2029 Induction Chamber
Anesthetic absorber kit with absorber canister, holder, tubing, & adapters CWE, Inc 13-20000 Nose Cone and Tubing
Aquasonic Clear Ultrasound Gel (0.25 Liter) Parker Laboratoies 08-03 Ultrasound Gel
BD Plastipak 3 mL Syringe BD Biosciences 309657 Syringe
F/Air Scavenger Charcoal Canister OMNICON 80120 Scavenging System for Anesthesia
Isoflurane, USP Vet One 502017 Anesthesia Agent
M1050 Non-Rebreathing Mobile Anesthesia Machine Scivena Scientific M1050 Anestheic Vaporizer
MX550S, 25-55 MHz Transducer, 15mm, Linear VisualSonics MX550S Ultrasound Transducer (Probe)
Nair Hair Aloe & Lanolin Hair Removal Lotion – 9.0 oz Nair Depilliating Cream
Philips Norelco Multigroomer All-in-One Trimmer Series 7000 Philips North America MG7750 Clippers
PrecisionGlide 25 G 1" Needle BD Biosciences 305125 Needle
Puralube Ophthalmic Ointment Dechra 17033-211-38 Lubricating Eye Drops
Vevo 3100 Imaging System VisualSonics Vevo 3100 Ultrasound Machine
Vevo LAB 5.6.1 VisualSonics Vevo LAB 5.6.1 Ultrasound Analysis Software
Vinyl Heating Pad with cover, 12 x 15" Sunbeam 731-500-000R Heating Pad
Wd Elements 2TB Basic Storage Western Digital Elements WDBU6Y0020BBK-WESN Data Storage
Reagents and Equipment Used for Immunohistochemistry
10% w/v Formalin Fischer Scientific SF98-4 Tissue Fixation Buffer
Animal-Free Blocker and Diluent, R.T.U. Vector Laboratories Inc.  SP5035 Antibody Blocker
Charged Super Frost Plus Glass Slides VWR 4831-703 Tissue Mounting Slides
Citrate Buffer MilliporeSigma  C9999-1000ML Epitope Retrival Buffer (pTEN)
Cytoseal – 60 Thermo Scientific 8310-4 Resin for Slide Sealing
Gold Seal Cover Glass Thermo Scientific 3322 Coverslide
Harris Modified Hematoxylin MilliporeSigma HHS32-1L Counterstain Buffer
Hybridization Incubator (Dual Chamber) Fischer Scientific 13-247-30Q Oven to Melt Parraffin
ImmPACT DAB Substrate, Peroxidase (HRP) Vector Laboratories Inc. SK-4105 Signal Development Substrate
ImmPRESS HRP Goat Anti-Rabbit IgG Polymer Detection Kit, Peroxidase Vector Laboratories Inc. MP-7451 Secondary IHC Antibody
Oster 5712 Digital Food Steamer Oster 5712 Vegetable Steamer for Epitope Retrival
rabbit mAB anti-ARID1a abcam ab182560 Primary IHC Antibody (1:1,000)
rabbit mAB anti-PTEN Cell Signaling 9559 Primary IHC Antibody (1:100)
Scotts Tap Water Substitute MilliporeSigma S5134-100ML "Blueing" Buffer
Tissue Path IV Cassette Fischer Scientific 22272416 Tissue Fixation Cassette
Trilogy Buffer Cell Marque  920P-10 Epitope Retrival Buffer (ARID1a)

References

  1. Ajayi, A. F., Akhigbe, R. E. Staging of the estrous cycle and induction of estrus in experimental rodents: an update. Fertility Research and Practice. 6, 5 (2020).
  2. Kim, S. W., Kim, Y. Y., Kim, H., Ku, S. Y. Animal models closer to intrauterine adhesive pathology. Annals of Translational Medicine. 8 (18), 1125 (2020).
  3. Shi, D., Vine, D. F. Animal models of polycystic ovary syndrome: a focused review of rodent models in relationship to clinical phenotypes and cardiometabolic risk. Fertility and Sterility. 98 (1), 185-193 (2012).
  4. Greco, A., et al. Ultrasound biomicroscopy in small animal research: applications in molecular and preclinical imaging. Journal of Biomedicine and Biotechnology. 2012, 519238 (2012).
  5. Palsdottir, K., et al. Interobserver agreement of transvaginal ultrasound and magnetic resonance imaging in local staging of cervical cancer. Ultrasound in Obstetrics and Gynecology. 58 (5), 773-779 (2021).
  6. Gabrielson, K., et al. In vivo imaging with confirmation by histopathology for increased rigor and reproducibility in translational research: A review of examples, options, and resources. ILAR Journal. 59 (1), 80-98 (2018).
  7. Peterson, R. A., et al. Continuing education course #1: Non-invasive imaging as a problem-solving tool and translational biomarker strategy in toxicologic pathology. Toxicologic Pathology. 39 (1), 267-272 (2011).
  8. Pfeifer, L. F., Adams, G. P., Pierson, R. A., Singh, J. Ultrasound biomicroscopy: A non-invasive approach for in vivo evaluation of oocytes and small antral follicles in mammals. Reproduction, Fertility and Development. 26 (1), 48-54 (2013).
  9. Cheung, A. M., et al. Three-dimensional ultrasound biomicroscopy for xenograft growth analysis. Ultrasound in Medicine and Biology. 31 (6), 865-870 (2005).
  10. Snyder, C. S., et al. Complementarity of ultrasound and fluorescence imaging in an orthotopic mouse model of pancreatic cancer. BMC Cancer. 9, 106 (2009).
  11. Wu, G., Wang, L., Yu, L., Wang, H., Xuan, J. W. The use of three-dimensional ultrasound micro-imaging to monitor prostate tumor development in a transgenic prostate cancer mouse model. The Tohoku Journal of Experimental Medicine. 207 (3), 181-189 (2005).
  12. Rinaldi, S. F., et al. Ultrasound-guided intrauterine injection of lipopolysaccharide as a novel model of preterm birth in the mouse. The American Journal of Pathology. 185 (5), 1201-1206 (2015).
  13. Wang, T., et al. Ultrasonography in experimental reproductive investigations on rats. Journal of Visualized Experiments. 130, e56038 (2017).
  14. Suryo Rahmanto, Y., et al. Inactivation of Arid1a in the endometrium is associated with endometrioid tumorigenesis through transcriptional reprogramming. Nature Communications. 11, 2717 (2020).
  15. Pani, F., et al. Pre-existing thyroiditis ameliorates papillary thyroid cancer: Insights from a new mouse model. Endocrinology. 162 (10), bqab144 (2021).
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Vistein, R., Winer, B., Myers, S., Liberto, J., Ishiyama, S., Guo, X., Saeki, H., Wang, T., Shih, I., Gabrielson, K. Non-Invasive Ultrasound Assessment of Endometrial Cancer Progression in Pax8-Directed Deletion of the Tumor Suppressors Arid1a and Pten in Mice. J. Vis. Exp. (192), e64732, doi:10.3791/64732 (2023).

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