Denne grisemodellen innebærer kirurgisk instrumentering, kvelning til hjertestans, gjenopplivning og observasjon etter gjenopplivning. Modellen åpner for multippel prøvetaking per dyr, og ved bruk av kontinuerlig invasivt arterielt blodtrykk, EKG og ikke-invasiv kardial utgangsovervåking gir den kunnskap om hemodynamikk og hjertepatofysiologi ved perinatal asfyksi og neonatal hjerte-lunge-redning.
Nyfødte grisunger har blitt mye brukt som translasjonsmodeller for perinatal asfyksi. I 2007 tilpasset vi en veletablert grisasfyksimodell ved å innføre hjertestans. Dette gjorde det mulig å studere effekten av alvorlig asfyksi på viktige utfall, inkludert tiden det tar for retur av spontan sirkulasjon (ROSC), samt effekten av brystkompresjoner i henhold til alternative protokoller for hjerte-lunge-redning. På grunn av de anatomiske og fysiologiske likhetene mellom smågris og humane nyfødte, tjener grisungene som gode modeller i studier av kardiopulmonal gjenopplivning og hemodynamisk overvåking. Faktisk har denne hjertestansmodellen gitt bevis for retningslinjeutvikling gjennom forskning på gjenopplivingsprotokoller, patofysiologi, biomarkører og nye metoder for hemodynamisk overvåking. Spesielt kan det tilfeldige funnet at en betydelig brøkdel av grisene har pulsløs elektrisk aktivitet (PEA) under hjertestans, øke anvendeligheten av modellen (dvs. den kan brukes til å studere patofysiologi som strekker seg utover perinatalperioden). Modellgenereringen er imidlertid teknisk utfordrende og krever ulike ferdighetssett, dedikert personell og en fin balanse mellom tiltakene, inkludert kirurgiske protokoller og bruk av beroligende midler / smertestillende midler, for å sikre en rimelig overlevelse. I dette notatet er protokollen beskrevet i detalj, samt erfaringer med tilpasninger til protokollen gjennom årene.
Perinatal asfyksi er forårsaket av kompromittert gassutveksling (hypoksemi og hyperkapni) før, under og / eller etter fødselen. Det resulterer i redusert blodstrøm (iskemi) til vitale organer og påfølgende blandet respiratorisk og metabolsk acidose. Perinatal asfyksi er en vanlig fødselskomplikasjon som årlig forårsaker 580 000 spedbarnsdødsfall over hele verden1. Å redusere dette tallet er avgjørende for å redusere dødsfall hos nyfødte og barn under 5 år, som angitt i FNs bærekraftsmål nummer 3.2 (dvs. neonatal dødelighet <12 per 1000 levendefødte og under 5 dødelighet <25 per 1000 levendefødte)2.
Klinisk presenterer asfyksi seg som hypoksisk-iskemisk encefalopati (HIE), respirasjonsdepresjon og sirkulasjonssvikt hos det nyfødte barnet3 (dvs. symptomer og tegn på vitalorganhypoksi-iskemi)4. Følgelig kan et kvalt spedbarn trenge behandling for encefalopati, inkludert anfall, og avansert respiratorisk og sirkulasjonsstøtte. Globalt trenger så mange som 10 millioner spedbarn hvert år en eller annen form for intervensjon, for eksempel taktil stimulering, og 6-7 millioner spedbarn trenger assistert ventilasjon ved fødselen5. Dermed setter perinatal asfyksi en stor belastning på helsevesenet, med tilhørende sosioøkonomiske implikasjoner. For å redusere den globale sykdomsbyrden som tilskrives perinatal asfyksi, mener våre forskningsgrupper at følgende fokusområder bør undersøkes i vitenskapelige studier: forebygging, inkludert forbedring av prenatal og obstetrisk omsorg og oppfølging; prognostiske biomarkører; og optimalisert gjenopplivning og stabilisering på fødestuen6.
Nyfødte grisunger og menneskelige spedbarn ved nær sikt svangerskap har lignende anatomi og patofysiologi7. Selv om ingen dyremodell av perinatal asfyksi og hjertestans kan skape hele aspektet av mislykket perinatal overgang som fører til asfyksi og hjertestans, er grisene gode translasjonsmodeller.
Allerede på 1970-tallet utviklet vi en hypoksimodell hos voksne griser8. Det ble vellykket raffinert av forskningsgrupper9, og ga dermed en grismodell av perinatal asfyksi 10,11,12,13,14,15,16,17,18. I 2007 ble de første forsøkene med hjertestans hos grisunger utført ved Institutt for kirurgisk forskning ved Oslo universitetssykehus11,13,15,16. Arrestasjonsmodellen har gitt bevis for retningslinjeutvikling 10,13,15,16,19,20, samt store muligheter for fysiologiske studier og testing av utstyr/diagnostiske verktøy 14,21, gjenopplivingsprotokoller (randomiserte kontrollerte studier)13,15,16,22, og blod og vev biomarkører 10,12,20. Dermed har modellen vist seg å være allsidig, og en enkelt eksperimentell serie har tradisjonelt blitt brukt til å svare på flere forskningsspørsmål. Dette er viktig og i samsvar med de tre R-ene (reduksjon, erstatning og forbedring) av eksperimentell dyreforskning23 (dvs. prinsippet om å redusere antall dyr som ofres for vitenskapelige formål).
I den følgende protokollen er smågrismodellen for perinatal asfyksi beskrevet i detalj, inkludert hvordan man induserer, definerer og fastslår hjertestans. Modellen har blitt raffinert for å minimere eksponering for beroligende midler og kirurgiske inngrep og inkluderer mekanisk ventilasjon, kvelning, gjenopplivning, observasjon etter gjenopplivning og innsamling av prøver av blod, urin og cerebrospinalvæske. Våre grupper samler også tradisjonelt vev fra vitale organer post mortem, men prosedyren for vevsinnsamling er ikke beskrevet i detalj i denne protokollen. Modellen simulerer en hypoksisk fornærmelse med blandet respiratorisk og metabolsk acidose, som gjenspeiler biokjemien til kvelte menneskelige nyfødte. Ved nøye overvåking av grisene med invasivt blodtrykk (BP) og hjertefrekvens (HR), pulsoksymetri (PO), elektrokardiogram (EKG), impedanskardiografi (ICG) og nær-infrarød spektroskopi (NIRS) vurderinger, kan fysiologien til perinatal asfyksi, med særlig fokus på hjertet, studeres i detalj.
Modellen er teknisk utfordrende, da en veldig fin balanse i medisiner, kirurgiske inngrep og metoden for å indusere hjertestans er nødvendig for å sikre en rimelig overlevelse. Gjennomføring av forsøkene krever grundige forberedelser og et dedikert og velfungerende team. Utvalget av forsøksdyr ser også ut til å spille en viktig rolle for å sikre vellykkede forsøk. I denne artikkelen beskriver vi protokollen i detalj og våre erfaringer med den.
Denne smågrismodellen er tidkrevende og teknisk utfordrende, med flere kritiske trinn. En fin balanse i medisinene, kirurgiske inngrep og metoden for å indusere hjertestans er nødvendig for å sikre en rimelig overlevelse. Siden protokollen er av relativt lang varighet og inneholder flere kritiske trinn, krever gjennomføringen av forsøkene grundig forberedelse og et dedikert og velfungerende team, og forsøkene bør gjennomføres i anlegg som har erfaring med stordyreforsøk. Våre forskerteam har utført eksperimenter på en til tre grisunger parallelt. Det anbefales å ha minst to personer til stede til enhver tid under forsøkene og minst tre personer hvis forsøkene skal gjennomføres med tre grisunger samtidig.
Spesielt kritiske og teknisk utfordrende deler av eksperimentene inkluderer følgende: 1) å sørge for at alt utstyr fungerer og at alle dataprøvetakingsverktøyene er tilgjengelige, fungerer og kalibreres; 2) god og tilfredsstillende mekanisk ventilasjon, spesielt før asfyksi og under HLR; 3) kirurgisk inngrep; 4) induksjon av asfyksi; 5) konstatere hjertestans; 6) HLR; og 7) prøvetaking av prøver, spesielt på tidskritiske punkter som hjertestans og ROSC. De mest kritiske trinnene i protokollen er induksjon av asfyksi og fastsettelse av hjertestans. I de første forsøkene ble CO2 tilsatt asfyksigassen for å etterligne den blandede respiratoriske og metabolske acidosen av perinatal asfyksi 10,11,13,14,15,16,20. I senere eksperimenter 7,21,22 hvor CO 2 -gass ikke var tilgjengelig, ble imidlertid reduksjonen av den mekaniske ventilasjonshastigheten etterfulgt av klemming av ETT etter 20-30 minutter også observert å resultere i blandet respiratorisk og metabolsk acidose. Høye CO2 -nivåer ved hjertestans er ikke bare viktig for å etterligne den kliniske situasjonen, men kan også påvirke ROSC. Årsaken til dette kan være at hjertestans ser ut til å oppstå ved en spesifikk pH, og pH er avhengig av både laktat og CO2. Siden hyperkapnia lettere reverseres enn melkesyreacidose, kan overveiende respiratorisk versus metabolsk acidose bestemme hvor raskt grisene gjenoppretter fra asfyksien. Andre grismodeller av perinatal asfyksi eller HIE starter ofte reoksygenering/gjenopplivning før hjertestans, vanligvis i henhold til MAP-verdier eller varigheten av asfyksi (f.eks. 45 min asfyksi 29, 2t asfyksi 30, MAP på 20 mmHg31, MAP på 30-35 mmHg 30, MAP 70% under baseline29,32). Fordelen med denne modellen er at ved å indusere hjertestans er det mulig å studere neonatal HLR og prøvedata før, under og rett etter hjertestans. Spesielt kan det tilfeldige funnet at en betydelig andel av grisene har PEA 7,33 under hjertestans, øke anvendeligheten av modellen utover perinatologifeltet 34.
Gjennom årene har modellen blitt raffinert for å minimere smågriseksponering for beroligende midler og kirurgisk inngrep og forbedre dataprøvetaking og registreringer. Tidligere protokoller 10,11,13,14,15,16,20 inkluderte induksjon av anestesi med sevofluran. Dette er nå forlatt, da den nåværende protokollen innebærer direkte etablering av IV-tilgang gjennom en ørevene og IV-medisiner. Dette er mulig da smågrisplager unngås ganske enkelt ved å svøpe grisungen i et håndkle før perifert intravenøs kateterinnsetting av en utdannet leverandør. Midazolam ble også brukt i de første eksperimentelle protokollene; Den subjektive vurderingen til forskeren (R.S.) som utførte de aller fleste obduksjonene, var imidlertid at hjernen var i dårligere tilstand under obduksjonen dersom midazolam ble brukt som kontinuerlig infusjon. Derfor bruker vi nå bare fentanyl IV for å opprettholde anestesi. Midazolam kan brukes i bolusdoser hvis grisungen viser tegn til ubehag og fentanyl og/eller pentobarbital ikke viser noen effekt. Men vi har nesten aldri måttet administrere den.
Når det gjelder andre forbedringer, ble grisene i tidligere eksperimenter trakeostomisert med et tett sikret endotrakealrør plassert gjennom et subglottisk snitt. Denne prosedyren gir en lekkasjefri luftvei, men forårsaker kirurgisk stress for grisen. På den annen side, på grunn av grisens større øvre luftveier, er endotrakeal intubasjon forbundet med betydelig lekkasje ved bruk av ikke-håndjern ETT. Derfor har vi begynt å bruke mansjettjern ETT, noe som har resultert i null lekkasje og betydelig høyere ROSC-rater, sammenlignbare med forsøk med trakeostomiserte grisunger. Videre er det gjort noen justeringer med hensyn til datautvalg. Noen av de tidligere forsøkene 7,19,22,33,35,36 involverte bruk av en strømningssonde plassert rundt venstre arteria carotis communis. Denne strømningssonden har ikke vært lett tilgjengelig ved vårt institutt i Oslo de siste årene. Vårt laboratorium i Edmonton bruker fortsatt en carotisstrømningssonde, og bruken av den kan gi verdifulle ytterligere hemodynamiske data til modellen. Noen få tidligere eksperimenter involverte også bruk av et trykkvolumkateter plassert i venstre ventrikkel ved å føre det gjennom en av karottidene. Administrering av brystkompresjoner forvirret trykkvolumkateterregistreringene og forårsaket i noen tilfeller til og med katetersvikt og brudd. Dermed ble bruken forlatt i arrestasjonsmodellen. Nylig har ikke-invasive CO-monitorer blitt lagt til protokollen, og vi fokuserer på å optimalisere EKG-signalene ved hjertestans og HLR, da de kan gi verdifull informasjon om EKG-morfologi og PEA. Endelig har observasjonstiden etter ROSC blitt utvidet fra 4 timer til 9,5 timer, fordi 4 timer er for kort til å kunne oppdage histopatologiske forandringer, celledød og endringer i noen biomarkører.
En av de viktigste begrensningene i denne modellen, og bruken av smågris generelt som translasjonsmodell, er at i motsetning til HLR på fødestuen, har den postnatale hjerte-lungeovergangen allerede funnet sted hos grisene. Det er usannsynlig at grisungene har åpne fosterets kardiovaskulære shunter og høyt lungetrykk, slik tilfellet ville være hos en kvalt nyfødt. Selv om en studie av Fugelseth et al.37, som brukte en tidligere versjon av denne grisasfyksimodellen (ikke hjertestans), viste at vaskulære shunter sannsynligvis vil gjenåpne i grisene under asfyksi, kan deres respons på ventilasjon og hemodynamisk støtte variere. Derfor kan fysiologiske målinger ikke alltid være representative for en overgang menneskelig nyfødt. Noen anatomiske forskjeller mellom smågris og nyfødt er også til stede, for eksempel de større øvre luftveiene i grisene, som forårsaker ETT-lekkasje (noe som betyr at det er viktig å bruke mansjetterte ETT) og høyere basaltemperatur.
Til tross for disse begrensningene er det en lang tradisjon i det globale forskningsmiljøet for å bruke smågris som en translasjonsmodell for perinatal asfyksi. Grisen ligner på mennesker når det gjelder anatomi, fysiologi, histologi, biokjemi og betennelse38, og bortsett fra lavere fødselsvekter ved termin (1,5-2,5 kg), har den nyfødte grisen ganske lik størrelse som den menneskelige nyfødte. Størrelsen og anatomien muliggjør instrumentering, overvåking, avbildning og innsamling av biologiske prøver som kan sammenlignes med den menneskelige nyfødte. Denne modellen tillater også gjenopplivningsstudier, da brystkompresjoner er relativt enkle å utføre på samme måte som hos nyfødte mennesker, og griser har hjerteanatomi og fysiologi som ligner på mennesker39, inkludert koronar blodfordeling, blodtilførsel til ledningssystemet, myokardets histologiske utseende og biokjemiske og metabolske responser på iskemisk skade40. En annen viktig faktor er at den nyfødte grisungen har sammenlignbar perinatal hjerneutvikling til den menneskelige nyfødte41, og asfyksi resulterer i en biokjemisk respons med hyperkapnia og blandet respiratorisk og metabolsk acidose, som ligner den hos den kvalt nyfødte.
For å konkludere, er denne modellen av perinatal asfyksi teknisk utfordrende og tidkrevende. Det gir imidlertid verdifull informasjon om de fysiologiske og hemodynamiske endringene under perinatal asfyksi, muliggjør neonatale gjenopplivningsstudier, og gir verdifull informasjon om de fysiologiske endringene før, under og etter hjertestans, som også kan være av interesse for andre forskningsområder i medisin bortsett fra perinatologi.
The authors have nothing to disclose.
Vi vil gjerne takke alle stipendiater og forskere som har bidratt til å etablere, utvikle og foredle denne smågrismodellen for perinatal asfyksi og hjertestans i våre anlegg. Vi takker de ansatte ved dyreforsøksfasilitetene ved Institutt for kirurgisk forskning og Institutt for komparativ medisin, Universitetet i Oslo, Norge, og forskningsteknikere ved University of Alberta, Edmonton, Canada, for samarbeidet gjennom årene. Vi takker Forskerlinjen ved Universitetet i Oslo, Norges forskningsråd og Norsk selskap for krybbedød og dødfødsel for økonomisk støtte til denne publikasjonen.
Acid-base machine (ABL 800 Flex) | Radiometer Medical ApS, Brønshøj, Denmark | 989-963 | |
AcqKnowledge 4.0 software for PC | Biopac Systems Inc., Goleta, CA, USA | ACK100W | |
Adhesive aperture drape | OneMed Group Oy, Helsinki, Finland | 1505-01 | |
Adrenaline (1 mg/mL) | Takeda AS, Asker, Norway | Vnr 00 58 50 | Dilute 1:10 in normal saline to 0.1 mg/mL |
Arterial cannula 20 G 1,10 mm x 45 mm | Becton Dickinson Infusion Therapy, Helsingborg, Sweden | 682245 | |
Arterial forceps | Any | ||
Asphyxia gas, 8% oxygen in nitrogen | Linde Gas AS (AGA AS), Oslo, Norway | 110093 | |
Benelyte, 500 mL | Fresenius Kabi, Norge AS, Halden, Norway | 79011 | |
Biopac ECG and invasive blood pressure modules, Model MP 150 | Biopac Systems Inc., Goleta, CA 93117, USA | ECG100C, MP150WSW | |
Box of cardboard for sample storage | Syhehuspartner HF, Oslo, Norway | 2000076 | |
Cannula , 23G x 1 1/4"- Nr.14 | Beckton Dickinson S.A., Fraga, Spain | 300700 | |
Cannula, 18G x 2" | Beckton Dickinson S.A., Fraga, Spain | 301900 | |
Cannula, 21G x 1 1/2"- Nr.2 | Beckton Dickinson S.A., Fraga, Spain | 304432 | |
Centrifuge (Megafuge 1.0R) | Heraeus instruments, Kendro Laboratory Products GmbH, Hanau, Germany | 75003060 | |
Chlorhexidin colored 5 mg/mL | Fresenius Kabi Norge AS, Halden, Norway | 00 73 24 | |
Combi-Stopper | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 4495101 | |
CRF form | Self-made | ||
Desmarres eyelid retractor 13 cm x 18 mm | Any | ||
Digital Thermometer ama-digit ad 15 th | Amarell, Kreuzwertheim, Germany | 9243101 | |
ECG electrodes, Skintact | Leonhard Lang, Innsbruck, Austria | FS-TC1 /10 | |
Electric heating mattress | Any | ||
Extension set | Codan Medizinische Geräte GmbH & Co KG, Lensahn, Germany | 71.4021 | |
Fentanyl (50 µg/mL) | Hameln, Saksa, Germany | 00 70 16 | |
Fine wood chips | Any | ||
Finnpipette F1, 100-1000 µL | VWR, PA, USA | 613-5550 | |
Fully equipped surgical room | |||
Gas hose | Any | ||
Gauze swabs 5 cm x 5 cm | Bastos Viegas,.a., Penafiel, Portugal | ||
Heparin, heparinnatium 5000 IE/a.e./mL | LEO Pharma AS, Ballerup, Denmark | 46 43 27 | |
HighClean Nonwoven Swabs, 10 cm x 10 cm | Selefa, OneMed Group Ay, Helsinki, Finland | 223003 | |
ICON | Osypka Medical GmbH, Berlin, Germany | Portable non-invasive cardiometer | |
ICON electrodes/ECG electrodes, Ambu WhiteSensor WSP25 | Ambu A/S, Ballerup, Denmark | WsP25-00-S/50 | |
Infusomat Space medical pump | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 8713050 | |
Invasive blood pressure monitoring system | Codan pvb Critical Care GmbH, Forstinning, Germany | 74.6604 | |
Laryngoscope SunMed Greenlinen blade No 2 | KaWe Medical, Asperg, Germany | ||
Leoni plus mechanical ventilator | Löwenstein Medical SE & Co. KG, Bad Ems, Germany | ||
Liquid nitrogen 230 L | Linde Gas AS (AGA AS), Oslo, Norway | 102730 | |
Microcentrifuge tubes, 1.5 ml | Forsyningssenteret, Trondheim, Norway | 72.690.001 | |
Microcuff endotracheal tube, size 3.5 | Avanos, GA, USA | 35162 | |
Needle holder | Any | ||
Neoflon, peripheral venous catheter, 24 G 0.7 mm x 19 mm | Becton Dickinson Infusion Therapy AB, Helsingborg, Sweden | 391350 | |
Neonatal piglets 12-36 h of age | As young as possible | ||
NIRS electrodes, FORE-SIGHT Single Non-Adhesive Sensor Kit Small | Cas Medical systems Inc., Branford Connecticut, USA | 01-07-2000 | |
NIRS machine, FORE-SIGHT Universal, Cerebral Oximeter MC-202, Benchtop regional oximeter FORE-SIGHT | Cas Medical systems Inc., Branford Connecticut, USA | 01-06-2020 | May also use INVOS, Covidien |
Normal saline, NaCl 9 mg/mL, 500 mL. | Fresenius Kabi Norge AS, Halden, Norway | Vare nr. 141387 | Unmixed |
Normal saline, NaCl 9 mg/mL, 500 mL. | Fresenius Kabi Norge AS, Halden, Norway | 141388 | For IV blood pressure monitoring, add heparin (0.2 ml heparin 5000 IE/a.e./mL in 500 mL of 0.9% NaCl) |
Nunc Cryogenic Tubes 1.8 mL | VWR, PA, USA | 479-6847 | |
Original Perfusor Line, I Standard PE | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 8723060 | |
Oxygen saturation monitor, MasimoSET, Rad 5 | Masimo, Neuchâtel, Switzerland | 9196 | |
Oxygen saturation monitor, OxiMax N-65 | Covidien LP (formerly Nellcor Puritan Bennett Inc.), Boulder, CO, USA | N65-PDN1 | |
Pentobarbital (100 mg/mL) | Norges Apotekerforening, Oslo, Norway | Pnr 811602 | |
Pipette tips | VWR, PA, USA | 732-2383 | |
Plastic container with holes | Any | Has to allow for circulation of air | |
Printer labels B-492, hvit, 25 mm x 9 mm, 3000 labels | VWR, PA, USA | BRDY805911 | For nunc tubes |
Razor, single use disposable | Any | ||
Rubber gloves | Any | ||
Rubber hot water bottles | Any | ||
Self-inflating silicone pediatric bag 500 ml | Laerdal Medical, Stavanger, Norway | 86005000 | |
Smallbore T-Port Extension Set | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 471954 | |
Sterile surgical gloves latex, Sempermed supreme | Semperit Technische Produkte Ges.m.b.H., Vienna, Austria | size 7: 822751701 | Different sizes |
Stethoscope | Any | ||
Stopcocks, 3-way, Discofix | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 16494C | |
Stylet size 3.5 | Any | ||
SunMed Greenlinen laryngoscope blade No 2 | KaWe Medical, Asperg, Germany | ||
Surgical blade, size 15 | Swann Morton LTD, Sheffield England | 205 | |
Surgical forceps | Any | ||
Surgical scissors | Any | ||
Surgical sponges, sterile | Mölnlycke Health Care, Göteborg, Sweden | C0130-3025 | |
Surgical swabs | Mölnlycke Health Care, Göteborg, Sweden | 159860-00 | |
Surgical tape Micropore 2.5 cm x 9.1 m | 3M Norge AS, Lillestrøm, Norway | 153.5 | |
Suture, Monsoft Monofilament Nylon 3-0 | Covidien LP (formerly Nellcor Puritan Bennett Inc.), Boulder, CO, USA | SN653 | |
Suture, Polysorb Braided Absorbable | Covidien LP (formerly Nellcor Puritan Bennett Inc.), Boulder, CO, USA | GL884 | |
Syringe 0.01-1 mL Omnifix F Luer Solo | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 9161406V | Used for acid base blood sampling. Flush with heparin |
Syringe 10 mL Omnifix Luer Solo | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 4616103V | |
Syringe 2.5 mL BD Plastipak | Beckton Dickinson S.A., Madrid, Spain | 300185 | Used for blood sampling. Flush with heparinized NaCl |
Syringe 20 mL Omnifix Luer Loc Solo | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 4617207V | |
Syringe 20 mL Omnifix Luer Solo | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 4616200V | |
Syringe 5 mL Omnifix Luer Solo | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 4616057V | |
Syringe 50 mL Omnifix Luer Lock Solo | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 4617509F | |
Syringe 50 mL Omnifix Luer Solo | B. Braun Melsungen AG, Melsungen, Germany | 4616502F | |
Table drape sheet, asap drytop | Asap Norway AS, Skien, Norway | 83010705 | |
Tape Tensoplast 2.5 cm x 4.5 m | BSN Medical, Essity Medical Solutions, Charlotte, NC, USA | 66005305, 72067-00 | |
Timer | Any | ||
Towels | Any | ||
Transparent IV-fixation | Mediplast AB, Malmö, Sweden | 60902106 | |
Ultrasound gel | Optimu Medical Solutions Ltd. Leeds, UK | 1157 | |
Ultrasound machine, LOGIQ e | GE Healthcare, GE Medical Systems, WI, USA | 5417728-100 | |
Utility drape, sterile | OneMed Group Oy, Helsinki, Finland | 1415-01 | |
Vacuette K3E K3EEDTA 2mL | Greiner Bio-One GmbH, Kremsmünster, Austria | 454222 | |
Venflon Pro Safety 22 G 0.9 mm x 25 mm | Becton Dickinson Infusion Therapy, Helsingborg, Sweden | 393222 | |
Ventilation mask made to fit tightly around a piglet snout | Any | Typically cone shaped | |
Weight | Any |