Summary

Gelatinmetakryloylgranulära hydrogelställningar: Mikrogeltillverkning med hög genomströmning, frystorkning, kemisk montering och 3D-bioprinting

Published: December 09, 2022
doi:

Summary

Denna artikel beskriver protokoll för gelatinmetakrylylmikrogeltillverkning med hög genomströmning med hjälp av mikrofluidiska anordningar, omvandling av mikrogeler till resuspenderbart pulver (mikroaerogeler), kemisk sammansättning av mikrogeler för att bilda granulära hydrogelställningar och utveckling av granulära hydrogelbiobläck med bevarad mikroporositet för 3D-bioprinting.

Abstract

Framväxten av granulära hydrogelställningar (GHS), tillverkade via montering av hydrogelmikropartiklar (HMP), har möjliggjort mikroporös ställningsbildning in situ. Till skillnad från konventionella bulkhydrogeler underlättar sammankopplade porer i mikroskala i GHS nedbrytningsoberoende cellinfiltration samt överföring av syre, näringsämnen och cellulära biprodukter. Metaakryloylmodifierat gelatin (GelMA), en (foto) kemiskt tvärbindningsbar, proteinbaserad biopolymer innehållande celllim och biologiskt nedbrytbara delar, har i stor utsträckning använts som ett cellresponsivt / instruktivt biomaterial. Konvertering av bulk GelMA till GHS kan öppna en uppsjö av möjligheter för vävnadsteknik och regenerering. I den här artikeln demonstrerar vi procedurerna för GelMA-mikrogeltillverkning med hög kapacitet, omvandling till resuspenderbara torra mikrogeler (mikroaerogeler), GHS-bildning via kemisk montering av mikrogeler och granulär biobläcktillverkning för extruderingsbioprinting. Vi visar hur en sekventiell fysikalisk-kemisk behandling via kylning och fototvärbindning möjliggör bildandet av mekaniskt robust GHS. När ljus är otillgängligt (t.ex. under djup vävnadsinjektion) kan individuellt tvärbundna GelMA HMP monteras bioortogonalt via enzymatisk tvärbindning med användning av transglutaminaser. Slutligen demonstreras tredimensionell (3D) bioprinting av mikroporös GHS vid låg HMP-packningstäthet via gränssnittssjälvmontering av heterogent laddade nanopartiklar.

Introduction

Montering av HMP-byggstenar för att bilda vävnadstekniska byggnadsställningar har fått enorm uppmärksamhet under de senaste åren1. GHS, tillverkad via HMP-montering, har unika egenskaper jämfört med sina bulkmotsvarigheter, inklusive mikroporositet i cellskala som härrör från tomrummen bland de diskreta byggstenarna. Ytterligare egenskaper, såsom injicerbarhet, modularitet och frikopplad styvhet från porositet, gör GHS till en lovande plattform för att förbättra vävnadsreparation och regenerering2. Olika biomaterial har använts för GHS-tillverkning, inklusive syntetiska PEG-baserade polymerer3,4 och polysackarider, såsom alginat5 och hyaluronsyra 6,7. Bland naturligt framställda polymerer är den vanligaste proteinbaserade biopolymeren för GHS-tillverkning GelMA 8,9,10,11, ett tvärbindningsbart, biokompatibelt, bioadhesivt och biologiskt nedbrytbart biomaterial 12,13.

HMP kan tillverkas via batchemulgering8, flödesfokusering 14,15 eller stegemulgering9,11 mikrofluidiska anordningar, blandning 16, eller komplex koacervation17,18. Vanligtvis finns det en avvägning mellan tillverkningsgenomströmningen och HMP-monodispersiteten. Till exempel ger blandningstekniken oregelbundet formade och mycket polydispergerade HMP. Batchemulgering eller komplex koacervation möjliggör produktion av stora volymer polydispergerade sfäriska HMP. Flödesfokuserande mikrofluidiska enheter har använts för att tillverka mycket monodispersa droppar med en variationskoefficient på <5%, men genomströmningen är signifikant låg. I mikrofluidiska enheter med stegemulgering möjliggör de mycket parallelliserade stegen tillverkning med hög genomströmning av monodispergerade HMP19.

Metakrylmodifierat gelatin (GelMA) HMP-byggstenar är termoresponsiva och (foto)kemiskt tvärbindningsbara, vilket möjliggör enkel GHS-tillverkning20. Vid kylning under den övre kritiska lösningstemperaturen (UCST)21 (t.ex. vid 4 °C) omvandlas droppar som innehåller en GelMA-lösning till fysiskt tvärbundna HMP. Dessa HMP-byggstenar packas sedan med hjälp av externa krafter (t.ex. via centrifugering) för att ge fastnat mikrogelsuspensioner. Interpartikelbindningar upprättas mellan intilliggande HMP via (foto)kemisk tvärbindning för att bilda mekaniskt robust GHS14. En av de viktigaste egenskaperna hos GHS är mikroporositet, vilket möjliggör enkel cellpenetration in vitro11 och förbättrad vävnadsinväxt in vivo22. Tredimensionell (3D) bioprinting av HMP utförs konventionellt med tätt packade mikrogelsuspensioner, vilket äventyrar mikroporositeten23.

Vi har nyligen utvecklat en ny klass av granulära biobläck baserade på gränssnittsnanoengineering av GelMA-mikrogeler via adsorption av heterogent laddade nanopartiklar, följt av nanopartikelreversibel självmontering. Denna strategi gör löst packade mikrogeler skjuvavkastande och extrudering 3D bioprintbar, vilket bevarar mikroskala porositeten hos additivt tillverkade GHS11. Denna artikel presenterar metoderna för tillverkning av GelMA-droppar med hög genomströmning, omvandling av dessa droppar till fysiskt tvärbundna HMP, tillverkning av GelMA HMP med resuspenderbart pulver, GelMA GHS-bildning, GelMA nanoengineered granulärt biobläckpreparat (NGB) och 3D-bioprinting.

Protocol

Se materialförteckningen för detaljer relaterade till alla material, instrument och reagenser som används i detta protokoll. 1. GelMA syntes OBS: GelMA-syntes bör utföras i en kemisk dragskåp och korrekt personlig skyddsutrustning (PPE) ska användas hela tiden. Tillsätt 200 ml Dulbeccos fosfatbuffrade saltlösning (DPBS, 1x) till en Erlenmeyerkolv och värm lösningen tills den når 50 °C. Täck kolven med alumin…

Representative Results

GelMA syntetiserades genom reaktion av gelatin med MA, som presenteras i figur 1A. Genom att skräddarsy reaktionsbetingelserna, såsom MA-koncentration, erhölls olika grader av MA-substitution. För att kvantifiera graden av MA-substitution bedömdes GelMA via 1H NMR-spektroskopi (figur 1B). Vinylfunktionella grupper med representativa toppar vid de kemiska skiften på ~ 5-6 ppm bekräftade den framgångsrika GelMA-syntesen från gelatin. R…

Discussion

Gelatin och dess derivat är de vanligaste proteinbaserade biomaterialen för HMP-tillverkning. Utmaningen med genomströmning kontra monodispersitetsavvägning av partikelstorlek kan övervinnas med hjälp av stegemulgerande mikrofluidiska enheter. Dessa enheter kan bilda mer än 40 miljoner droppar per timme, med en variationskoefficient mindre än 5%27. I den här artikeln diskuterade vi mikrofabrikation av droppar som innehåller GelMA-lösningar, följt av att konvertera dem till GelMA HMP, p…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Författarna vill tacka T. Pond, forskningsstödsspecialist vid Institutionen för kemiteknik vid Pennsylvania State University (Penn State), Nanofabrication Lab-personalen vid Penn State och Dr. J. de Rutte från Partillion Bioscience för hjälp och diskussion om nanofabrikationsprocesser. A. Sheikhi erkänner stödet från Materials Research Institute (MRI) och College of Engineering Materials Matter på Human Level fröbidrag, Convergence Center for Living Multifunctional Material Systems (LiMC2) och Cluster of Excellence Living, Adaptive and Energy-autonomous Materials Systems (livMatS) Living Multifunctional Materials Collaborative Research Seed Grant Program och startfonden från Penn State. Forskning som rapporteras i denna publikation stöddes delvis av National Institute of Biomedical Imaging and Bioengineering (NIBIB) vid National Institutes of Health (NIH) under tilldelningsnummer R56EB032672.

Materials

1H,1H-perfluoro-1-octanol Alfa Aesar, MA, USA B20156-18 98% purity
Biopsy punch Integra Miltex, NY, USA 33-31A-P/25 1.5 mm Biopsy Punch with Plunger System
Blunt needle SANANTS 30-002-25 25 G
Bruker Avance NEO 400 MHz 400 MHz Bruker NEO, MA, USA NMR device
Centrifuge Eppendorf, Germany 5415 C
Centrifuge tube Celltreat, MA ,USA 229423
Coffee filters BUNN, IL, USA 20104.0006 BUNN 8-12 Cup Coffee Filters, 6 each, 100 ct
Desiccator Thermo Scientific 5311-0250 Nalgene Vacuum Desiccator, PC Cover and Body, 280 mm OD
Deuterium oxide Sigma, MA, USA 151882
Dialysis membrane (12-14 kDa) Spectrum Laboratories, NJ, USA 08-667E
Dulbecco's phosphate buffered saline (DPBS, 1x) Sigma, MA, USA 56064C-10L dry powder, without calcium, without magnesium, suitable for cell culture
Erlenmeyer flask Corning, NY, USA 4980 Corning PYREX 
Ethanol VWR, PA, USA 89125-188 Koptec 200 proof
External thread cryogenic vials (cryovials) Corning, NY, USA 430659
Freeze dryer Labconco, MO, USA 71042000 Equipped with vacuum pump (Catalog# 7587000)
Gelatin powder Sigma, MA, USA G1890-5100G Type A from porcine skin, gel strength ~300 g Bloom
Glass microscope slides VWR, PA, USA 82027-788
Hotplate FOUR E'S SCIENTIFIC MI0102003 5 inch Magnetic Hotplate Stirrer Max Temp 280 °C/536 °F 
Kimwipes Fischer scientific, MA, USA 06-666
KMPR 1000 negative photoresist series Kayaku Advanced Materials, MA, USA 121619 KMPR1025 and KMP1035 are included
LAPONITE XLG BYK USA Inc., CT, USA 2344265
Lithium phenyl-2,4,6-trimethylbenzoylphosphinate (LAP) Sigma, MA, USA 900889-1G >95%
Luer-Lok connector BD, NJ, USA BD 302995 
MA/BA Gen4-Serie Mask- und Bond-Aligner SÜSS MicroTeck, German Nanofabrication device
Methacylate anhydride Sigma, MA, USA 276685-100ML contains 2,000 ppm topanol A as inhibitor, 94%
Milli-Q water Millipore Corporation, MA, USA ZRQSVR5WW electrical resistivity ≈ 18 MΩ at 25 °C, Direct-Q 5 UV Remote Water Purification System
Novec 7500 engineering fluid 3M, MN, USA 3M ID 7100003723
Oven VWR, PA, USA VWR-1410 1410 Vacuum Oven
Parafilm Fischer scientific, MA, USA HS234526C
Pasteur pipette VWR, PA, USA 14673-010
Petri dish VWR, PA, USA 25384-092 polystyrene
Pico-Surf Sphere Fluidics, UK C022 (5% (w/w) in Novec 7500)
Pipette VWR, PA, USA 89079-970
Pipette tips VWR, PA, USA 87006-060
Plasma cleaner chamber Harrick Plasma, NY, USA PDC-001-HP 
Polydimethylsiloxane Dow Corning, MI, USA  2065623 SYLGARD 184 Silicone Elastomer Kit
Positive displacement pipette Microman E M100E, Gilson, OH, USA M100E
Silicon wafers UniversityWafer, MA, USA 452/1196 4-inch mechanical grade
Spatula VWR, PA, USA 231-0104 Disposable
SU-8  Kayaku Advanced Materials, MA, USA
Syringe pump Harvard Apparatus, MA, USA 70-2001 PHD 2000
Trichloro(1H,1H,2H,2H-perfluorooctyl)silane Millipore Sigma, MA, USA 448931-10G 97%
Tygon tubings Saint-globain, PA, USA AAD04103 
UV light  QUANS Voltage: 85 V-265 V AC / Power: 20 W
Vacuum filtration unit VWR, PA, USA 10040-460 0.20 µm
Vortex Fischer scientific, USA 14-955-151 Mini Vortex Mixer

References

  1. Feng, Q., Li, D., Li, Q., Cao, X., Dong, H. Microgel assembly: Fabrication, characteristics and application in tissue engineering and regenerative medicine. Bioactive Materials. 9, 105-119 (2022).
  2. Daly, A. C., Riley, L., Segura, T., Burdick, J. A. Hydrogel microparticles for biomedical applications. Nature Reviews Materials. 5 (1), 20-43 (2020).
  3. Griffin, D. R., et al. Activating an adaptive immune response from a hydrogel scaffold imparts regenerative wound healing. Nature Materials. 20 (4), 560-569 (2021).
  4. Griffin, D. R., Weaver, W. M., Scumpia, P. O., Di Carlo, D., Segura, T. Accelerated wound healing by injectable microporous gel scaffolds assembled from annealed building blocks. Nature Materials. 14 (7), 737-744 (2015).
  5. Ding, A., et al. Jammed micro-flake hydrogel for four-dimensional living cell bioprinting. Advanced Materials. 34 (15), 2109394 (2022).
  6. Muir, V. G., et al. Sticking together: injectable granular hydrogels with increased functionality via dynamic covalent inter-particle crosslinking. Small. 18 (36), 2201115 (2022).
  7. Sideris, E., et al. Particle hydrogels based on hyaluronic acid building blocks. ACS Biomaterials Science and Engineering. 2 (11), 2034-2041 (2016).
  8. Molley, T. G., Hung, T., Kilian, K. A. Cell-laden gradient microgel suspensions for spatial control of differentiation during biofabrication. Advanced Healthcare Materials. , 2201122 (2022).
  9. Zoratto, N., et al. In situ forming microporous gelatin methacryloyl hydrogel scaffolds from thermostable microgels for tissue engineering. Bioengineering and Translational. 5 (3), (2020).
  10. Yuan, Z., et al. In situ fused granular hydrogels with ultrastretchability, strong adhesion, and mutli-bioactivities for efficient chronic wound care. Chemical Engineering Journal. 450, 138076 (2022).
  11. Ataie, Z., et al. Nanoengineered granular hydrogel bioinks with preserved interconnected microporosity for extrusion bioprinting. Small. 18 (37), 2202390 (2022).
  12. Annabi, N., et al. 25th anniversary article: rational design and applications of hydrogels in regenerative medicine. Advanced Materials. 26 (1), 85-124 (2014).
  13. Rajabi, N., et al. Recent advances on bioprinted gelatin methacrylate-based hydrogels for tissue repair. Tissue Engineering. Part A. 27 (11-12), 679-702 (2021).
  14. Sheikhi, A., Di Carlo, D., Khademhosseini, A., De Rutte, J. Methods for fabricating modular hydrogels from macromolecules with orthogonal physico-chemical responsivity. U.S. Patent Application. , (2021).
  15. Sheikhi, A., et al. Microfluidic-enabled bottom-up hydrogels from annealable naturally-derived protein microbeads. Biomaterials. 192, 560-568 (2019).
  16. Hinton, T. J., et al. Three-dimensional printing of complex biological structures by freeform reversible embedding of suspended hydrogels. Science Advances. 1 (9), (2015).
  17. Seymour, A. J., Shin, S., Heilshorn, S. C. 3D printing of microgel scaffolds with tunable void fraction to promote cell infiltration. Advanced Healthcare Materials. 10 (18), 2100644 (2021).
  18. Lee, A., et al. 3D bioprinting of collagen to rebuild components of the human heart. Science. 365 (6452), 482-487 (2019).
  19. de Rutte, J. M., Koh, J., Di Carlo, D. Scalable high-throughput production of modular microgels for in situ assembly of microporous tissue scaffolds. Advanced Functional Materials. 29 (25), 1900071 (2019).
  20. Sheikhi, A., et al. Modular microporous hydrogels formed from microgel beads with orthogonal thermo-chemical responsivity: Microfluidic fabrication and characterization. MethodsX. 6, 1747-1752 (2019).
  21. Van Den Bulcke, A. I., et al. Structural and rheological properties of methacrylamide modified gelatin hydrogels. Biomacromolecules. 1 (1), 31-38 (2000).
  22. Qazi, T. H., et al. Anisotropic rod-shaped particles influence injectable granular hydrogel properties and cell invasion. Advanced Materials. 34 (12), 2109194 (2022).
  23. Highley, C. B., Song, K. H., Daly, A. C., Burdick, J. A. Jammed microgel inks for 3d printing applications. Advanced Science. 6 (1), 1801076 (2019).
  24. Claaßen, C., et al. Quantification of substitution of gelatin methacryloyl: best practice and current pitfalls. Biomacromolecules. 19 (1), 42-52 (2018).
  25. Sheikhi, A., Di Carlo, D., Khademhosseini, A. Methods for converting colloidal systems to resuspendable/redispersable powders that preserve the original properties of the colloids. U.S. Patent Application. , (2022).
  26. Sheikhi, A., et al. Microengineered emulsion-to-powder technology for the high-fidelity preservation of molecular, colloidal, and bulk properties of hydrogel suspensions. ACS Applied Polymer Materials. 1 (8), 1935-1941 (2019).
  27. Lee, S., de Rutte, J., Dimatteo, R., Koo, D., Di Carlo, D. Scalable fabrication and use of 3d structured microparticles spatially functionalized with biomolecules. ACS Nano. 16 (1), 38-49 (2022).
  28. Charlet, A., Bono, F., Amstad, E. Mechanical reinforcement of granular hydrogels. Chemical Science. 13 (11), 3082-3093 (2022).
check_url/kr/64829?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Ataie, Z., Jaberi, A., Kheirabadi, S., Risbud, A., Sheikhi, A. Gelatin Methacryloyl Granular Hydrogel Scaffolds: High-throughput Microgel Fabrication, Lyophilization, Chemical Assembly, and 3D Bioprinting. J. Vis. Exp. (190), e64829, doi:10.3791/64829 (2022).

View Video