Summary

Decellulariserade strukturer från äpplen för benvävnadsteknik in vitro och in vivo

Published: February 23, 2024
doi:

Summary

I denna studie beskriver vi metoder för decellularisering, fysikalisk karakterisering, avbildning och in vivo implantation av växtbaserade biomaterial, samt metoder för cellsådd och differentiering i ställningarna. De beskrivna metoderna gör det möjligt att utvärdera växtbaserade biomaterial för benvävnadstekniska tillämpningar.

Abstract

Biomaterial av växtbaserad cellulosa har använts i olika vävnadstekniska tillämpningar. In vivo-studier har visat den anmärkningsvärda biokompatibiliteten hos byggnadsställningar gjorda av cellulosa som härrör från naturliga källor. Dessutom har dessa strukturer strukturella egenskaper som är relevanta för flera vävnader, och de främjar invasion och proliferation av däggdjursceller. Ny forskning med hjälp av decellulariserad äppelhypanthiumvävnad har visat likheten i dess porstorlek med trabekulärt ben samt dess förmåga att effektivt stödja osteogen differentiering. I den aktuella studien undersöktes vidare potentialen hos cellulosaställningar från äpplen för tillämpningar inom benvävnadsteknik (BTE) och deras mekaniska egenskaper in vitro och in vivo . MC3T3-E1 preosteoblaster såddes i äppelbaserade cellulosaställningar som sedan bedömdes för sin osteogena potential och mekaniska egenskaper. Alkaliskt fosfatas och alizarinrött S-färgning bekräftade osteogen differentiering i byggnadsställningar odlade i differentieringsmedium. Histologisk undersökning visade på utbredd cellinvasion och mineralisering över ställningarna. Svepelektronmikroskopi (SEM) avslöjade mineralaggregat på ytan av byggnadsställningarna, och energidispersiv spektroskopi (EDS) bekräftade förekomsten av fosfat- och kalciumelement. Men trots en signifikant ökning av Youngs modul efter celldifferentiering, förblev den lägre än för frisk benvävnad. In vivo-studier visade cellinfiltration och deponering av extracellulär matris i de decellulariserade äppelbaserade stöden efter 8 veckors implantation i råtta calvaria. Dessutom var den kraft som krävdes för att ta bort ställningarna från bendefekten liknande den tidigare rapporterade frakturbelastningen av naturligt kalvarben. Sammantaget bekräftar denna studie att cellulosa från äpplen är en lovande kandidat för BTE-ansökningar. Olikheten mellan dess mekaniska egenskaper och de hos frisk benvävnad kan dock begränsa dess tillämpning till scenarier med låg belastning. Ytterligare strukturell omkonstruktion och optimering kan vara nödvändig för att förbättra de mekaniska egenskaperna hos cellulosaställningar från äpplen för bärande applikationer.

Introduction

Stora bendefekter orsakade av en skada eller sjukdom kräver ofta biomaterialtransplantat för fullständig regenerering1. Nuvarande tekniker som är utformade för att förbättra regenerering av benvävnad använder regelbundet autologa, allogena, xenogena eller syntetiska transplantat2. För autolog bentransplantation, som anses vara “guldstandarden” för transplantation för att reparera stora bendefekter, extraheras ben från patienten. Denna ympningsprocedur har dock flera nackdelar, inklusive storleks- och formbegränsningar, vävnadstillgänglighet och morbiditet på provtagningsstället3. Dessutom är autologa transplantationsprocedurer känsliga för infektioner i operationsområdet, efterföljande frakturer, hematombildning vid provtagnings- eller rekonstruktionsstället och postoperativ smärta4. Benvävnadsteknik (BTE) erbjuder ett potentiellt alternativ till konventionella bentransplantationsmetoder5. Den kombinerar strukturella biomaterial och celler för att bygga ny funktionell benvävnad. Vid design av biomaterial för BTE är det viktigt att kombinera en makroporös struktur, ytkemi som främjar cellbindning och mekaniska egenskaper som liknar dem hos naturligt ben6. Tidigare forskning har indikerat att den ideala porstorleken och elasticitetsmodulen för biomaterial som används i BTE är cirka 100-200 μm7 respektive 0,1-20 GPa, beroende på ympningsställe8. Dessutom är porositeten och porsammankopplingen av ställningarna kritiska faktorer som påverkar cellmigration, näringsdiffusion och angiogenes8.

BTE har visat lovande resultat med olika biomaterial som utvecklats och utvärderats som alternativ till bentransplantat. Några av dessa biomaterial är osteoinduktiva material, hybridmaterial och avancerade hydrogeler8. Osteoinduktiva material stimulerar utvecklingen av nybildade benstrukturer. Hybridmaterial består av syntetiska och/eller naturliga polymerer8. Avancerade hydrogeler efterliknar den extracellulära matrisen (ECM) och kan leverera de nödvändiga bioaktiva faktorerna för att främja benvävnadsintegration8. Hydroxiapatit är ett traditionellt material och ett vanligt val för BTE på grund av dess sammansättning och biokompatibilitet9. Bioaktivt glas är en annan typ av biomaterial för BTE, som har visat sig stimulera specifika cellsvar för att aktivera gener som är nödvändiga för osteogenes10,11. Biologiskt nedbrytbara polymerer, inklusive poly(glykolsyra) och poly(mjölksyra), har också använts i stor utsträckning i BTE-tillämpningar12. Slutligen har naturliga eller naturligt framställda polymerer som kitosan, kitin och bakteriell cellulosa också visat uppmuntrande resultat för BTE13. Men även om både syntetiska och naturliga polymerer visar potential för BTE, kräver utvecklingen av en funktionell ställning med den önskade makrostrukturen vanligtvis omfattande protokoll.

Omvänt kan inhemska makroskopiska cellulosastrukturer lätt härledas från olika växter och vår forskargrupp har tidigare visat att cellulosabaserade strukturer som härrör från växter kan användas för olika vävnadsrekonstruktioner. Efter en enkel ytaktiv behandling utnyttjade vi växtmaterialets inneboende struktur och lyfte fram dess potential som ett mångsidigt biomaterial14. Dessutom kan dessa cellulosabaserade strukturer användas för in vitro-cellodling av däggdjur14, är biokompatibla och stöder spontan subkutan vaskularisering 14,15,16,17. Både vår forskargrupp och andra har visat att dessa ställningar kan erhållas från specifika växter baserat på den avsedda applikationen 14,15,16,17,18,19,20. Till exempel uppvisar den kärlstruktur som observerats i växtstammar och blad en slående likhet med den struktur som finns i djurvävnader19. Dessutom kan cellulosaställningar som härrör från växter lätt formas och utsättas för ytbiokemiska modifieringar för att uppnå de önskade egenskaperna16. I en nyligen genomförd studie införlivade vi en saltbuffert under decellulariseringsprocessen, vilket ledde till ökad cellbindning som observerades både i in vitro– och in vivo-miljöer 16. I samma studie demonstrerade vi tillämpbarheten av växtbaserade cellulosaställningar i kompositbiomaterial genom att gjuta hydrogeler på ytan av ställningarna. I nyligen genomförda studier har funktionaliseringen av växtbaserade ställningar visat sig förbättra deras effektivitet18. Till exempel visade en studie utförd av Fontana et al. (2017) att vidhäftningen av humana dermala fibroblaster stöddes av RGD-belagda decellulariserade stjälkar, medan icke-belagda stjälkar inte uppvisade samma förmåga18. Dessutom visade författarna också att modifierad simulerad kroppsvätska kunde användas för att artificiellt mineralisera decellulariserade växtstammar. I nyare studier har vi undersökt begreppet mekanokänslig osteogenes i växtbaserade cellulosastrukturer och bedömt deras potential för BTE17,20. Dessutom använde Lee et al. (2019) växtbaserade byggnadsställningar för att odla benliknande vävnader i en in vitro-miljö 21. Genom omfattande utvärderingar av olika växtkällor identifierade författarna äppelbaserade strukturer som de mest optimala för odling och differentiering av humaninducerade pluripotenta stamceller (hiPSC). Vidare föreslog författarna att de strukturella och mekaniska egenskaperna hos de äppelbaserade ställningarna spelar en avgörande roll för deras lämplighet för det avsedda ändamålet. Som de första växtbaserade stödstrukturer som implementerades i vävnadstekniska tillämpningar, har det i stor utsträckning visat sig att de har en slående lik arkitektur som mänskligt ben, särskilt när det gäller deras sammankopplade porer som sträcker sig från 100 till 200 μm i diameter14,21.

I den aktuella studien undersökte vi vidare potentialen hos äppelbaserade cellulosaställningar för BTE och genomförde en analys av deras mekaniska egenskaper både in vitro och in vivo. Även om det har gjorts studier om potentialen hos ställningar som härrör från äpplen för BTE 17,20,21, har deras mekaniska egenskaper undersökts för lite. Resultaten visade vildspridd invasion och osteogen differentiering av MC3T3-E1 preosteoblaster sådda i scaffolds som odlades i differentieringsmedium i 4 veckor. Youngs modul för dessa ställningar var 192,0 ± 16,6 kPa, vilket var signifikant högre än för de tomma ställningarna (ställningar utan fröceller) (31,6 ± 4,8 kPa) och de cellsådda ställningarna odlade i icke-differentieringsmedium (24,1 ± 8,8 kPa). Det bör dock noteras att Youngs modul av frisk mänsklig benvävnad vanligtvis faller inom intervallet 0,1-2 GPa för trabekulärt ben och cirka 15-20 GPa för kortikalt ben8. Icke desto mindre, efter en 8-veckors implantation i en gnagare, verkade de cellsådda ställningarna vara väl integrerade i det omgivande benet, vilket demonstrerades av en genomsnittlig toppkraft på 113,6 N ± 18,2 N i push-out-tester, vilket liknar den tidigare rapporterade frakturbelastningen av naturligt kalvarben22. Sammantaget visar resultaten från denna studie betydande löften, särskilt för icke-bärande applikationer. Cellulosaställningar från äpplen har dock för närvarande inte de mekaniska egenskaper som krävs för att exakt matcha den omgivande benvävnaden på ett implantatställe. Följaktligen krävs ytterligare utveckling för att frigöra den fulla potentialen hos dessa ställningar.

Protocol

De experimentella protokollen granskades och godkändes av University of Ottawa Animal Care Committee. 1. Förberedelse av ställning Använd en mandolinskärare för att skära McIntosh-äpplen (Canada Fancy) i 8 mm tjocka skivor. Skär hypanthiumvävnaden i äppelskivorna i rutor på 5 mm x 5 mm. Placera de fyrkantiga proverna i 0.1% natriumdodecylsulfat (SDS) i 2 dagar. Tvätta de decellulariserade proverna med avjoniserat vatten och inkubera d…

Representative Results

Mätning av porstorlek, cellfördelning och in vitro-mineralisering (Figur 1 och Figur 2)Fullständigt avlägsnande av de naturliga cellulära komponenterna i äppelvävnadsställningarna uppnåddes efter behandling av stödstrukturerna med SDS och CaCl2 (figur 1A). Ställningarna uppvisade en mycket porös struktur, vilket bekräftades med hjälp av konfokalmikroskopi. Kvantifieringen av bil…

Discussion

Flera in vitro– och in vivo-studier har visat biokompatibiliteten hos växtbaserad cellulosa och dess potentiella användning inom vävnadsteknik 14,15,16,18,19,20, mer specifikt för att hysa osteogen differentiering 20,21. Syftet med denna studie v…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Projektet finansierades av Natural Sciences and Engineering Research Council of Canada (NSERC) (Discovery Grant) och Li Ka Shing Foundation. M.L.L. fick stöd från Ontario Centers of Excellence TalentEdge-programmet, och R.J.H. fick stöd av ett NSERC-stipendium och ett Ontario Graduate Scholarship (OGS).

Materials

4′,6-diamidino-2-phenylindole ThermoFisher D1306 DAPI
5-bromo-4-chloro-3'-indolyphosphate and nitro-blue tetrazolium Sigma-Aldrich B5655 BCIP/NBT
Alizarin red S Sigma-Aldrich A5533 ARS
Ascorbic acid Sigma-Aldrich A4403 Cell Culture
Calcium Chloride ThermoFisher AA12316 CaCl2
Calcofluor White Sigma-Aldrich 18909
Dental drill Surgical tool
Ethanol ThermoFisher 615095000
Fetal bovine serum Hyclone Laboratories SH30396 FBS
Formalin Sigma-Aldrich HT501128 10% Formalin
Goldner's trichrome stain Sigma-Aldrich 1.00485 GTC
Hematoxylin and eosin stain Fisher Scientific NC1470670 H&E
High-speed resonant confocal laser scanning microscope Nikon Nikon Ti-E A1-R
Hydrochloric acid Sigma-Aldrich 258148
ImageJ software National Institutes of Health
Irrigation saline Baxter JF7123 0.9% NaCl
MC3T3-E1 Subclone 4 cells ATCC CRL-2593 Pre-osteoblast cells
McIntosh apples Canada Fancy grade
Methyl methacrylate Sigma-Aldrich M55909 Histological embedding
Minimum Essential Medium ThermoFisher M0894 α-MEM
Paraformaldehyde Fisher Scientific O4042 4%; PFA
Penicillin/Streptomycin Hyclone Laboratories SV30010 Cell Culture
Periodic acid Sigma-Aldrich 375810
Phosphate buffered saline Hyclone Laboratories 2810305 PBS; without Ca2+ and Mg2+
Propidium iodide Invitrogen p3566
Scanning electron microscope JEOL JSM-7500F FESEM SEM and EDS
Slide scanner microscope Zeiss AXIOVERT 40 CFL
Sodium dodecyl sulfate Fisher Scientific BP166 SDS
Sodium metabisulphite Sigma-Aldrich 31448
Sodium phosphate ThermoFisher BP329
Sprague-Dawley rats Charles-River Laboratories 400 Male
Sutures Ethicon J494G 4-0
Trephine ACE Surgical Supply Co 583-0182 5-mm diameter
Triton-X 100 ThermoFisher 807423
Trypsin Hyclone Laboratories SH30236.02 Cell Culture
Tween Fisher Scientific BP337
Universal compression Device CellScale UniVert
Von Kossa stain Sigma-Aldrich 1.00362 Histology

References

  1. Schmitz, J. P., Hollinger, J. O. The critical size defect as an experimental model for craniomandibulofacial nonunions. Clinical Orthopaedics and Related Research. 205, 299-308 (1986).
  2. Yu, X., Tang, X., Gohil, S. V., Laurencin, C. T. Biomaterials for bone regenerative engineering. Advanced Healthcare Materials. 4 (9), 1268-1285 (2015).
  3. Parikh, S. N. Bone graft substitutes: Past, present, future. Journal of Postgraduate Medicine. 48 (2), 142-148 (2002).
  4. Silber, J. S., et al. Donor site morbidity after anterior iliac crest bone harvest for single-level anterior cervical discectomy and fusion. Spine (Phila Pa 1976). 28 (2), 134-139 (2003).
  5. Amini, A. R., Laurencin, C. T., Nukavarapu, S. P. Bone tissue engineering: recent advances and challenges. Critical Reviews in Biomedical Engineering. 40 (5), 363-408 (2012).
  6. Butler, D. L., Goldstein, S. A., Guilak, F. Functional tissue engineering: the role of biomechanics. Journal of Biomechanical Engineering. 122 (6), 570-575 (2000).
  7. Karageorgiou, V., Kaplan, D. Porosity of 3D biomaterial scaffolds and osteogenesis. Biomaterials. 26 (27), 5474-5491 (2005).
  8. Bose, S., Roy, M., Bandyopadhyay, A. Recent advances in bone tissue engineering scaffolds. Trends in Biotechnology. 30 (10), 546-554 (2012).
  9. Yoshikawa, H., Myoui, A. Bone tissue engineering with porous hydroxyapatite ceramics. Journal of Artificial Organs. 8 (3), 131-136 (2005).
  10. Fu, Q., Saiz, E., Rahaman, M. N., Tomsia, A. P. Bioactive glass scaffolds for bone tissue engineering: state of the art and future perspectives. Materials Science & Engineering. C, Materials for Biological Applications. 31 (7), 1245-1256 (2011).
  11. Xynos, I. D., Edgar, A. J., Buttery, L. D. K., Hench, L. L., Polak, J. M. Ionic products of bioactive glass dissolution increase proliferation of human osteoblasts and induce insulin-like growth factor II mRNA expression and protein synthesis. Biochemical and Biophysical Research Communications. 276 (2), 461-465 (2000).
  12. Kroeze, R., Helder, M., Govaert, L., Smit, T. Biodegradable polymers in bone tissue engineering. Materials. 2 (3), 833-856 (2009).
  13. Venkatesan, J., Vinodhini, P. A., Sudha, P. N. Chitin and chitosan composites for bone tissue regeneration. Advances in Food and Nutrition Research. 73, 59-81 (2014).
  14. Modulevsky, D. J., Lefebvre, C., Haase, K., Al-Rekabi, Z., Pelling, A. E. Apple derived cellulose scaffolds for 3D mammalian cell culture. PLoS One. 9 (5), e97835 (2014).
  15. Modulevsky, D. J., Cuerrier, C. M., Pelling, A. E. Biocompatibility of subcutaneously implanted plant-derived cellulose biomaterials. PLoS One. 11 (6), e0157894 (2016).
  16. Hickey, R. J., Modulevsky, D. J., Cuerrier, C. M., Pelling, A. E. Customizing the shape and microenvironment biochemistry of biocompatible macroscopic plant-derived cellulose scaffolds. ACS Biomaterials Science & Engineering. 4 (11), 3726-3736 (2018).
  17. Hickey, R. J., Leblanc Latour, M., Harden, J. L., Pelling, A. E. Designer scaffolds for interfacial bioengineering. Advanced Engineering Materials. 25, 2201415 (2023).
  18. Fontana, G., et al. Biofunctionalized plants as diverse biomaterials for human cell culture. Advanced Healthcare Materials. 6 (8), 1601225 (2017).
  19. Gershlak, J. R., et al. Crossing kingdoms: Using decellularized plants as perfusable tissue engineering scaffolds. Biomaterials. 125, 13-22 (2017).
  20. Leblanc Latour, M., Pelling, A. E. Mechanosensitive osteogenesis on native cellulose scaffolds for bone tissue engineering. Journal of Biomechanics. 135, 111030 (2022).
  21. Lee, J., Jung, H., Park, N., Park, S. H., Ju, J. H. Induced osteogenesis in plants decellularized scaffolds. Scientific Reports. 9 (1), 20194 (2019).
  22. Zhao, J., et al. Enhanced healing of rat calvarial defects with sulfated chitosan-coated calcium-deficient hydroxyapatite/bone morphogenetic protein 2 scaffolds. Tissue Engineering. Part A. 18 (1-2), 185-197 (2012).
  23. Murtey, M. D., Ramasamy, P. . Sample Preparations for Scanning Electron Microscopy – Life Sciences. In: Modern Electron Microscopy in Physical and Life Sciences. , 161-186 (2016).
  24. . . tousimis Critical Point Dryers – Samdri®-PVT-3D. , (2022).
  25. . . Leica EM ACE200 Vacuum Coater. , (2023).
  26. Spicer, P. P. Evaluation of bone regeneration using the rat critical size calvarial defect. Nature Protocols. 7 (10), 1918-1929 (2012).
  27. Leblanc Latour, M. . Cellulose biomaterials for bone tissue engineering [dissertation]. , (2023).
  28. Kodama, H. -. A., Amagai, Y., Sudo, H., Kasai, S., Yamamoto, S. Establishment of a clonal osteogenic cell line from newborn mouse calvaria. Japanese Journal of Oral Biology. 23 (4), 899-901 (1981).
  29. Wang, D., et al. Isolation and characterization of MC3T3-E1 preosteoblast subclones with distinct in vitro and in vivo differentiation/mineralization potential. Journal of Bone and Mineral Research. 14 (6), 893-903 (1999).
  30. Addison, W. N., et al. Extracellular matrix mineralization in murine MC3T3-E1 osteoblast cultures: An ultrastructural, compositional and comparative analysis with mouse bone. Bone. 71, 244-256 (2015).
  31. Heary, R. F., Parvathreddy, N., Sampath, S., Agarwal, N. Elastic modulus in the selection of interbody implants. Journal of Spine Surgery. 3 (2), 163-167 (2017).
  32. Lawson, Z. T., et al. Methodology for performing biomechanical push-out tests for evaluating the osseointegration of calvarial defect repair in small animal models. MethodsX. 8, 101541 (2021).
check_url/kr/65226?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Leblanc Latour, M., Tarar, M., Hickey, R. J., Cuerrier, C. M., Catelas, I., Pelling, A. E. Decellularized Apple-Derived Scaffolds for Bone Tissue Engineering In Vitro and In Vivo. J. Vis. Exp. (204), e65226, doi:10.3791/65226 (2024).

View Video