Flere vanlige metoder introduseres her for å studere membrantrafikkhendelsene til en plasmamembranreseptorkinase. Dette manuskriptet beskriver detaljerte protokoller, inkludert forberedelse av plantemateriale, farmakologisk behandling og konfokal bildeoppsett.
I eukaryote celler transporteres membrankomponenter, inkludert proteiner og lipider, spatiotemporalt til deres destinasjon i endomembransystemet. Dette inkluderer sekretorisk transport av nylig syntetiserte proteiner til celleoverflaten eller utsiden av cellen, endocytisk transport av ekstracellulære laster eller plasmamembrankomponenter inn i cellen, og resirkulering eller skytteltransport av last mellom de subcellulære organellene, etc. Membrantrafikkhendelser er avgjørende for utvikling, vekst og miljøtilpasning av alle eukaryote celler og er derfor under streng regulering. Celleoverflatereseptorkinaser, som oppfatter ligandsignaler fra det ekstracellulære rommet, gjennomgår både sekretorisk og endocytisk transport. Vanlige tilnærminger for å studere membrantrafikkhendelser ved bruk av en plasmamembranlokalisert leucinrik-repetisjonsreseptorkinase, ERL1, er beskrevet her. Tilnærmingene inkluderer forberedelse av plantemateriale, farmakologisk behandling og konfokal bildeoppsett. For å overvåke den spatiotemporale reguleringen av ERL1, beskriver denne studien samlokaliseringsanalysen mellom ERL1 og et multivesikulært kroppsmarkørprotein, RFP-Ara7, tidsserieanalysen av disse to proteinene og z-stack-analysen av ERL1-YFP behandlet med membrantrafikkhemmerne brefeldin A og wortmannin.
Membrantrafikk er en konservert cellulær prosess som distribuerer membrankomponenter (også kjent som laster), inkludert proteiner, lipider og andre biologiske produkter, mellom forskjellige organeller i en eukaryot celle eller over plasmamembranen til og fra det ekstracellulære rommet1. Denne prosessen forenkles av en samling membraner og organeller kalt endomembransystemet, som består av kjernemembranen, endoplasmatisk retikulum, Golgi-apparatet, vakuol / lysosomer, plasmamembranen og flere endosomer1. Endomembransystemet muliggjør modifikasjon, pakking og transport av membrankomponenter ved hjelp av dynamiske vesikler som skyttelbuss mellom disse organellene. Membrantrafikkhendelser er avgjørende for celleutvikling, vekst og miljøtilpasning og er derfor under streng og kompleks regulering2. For tiden har flere tilnærminger innen molekylærbiologi, kjemisk biologi, mikroskopi og massespektrometri blitt utviklet og anvendt på feltet membranhandel og har i stor grad avansert forståelsen av den spatiotemporale reguleringen av endomembransystemet 3,4. Molekylærbiologi brukes til klassiske genetiske manipulasjoner av de antatte aktørene som er involvert i membranhandel, for eksempel å endre genuttrykket av proteinet av interesse eller merke proteinet av interesse med visse koder. Verktøy i kjemisk biologi inkluderer bruk av molekyler som spesifikt forstyrrer trafikken på visse ruter 4,5. Massespektrometri er kraftig for å identifisere komponentene i en organell som har blitt mekanisk isolert ved biokjemiske tilnærminger 3,4. Imidlertid er membrantrafikk en dynamisk, mangfoldig og kompleks biologisk prosess1. For å visualisere membrantrafikkprosessen i levende celler under forskjellige forhold, er lysmikroskopi et viktig verktøy. Kontinuerlig fremgang har blitt gjort i avanserte mikroskopteknikker for å overvinne utfordringene med å måle effektiviteten, kinetikken og mangfoldet av hendelsene4. Her fokuserer denne studien på de allment vedtatte metodene innen kjemisk / farmakologisk biologi, molekylærbiologi og mikroskopi for å studere membrantrafikkhendelser i et naturlig forenklet og eksperimentelt tilgjengelig system, den stomatale utviklingsprosessen.
Stomata er mikroporer på planteoverflater som åpnes og lukkes for å lette gassutveksling mellom de indre cellene og miljøet 6,7,8. Derfor er stomata avgjørende for fotosyntese og transpirasjon, to hendelser som er avgjørende for planteoverlevelse og vekst. Stomatal utvikling justeres dynamisk av miljømessige signaler for å optimalisere plantens tilpasning til omgivelsene9. Dateres tilbake til studier i 2002, åpnet identifiseringen av reseptorproteinet Too Many Mouths (TMM) døren til en ny æra for å undersøke molekylære mekanismer for stomatal utvikling i modellplanten Arabidopsis thaliana10. Etter bare noen tiår er en klassisk signalvei identifisert. Fra oppstrøms til nedstrøms inkluderer denne banen en gruppe sekretoriske peptidligander i familien epidermale mønsterfaktorer (EFP), flere celleoverflate leucinrike-gjentatte (LRR) reseptorkinaser i EREECTA (ER) -familien, LRR-reseptorproteinet TMM, en MAPK-kaskade og flere bHLH-transkripsjonsfaktorer, inkludert SPEECHLESS (SPCH), MUTE, FAMA og SCREAM (SCRM) 11,12,13,14, 15,16,17,18,19,20,21,22,23,24,25,26. Tidligere arbeid indikerer at en av reseptorkinasene, ER-LIKE 1 (ERL1), demonstrerer aktiv subcellulær atferd ved EPF-oppfatning20. ERL2 trafikkerer også dynamisk mellom plasmamembranen og noen intracellulære organeller27. Blokkering av membrantrafikktrinnene forårsaker unormal stomatal mønster, noe som resulterer i stomatale klynger på bladoverflaten28. Disse resultatene tyder på at membrantrafikk spiller en viktig rolle i stomatal utvikling. Denne studien beskriver en protokoll for å spatiotemporalt undersøke ERL1-dynamikken ved hjelp av protein-protein subcellulær samlokaliseringsanalyse kombinert med farmakologisk behandling ved bruk av noen membrantrafikkhemmere.
Endomembransystemet separerer cytoplasma av en eukaryot celle i forskjellige rom, noe som muliggjør den spesialiserte biologiske funksjonen til disse organellene. For å levere lastproteiner og makromolekyler til deres endelige destinasjon til rett tid, blir mange vesikler guidet til skyttelbuss mellom disse organellene. Sterkt regulerte membrantrafikkhendelser spiller grunnleggende roller i levedyktighet, utvikling og vekst av celler. Mekanismen som regulerer denne avgjørende og kompliserte prosessen er fortsatt dårl…
The authors have nothing to disclose.
Dette arbeidet ble støttet av National Science Foundation (IOS-2217757) (X.Q.) og University of Arkansas for Medical Sciences (UAMS) Bronson Foundation Award (H.Z.).
10 mL syringes | VWR | BD309695 | Vacuum samples |
Brefeldin A (BFA) | Sigma | B7651 | membrane trafficking drug |
Confocal Microscope | Leica | Lecia SP8 TCS with LAS-X software package | Imaging |
Dissecting Forceps | VWR | 82027-402 | Genetic cross |
Fiji | NIH | https://imagej.net/Fiji | Image processing |
Leica LAS AF software | Leica | http://www.leica-microsystems.com | Image processing |
transgenic seeds of ERL1-YFP | Qi, X. et al. The manifold actions of signaling peptides on subcellular dynamics of a receptor specify stomatal cell fate. Elife. 9, doi:10.7554/eLife.58097, (2020). | ||
transgenic seeds of RFP-Ara7 | Ebine, K. et al. A membrane trafficking pathway regulated by the plant-specific RAB GTPase ARA6. Nat Cell Biol. 13 (7), 853-859, doi:10.1038/ncb2270, (2011). | ||
Wortmannin (Wm) | Sigma | W1628 | membrane trafficking drug |