Summary

Оптимизация эксплуатационных параметров анализа длины теломер TAGGG

Published: April 21, 2023
doi:

Summary

Здесь мы подробно описываем протокол количественного определения длины теломер с использованием нерадиоактивного хемилюминесцентного детектирования с акцентом на оптимизацию различных параметров производительности набора для анализа длины теломер TAGGG, таких как буферные количества и концентрации зонда.

Abstract

Теломеры представляют собой повторяющиеся последовательности, которые присутствуют на концах хромосом; Их укорочение является характерной особенностью соматических клеток человека. Укорочение происходит из-за проблемы с репликацией концов и отсутствия фермента теломеразы, который отвечает за поддержание длины теломер. Интересно, что теломеры также укорачиваются в ответ на различные внутренние физиологические процессы, такие как окислительный стресс и воспаление, на которые могут влиять внеклеточные агенты, такие как загрязняющие вещества, инфекционные агенты, питательные вещества или радиация. Таким образом, длина теломер служит отличным биомаркером старения и различных физиологических параметров здоровья. Набор для анализа длины теломер TAGGG используется для количественного определения средней длины теломер с использованием анализа фрагмента рестрикции теломер (TRF) и обладает высокой воспроизводимостью. Однако это дорогостоящий метод, и из-за этого он обычно не используется для больших чисел выборки. Здесь мы описываем подробный протокол для оптимизированного и экономически эффективного измерения длины теломер с использованием Southern Blots или TRF-анализа и нерадиоактивного детектирования на основе хемилюминесценции.

Introduction

Теломеры – это повторяющиеся последовательности ДНК, присутствующие на концах хромосом. Они имеют тандемные повторы TTAGGG и поддерживают целостность генома, защищая хромосому как от износа, так и от проблемы репликации конца, что означает, что часть 3′-навеса не может быть реплицирована ДНК-полимеразой 1,2. Короткие теломеры приводят к хромосомным аномалиям в клетках, из-за чего клетки постоянно останавливаются на стадии, называемой репликативным старением3. Короткие теломеры также вызывают множество других проблем, таких как дисфункция митохондрий 4,5 и клеточная дисфункция.

Теломерные повторы ДНК теряются по мере деления клетки со средней потерей от 25 до 200.н. в год 6, что приводит к клеточному старению после определенного количества делений6. Старение связано с более высокой частотой сопутствующих заболеваний, которая отмечается укорочением длины теломер7. Анализ фрагментов рестрикции теломер (TRF), описанный Мендером, является очень дорогим методом8. Из-за этого он не применяется при количественном определении длины теломер в большинстве исследований.

В настоящее время в большинстве эпидемиологических исследований используются количественные измерения длины теломер на основе полимеразной цепной реакции (кПЦР). Однако метод на основе кПЦР является относительным методом измерения, поскольку он измеряет соотношение между теломерами и продуктами амплификации генов одной копии, а не абсолютную длину теломер. Измерение длины теломер с использованием протокола TRF является методом золотого стандарта, поскольку он может измерять распределение длины теломер в образце, а измерения могут быть выражены в абсолютных значениях в килобазах (кб). Однако его использование ограничено, поскольку он громоздкий, трудоемкий и дорогостоящий. Здесь мы представляем оптимизированный протокол для измерения длины теломер с использованием TRF на основе хемилюминесценции.

TRF-анализ включает семь основных этапов: 1) культивирование клеток для выделения геномной ДНК, 2) выделение геномной ДНК с использованием метода фенол:хлороформ:изоамиловый спирт (P:C:I), 3) рестрикционное переваривание геномной ДНК, 4) электрофорез в агарозном геле, 5) Южное блоттинг фрагмента ДНК рестрикционного расщепления, 6) гибридизация и детектирование с помощью хемилюминесценция – иммобилизованный зонд теломер визуализируется высокочувствительным хемилюминесцентным субстратом для щелочной фосфатазы, динатриевым 2-хлор-5-(4-метоксиспиро[1,2-диоксетан-3,2′-(5-хлортрицикло[3.3.1.13.7]декан])-4-ил]-1-фенилфосфатом (CDP-Star)-и 7) для получения информации о средней длине теломер и дальности из этих теломерных мазков.

Protocol

ПРИМЕЧАНИЕ: См. Таблицу материалов для получения подробной информации обо всех реагентах, используемых в протоколе ниже. В таблице 1 перечислены лабораторные реагенты вместе с оптимизированными объемами, а в таблице 2 показаны рабочие концентрации коммерчес…

Representative Results

Извлеченная геномная ДНК (гДНК), которая была запущена на 1% агарозном геле, показала хорошую целостность, как показано на рисунке 1B, что указывает на то, что образец может быть использован для дальнейшей последующей обработки TRF. Затем проводили анализ TRF путем изменения ?…

Discussion

Мы подробно описываем процедуру нерадиоактивного, основанного на хемилюминесценции метода измерения длины теломер с использованием блоттинга Саузерна. Протокол был протестирован, чтобы обеспечить разумное использование нескольких реагентов без ущерба для качества результатов. Буф…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Мы хотели бы поблагодарить г-жу Прачи Шах за помощь в оптимизации протокола. Мы хотели бы поблагодарить доктора Маноджа Гарга за предоставление клеточной линии рака яичников A2780. EK поддерживается исследовательским грантом Департамента биотехнологии (No BT / RLF / Re-entry / 06/2015), Департамента науки и технологий (ECR / 2018 / 002117) и грантом NMIMS Seed (IO 401405).

Materials

Cell Line
A2780 (Ovarian adenocarcinoma cell line) Received as a gift
Equipment
ChemiDoc XRS+ (for imaging and UV cross linking) Biorad Universal hood II (721BR14277)
Nanodrop (Epoch 2) Biotek EPOCH2
Software
TeloTool Version 1.3
Materials
Acetic Acid Molychem 64-19-7
Agarose MP 180720
Amphotericin B Gibco, ThermoFisher Scientific, USA 15240062
DMEM  HyClone, Cytiva, USA SH30243.01
Ethylenediamine tetraacetic acid  Molychem 6381-92-6
HI FBS Gibco, ThermoFisher Scientific, USA 10270106
HCl Molychem 76-47-01-0
NaCl Molychem 7647-14-5
NaOH Molychem 1310-73-2
Nylon membrane Sigma 11209299001
Penicillin Gibco, ThermoFisher Scientific, USA 15240062
Sodium dodecyl sulfate Affymetrix 151-21-3
Streptomycin Gibco, ThermoFisher Scientific, USA 15240062
Tris BIORAD 77-86-1
Tris HCl Sigma Aldrich 1185-53-1
Whatman paper GE healthcare lifesciences 1001-917
Reagents
1 kb ladder NEB N3232S
20x SSC Invitrogen 15557-036
Anti DIG AP Telo TAGGG Telomere Length Assay kit 12209136001
Blocking solution 10x Telo TAGGG Telomere Length Assay kit 12209136001
Cutsmart Buffer NEB B6004
Detection buffer 10x Telo TAGGG Telomere Length Assay kit 12209136001
Dig easy hyb Telo TAGGG Telomere Length Assay kit 12209136001
Digestion Buffer Telo TAGGG Telomere Length Assay kit 12209136001
Hinf 1 Telo TAGGG Telomere Length Assay kit 12209136001
Hinf 1 (alternative to kit) NEB R0155T
Loading Dye BIOLABS N3231S
Maleic acid buffer 10x Telo TAGGG Telomere Length Assay kit 12209136001
Molecular marker Telo TAGGG Telomere Length Assay kit 12209136001
Probe Telo TAGGG Telomere Length Assay kit 12209136001
Rsa 1 Telo TAGGG Telomere Length Assay kit 12209136001
Rsa 1 (alternative to kit) NEB R0167L
Substrate Telo TAGGG Telomere Length Assay kit 12209136001
Wash buffer Telo TAGGG Telomere Length Assay kit 12209136001

References

  1. Greider, C. W. Telomere length regulation. Annual Review of Biochemistry. 65, 337-365 (1996).
  2. Valdes, A. M., et al. Obesity, cigarette smoking, and telomere length in women. Lancet. 366 (9486), 662-664 (2005).
  3. Allsopp, R. C., et al. Telomere length predicts replicative capacity of human fibroblasts. Proceedings of the National Academy of Sciences. 89 (21), 10114-10118 (1992).
  4. Epel, E. S., et al. Accelerated telomere shortening in response to life stress. Proceedings of the National Academy of Sciences. 101 (49), 17312-17315 (2004).
  5. Canela, A., Vera, E., Klatt, P., Blasco, M. A. High-throughput telomere length quantification by FISH and its application to human population studies. Proceedings of the National Academy of Sciences. 104 (13), 5300-5305 (2007).
  6. Révész, D., Milaneschi, Y., Verhoeven, J. E., Penninx, B. W. Telomere length as a marker of cellular aging is associated with prevalence and progression of metabolic syndrome. The Journal of Clinical Endocrinology and Metabolism. 99 (12), 4607-4615 (2014).
  7. Rizvi, S., Raza, S. T., Mahdi, F. Telomere length variations in aging and age-related diseases. Current Aging Science. 7 (3), 161-167 (2014).
  8. Mender, I., Shay, J. W. Telomere restriction fragment (TRF) analysis. Bio-Protocol. 5 (22), e1658 (2015).
  9. Zhu, Y., Liu, X., Ding, X., Wang, F., Geng, X. Telomere and its role in the aging pathways: telomere shortening, cell senescence and mitochondria dysfunction. Biogerontology. 20 (1), 1-16 (2019).
  10. Göhring, J., Fulcher, N., Jacak, J., Riha, K. TeloTool: a new tool for telomere length measurement from terminal restriction fragment analysis with improved probe intensity correction. Nucleic Acids Research. 42 (3), 21 (2014).
  11. Jenkins, F. J., Kerr, C. M., Fouquerel, E., Bovbjerg, D. H., Opresko, P. L. Modified terminal restriction fragment analysis for quantifying telomere length using in-gel hybridization. Journal of Visualized Experiments. (125), e56001 (2017).
  12. Fojtová, M., Fajkus, P., Sováková, P. P., Fajkus, J. Terminal restriction fragments (TRF) method to analyze telomere lengths. Bio-protocol. 5 (23), e1671 (2015).
  13. Kimura, M., et al. Measurement of telomere length by the Southern blot analysis of terminal restriction fragment lengths. Nature Protocols. 5 (9), 1596-1607 (2010).
  14. Trigodet, F., et al. High molecular weight DNA extraction strategies for long-read sequencing of complex metagenomes. Molecular Ecology Resources. 22 (5), 1786-1802 (2022).
  15. Lai, T. P., Wright, W. E., Shay, J. W. Comparison of telomere length measurement methods. Philosophical Transactions of the Royal Society of London. Series B, Biological Sciences. 373 (1741), 20160451 (2018).
  16. Mochida, A., et al. Telomere size and telomerase activity in Epstein-Barr virus (EBV)-positive and EBV-negative Burkitt’s lymphoma cell lines. Archives of Virology. 150 (10), 2139-2150 (2005).
  17. Gupta, N., et al. Replicative senescence, telomere shortening and cell proliferation rate in Gaddi goat’s skin fibroblast cell line. Cell Biology International. 31 (10), 1257-1264 (2007).
  18. Michaeli, J., et al. Leukocyte telomere length correlates with extended female fertility. Cells. 11 (3), 513 (2022).
  19. Lesmana, A., et al. Continuous reference intervals for leukocyte telomere length in children: the method matters. Clinical Chemistry and Laboratory Medicine. 59 (7), 1279-1288 (2021).
check_url/kr/65288?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Jain, M., Madeka, S., Khattar, E. Optimization of Performance Parameters of the TAGGG Telomere Length Assay. J. Vis. Exp. (194), e65288, doi:10.3791/65288 (2023).

View Video