Summary

Et sett med screeningteknikker for en rask oversikt over nøytrofilfunksjonen

Published: February 09, 2024
doi:

Summary

Denne protokollen inneholder et sett med nøytrofile funksjonsanalyser som skal brukes som en screeningsmetode for å dekke funksjoner fra forskjellige signalveier. Protokollen inkluderer en innledende og enkel evaluering av cellelevedyktighet, renhet, reaktiv oksygenartsproduksjon, sanntidsmigrasjon, fagocytose og et foreløpig forslag om nøytrofile ekstracellulære feller.

Abstract

Neutrofiler er kjent som en av de første forsvarslinjene i den medfødte immunresponsen og kan utføre mange spesielle cellulære funksjoner, som kjemotaksis, omvendt migrasjon, fagocytose, degranulering av cytotoksiske enzymer og metabolitter og frigjøring av DNA som nøytrofile ekstracellulære feller (NET). Neutrofiler har ikke bare tett regulert signalering selv, men deltar også i reguleringen av andre komponenter i immunsystemet. Siden ferske nøytrofiler er terminalt differensierte, kortvarige og svært variable blant individer, er det viktig å få mest mulig ut av de innsamlede prøvene. Forskere må ofte utføre screeninganalyser for å vurdere en oversikt over de mange nøytrofile funksjonene som kan påvirkes av spesifikke forhold som vurderes. Et sett med tester etter en enkelt isolasjonsprosess av nøytrofiler med normal tetthet ble utviklet for å imøtekomme dette behovet, og søkte en balanse mellom hastighet, omfattende, kostnad og nøyaktighet. Resultatene kan brukes til å resonnere og veilede grundige oppfølgingsstudier. Denne prosedyren kan utføres på en gjennomsnittlig tid på 4 timer og inkluderer evaluering av cellelevedyktighet, produksjon av reaktive oksygenarter (ROS), sanntidsmigrasjon og fagocytose av gjær på glassglass, og etterlater nok celler til mer detaljerte tilnærminger som omics-studier. Videre inkluderer prosedyren en måte å enkelt observere et foreløpig forslag til NET etter rask panoptisk farging observert ved lysmikroskopi, med mangel på spesifikke markører, om enn nok til å indikere om ytterligere innsats på den måten ville være verdt. Mangfoldet av testede funksjoner kombinerer vanlige punkter blant testene, noe som reduserer analysetiden og utgiftene. Prosedyren ble kalt NeutroFun Screen, og selv om den har begrensninger, balanserer den de nevnte faktorene. Videre er målet med dette arbeidet ikke et bestemt testsett, men snarere en retningslinje som enkelt kan justeres til hvert laboratoriums ressurser og krav.

Introduction

Neutrofiler er de mest tallrike medfødte immuncellene i humant blod og er kjent for å spille en viktig rolle i infeksjon og betennelse, og er de første respondentene som kommer til stedetfor vevskader. I de senere år har det vært en økende anerkjennelse av den avgjørende rollen som nøytrofiler spiller i en rekke sykdommer og i å støtte homeostase2. Neutrofiler har ikke bare tett regulert signalering selv, men deltar også i reguleringen av andre komponenter i immunsystemet 3,4,5. Derfor er undersøkelse av nøytrofiler og deres mange uvanlige cellulære funksjoner, som kjemotaksis, omvendt migrasjon6, fagocytose7, respiratorisk utbrudd8 og frigjøring av nøytrofile ekstracellulære feller (NET)7, avgjørende i mange forskningssammenhenger der det er nødvendig å vurdere potensielle nøytrofile funksjonelle, morfologiske, eller molekylære endringer utløst av spesifikke forhold som analyseres.

Ferskt isolerte nøytrofiler er terminalt differensierte, kortvarige, svært dynamiske og lett aktiverte9. Imidlertid er en effektiv lagringsmetode som ikke påvirker nøytrofilresponsene ennå ikke oppnådd, noe som gjør det utfordrende å utføre flere analyser som må være uavbrutt. Videre kan tidligere beskrevne funksjonelle analyser10,11, basert på analyser som krever cytometri og/eller fluorescerende farging, ikke være et levedyktig valg når en bred og innledende evaluering av nøytrofilen er nødvendig.

For å løse disse problemene beskriver denne protokollen et sett med tester som kan utføres etter en enkelt isolasjonsprosess, inkludert evaluering av cellelevedyktighet, produksjon av reaktive oksygenarter (ROS), sanntidsmigrasjon og fagocytose av Saccharomyces cerevisiae, hvis resultater kan brukes til å resonnere grundige oppfølgingsstudier. Denne prosedyren, kalt NeutroFun Screen, ble designet for å omfatte de ledende effektoraktivitetene, unntatt degranulering, og kan fullføres på en gjennomsnittlig tid på 4 timer, inkludert 1 time aktivering. I tillegg kan de gjenværende cellene brukes til mer detaljerte tilnærminger som omics-studier. Fordelen med denne metoden ligger i balansen mellom hastighet, omfattende, kostnad og nøyaktighet.

Videre er det en måte å enkelt observere et foreløpig forslag til NET, uten spesifikke markører, men nok til å indikere om ytterligere innsats i den retningen ville være verdt. Mangfoldet av testede funksjoner tar sikte på å kombinere felles poeng blant tester, redusere analysetiden og utgiftene. Hovedmålet med denne metoden er å gi en balansert, funksjonell analyse med hensyn til hastighet, omfattende, kostnad og nøyaktighet som gir en oversikt over nøytrofilens respons, noe som gjør det til et nyttig første skritt i å undersøke effekten av nye stimuli på nøytrofiler med normal tetthet.

Protocol

Alle eksperimenter fulgte strengt de etiske retningslinjene fastsatt av det institusjonelle gjennomgangsstyret ved Universitetet i Brasilia (prosess 13364819.0.0000.5558), og prøver ble identifisert med koder for å sikre donoranonymitet. Cellene ble hentet fra normale friske mannlige donorer i alderen 18-35 år, som signerte det informerte samtykket og oppfylte følgende valgbarhetskriterier: ikke-røykere / dampere, ingen kroniske helsemessige forhold og ingen historie med inflammatoriske tilstander de siste 14 dagene…

Representative Results

Den tetthetsbaserte isolasjonsmetoden som ble brukt i denne studien (figur 1) oppfylte kriteriene for de foreslåtte forsøkene. Nøytrofile parametere oppnådd fra denne metoden inkluderte levedyktighet ≥98%, renhet ≥94% og celleutbytte ≥1,5 x 107, uten aktivering detekterbar ved screeningtestene. To relevante trinn i isolering av PMN er antikoagulasjon og fjerning av RBC. Å holde det antikoagulerte blodrøret eller sprøyten ved en mild gynging før lagdeling over tetthet…

Discussion

Nøytrofiler er svært dynamiske og responsive celler som er kortvarige og ennå ikke kan kryopreserveres19, noe som gjør undersøkelser av deres biologi utfordrende. Derfor er det viktig å følge nøye skritt for å oppnå levedyktige, berikede og hvilende nøytrofiler11,20. Denne studien benyttet en tetthetsbasert isolasjonsteknikk som legger vekt på mild og minimal manipulasjon, samt bruk av lave temperaturer frem til aktiveringstrin…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forfatterne anerkjenner følgende finansieringsorganer: FAPDF, CNPq, CAPES, UnB, FINEP og FINATEC.

Materials

CIM-Plate 16 Agilent  5665825001
CLARIOstar Plate Reader  BMG LABTECH US Patent Number 9,733,124
Product details: MARS Data Analysis Software
Dimethyl sulfoxide Dinâmica 1582
DNAse I Sigma – Aldrich DN 25
Ethylenediaminetetraacetic acid disodium salt dihydrate Sigma – Aldrich E5134
Fast panoptic stain Laborclin 620529
Glass slide Exacta 7102
Hank’s Balanced Salt Solution with calcium, with magnesium, without phenol red. Sigma – Aldrich 55037C
Hank’s Balanced Salt Solution without calcium chloride, magnesium sulfate and sodium bicarbonate. Sigma – Aldrich H4641
Heparin Blau  7896014655229
Laminar flow cabinet Veco VLFS-12
Microscope Zeiss 415501-0101-002 Product details: Primostar 1
Mixing Block BIOER MB-102
Neubauer improved bright-lined New Optik 1110000
N-formyl-methionyl-leucyl-phenylalanine Sigma – Aldrich F3506
Nitroblue tetrazolium Neon CAS 298-83-9
Percoll Cytiva 17089101 separation media
Phorbol 12-myristate 13-acetate Sigma – Aldrich P8139
Phosphate buffered saline tablet Sigma – Aldrich P4417
ROTOFIX 32 A Hettich 1206
Saccharomyces cerevisiae Fleischmann
Safranin Sigma – Aldrich 50240
Sodium dodecyl sulfate Cytiva 17-1313-01
Sonicator Qsonica Q125
Trypan blue solution Vetec C.I. 23850
Vortex Genie 2 Scientific Industries, Inc. 0K-0500-902
xCELLigence Real-Time Cell Analysis (RTCA) DP (dual purpose) Agilent  380601050 Product details: RTCA system composed of detection hardware, cell plates and software

References

  1. Nauseef, W. M., Borregaard, N. Neutrophils at work. Nature Immunology. 15 (7), 602-611 (2014).
  2. Groeneweg, L., Hidalgo, A. Emerging roles of infiltrating granulocytes and monocytes in homeostasis. Cellular and Molecular Life Sciences. 77 (19), 3823-3830 (2020).
  3. Rosales, C., Lowell, C. A., Schnoor, M., Uribe-Querol, E. Neutrophils: their role in innate and adaptive immunity 2017. Journal of Immunology Research. 2017, 9748345 (2017).
  4. Castro, M., et al. Proteome analysis of resting human neutrophils. Protein & Peptide Letters. 13 (5), 481-487 (2006).
  5. Li, Y., et al. The regulatory roles of neutrophils in adaptive immunity. Cell Communication and Signaling. 17, 147 (2019).
  6. de Oliveira, S., Rosowski, E. E., Huttenlocher, A. Neutrophil migration in infection and wound repair: going forward in reverse. Nature Reviews Immunology. 16 (6), 378-391 (2016).
  7. Burn, G. L., Foti, A., Marsman, G., Patel, D. F., Zychlinsky, A. The neutrophil. Immunity. 54 (7), 1377-1391 (2021).
  8. El-Benna, J., et al. Priming of the neutrophil respiratory burst: role in host defense and inflammation. Immunological Reviews. 273 (1), 180-193 (2016).
  9. Castro, M. S., Cilli, E. M., Fontes, W. Combinatorial synthesis and directed evolution applied to the production of alpha-helix forming antimicrobial peptides analogues. Current Protein & Peptide Science. 7 (6), 473-478 (2006).
  10. Mihaila, A. C., et al. Transcriptional profiling and functional analysis of N1/N2 neutrophils reveal an immunomodulatory effect of S100A9-blockade on the pro-inflammatory N1 subpopulation. Frontiers in Immunology. 12, 708770 (2021).
  11. Kuhns, D. B., Priel, D. A. L., Chu, J., Zarember, K. A. Isolation and functional analysis of human neutrophils. Current Protocols in Immunology. 111 (1), 7-23 (2015).
  12. Paulíková, E., Kociková, A., Sabol, M. Modification of a panoptic method of staining isolated cells. Bratislavske Lekarske Listy. 94 (12), 638-640 (1993).
  13. Strober, W. Trypan blue exclusion test of cell viability. Current Protocols in Immunology. 111 (1), 1-3 (2015).
  14. Libério, M. S., et al. Anti-proliferative and cytotoxic activity of pentadactylin isolated from Leptodactylus labyrinthicus on melanoma cells. Amino Acids. 40 (1), 51-59 (2011).
  15. Cano, P. M., Vargas, A., Lavoie, J. P. A real-time assay for neutrophil chemotaxis. BioTechniques. 60 (5), 245-251 (2016).
  16. Stefanowicz-Hajduk, J., Adamska, A., Bartoszewski, R., Ochocka, J. R. Reuse of E-plate cell sensor arrays in the xCELLigence Real-Time Cell Analyzer. BioTechniques. 61 (3), 117-122 (2016).
  17. Björkstén, B., Nyström, K., Lindqvist, B. The nitroblue tetrazolium (NBT) test in endemic benign (epidemic) nephropathy. Acta Medica Scandinavica. 199 (1-6), 147-150 (1976).
  18. Aquino, E., et al. Proteomic analysis of neutrophil priming by PAF. Protein & Peptide Letters. 23 (2), 142-151 (2016).
  19. Blanter, M., Gouwy, M., Struyf, S. Studying neutrophil function in vitro: cell models and environmental factors. Journal of Inflammation Research. 14, 141-162 (2021).
  20. Hsu, A. Y., Peng, Z., Luo, H., Loison, F. Isolation of human neutrophils from whole blood and buffy coats. Journal of Visualized Experiments. (175), e62837 (2021).
  21. Moghadam, Z. M., Henneke, P., Kolter, J. From flies to men: ROS and the NADPH oxidase in phagocytes. Frontiers in Cell and Developmental Biology. 9, 628991 (2021).
  22. Pattan, S. S., Bhat, K. G., Pattar, G. D., Kuntagi, M. Comparison of three different techniques for isolation of neutrophils from blood and their utility in performing nitroblue tetrazolium test. International Journal of Basic and Applied Physiology. 8 (1), 41 (2019).
  23. Gooty, J. R., Shashirekha, A., Guntakala, V. R., Palaparthi, R. Estimation of phagocytic activity of polymorphonuclear leukocytes in chronic and aggressive periodontitis patients with nitroblue tetrazolium test. Journal of Indian Society of Periodontology. 23 (4), 316 (2019).
  24. Langer, S., et al. Clinical and laboratory profiles of 17 cases of chronic granulomatous disease in north India. Indian Journal of Hematology and Blood Transfusion. 37 (1), 45-51 (2021).
  25. Oualha, R., et al. Infection of human neutrophils with Leishmania infantum or Leishmania major strains triggers activation and differential cytokines release. Frontiers in Cellular and Infection Microbiology. 9, 153 (2019).
  26. Zilinskas, J., Zekonis, J., Zekonis, G., Valantiejiene, A., Periokaite, R. The reduction of nitroblue tetrazolium by total blood in periodontitis patients and the aged. Stomatologijal. 9 (4), 105-108 (2007).
  27. Benov, L. Improved formazan dissolution for bacterial MTT assay. Microbiology Spectrum. 9 (3), e01637 (2021).
  28. Chen, Y., Junger, W. G. Measurement of oxidative burst in neutrophils. Methods in Molecular Biology. 844, 115-124 (2012).
  29. Richardson, M. P., Ayliffe, M. J., Helbert, M., Davies, E. G. A simple flow cytometry assay using dihydrorhodamine for the measurement of the neutrophil respiratory burst in whole blood: comparison with the quantitative nitrobluetetrazolium test. Journal of Immunological Methods. 219 (1-2), 187-193 (1998).
  30. Jancinová, V., et al. The combined luminol/isoluminol chemiluminescence method for differentiating between extracellular and intracellular oxidant production by neutrophils. Redox Report. 11 (3), 110-116 (2006).
  31. Nosál, R., et al. Pharmacological intervention with oxidative burst in human neutrophils. Interdisciplinary Toxicology. 10 (2), 56-60 (2017).
  32. Mol, S., et al. Efficient neutrophil activation requires two simultaneous activating stimuli. International Journal of Molecular Sciences. 22 (18), 10106 (2021).
  33. Schneider, L., et al. Flow cytometry evaluation of CD14/CD16 monocyte subpopulations in systemic sclerosis patients: a cross sectional controlled study. Advances in Rheumatology. 61 (1), 27 (2021).
  34. Akin, E., Pelen, N. N., Tiryaki, I. U., Yalcin, F. Parameter identification for gompertz and logistic dynamic equations. PLoS One. 15 (4), e0230582 (2020).
  35. Guy, J. B., et al. Evaluation of the cell invasion and migration process: A comparison of the video microscope-based scratch wound assay and the boyden chamber assay. Journal of Visualized Experiments. (129), e56337 (2017).
  36. Brinkmann, V., et al. Neutrophil extracellular traps kill bacteria. Science. 303 (5663), 1532-1535 (2004).
  37. de Bont, C. M., Koopman, W. J. H., Boelens, W. C., Pruijn, G. J. M. Stimulus-dependent chromatin dynamics, citrullination, calcium signalling and ROS production during NET formation. Biochimica et Biophysica Acta. Molecular Cell Research. 1865, 1621-1629 (2018).
  38. Masuda, S., et al. Measurement of NET formation in vitro and in vivo by flow cytometry. Cytometry Part A. 91 (8), 822-829 (2017).
  39. Zharkova, O., et al. A flow cytometry-based assay for high-throughput detection and quantification of neutrophil extracellular traps in mixed cell populations. Cytometry Part A. 95 (3), 268-278 (2019).
  40. Hosseinnejad, A., et al. DNase I functional microgels for neutrophil extracellular trap disruption. Biomaterials Science. 10 (1), 85-99 (2022).
  41. Chrysanthopoulou, A., et al. Neutrophil extracellular traps promote differentiation and function of fibroblasts. The Journal of Pathology. 233 (3), 294-307 (2014).
  42. Tong, M., Abrahams, V. M. Visualization and quantification of neutrophil extracellular traps. Methods in Molecular Biology. 2255, 87-95 (2021).
  43. Santana, C. J. C., et al. Biological properties of a novel multifunctional host defense peptide from the skin secretion of the chaco tree frog, boana raniceps. Biomolecules. 10 (5), 790 (2020).
  44. Murphy, M. P., et al. Guidelines for measuring reactive oxygen species and oxidative damage in cells and in vivo. Nature Metabolism. 4 (6), 651-662 (2022).
  45. Boero, E., et al. Use of flow cytometry to evaluate phagocytosis of staphylococcus aureus by human neutrophils. Frontiers in Immunology. 12, 635825 (2021).
  46. Karsten, C. B., et al. A versatile high-throughput assay to characterize antibody-mediated neutrophil phagocytosis. Journal of Immunological Methods. 471, 46-56 (2019).
  47. Smirnov, A., Solga, M. D., Lannigan, J., Criss, A. K. Using imaging flow cytometry to quantify neutrophil phagocytosis. Methods in Molecular Biology. 2087, 127-140 (2020).
check_url/kr/65329?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Souza Luz, I., Takaya, R., Gonzaga Ribeiro, D., Sales Silva, N., Fontes, L., Castro, M. S., Fontes, W. A Set of Screening Techniques for a Quick Overview of the Neutrophil Function. J. Vis. Exp. (204), e65329, doi:10.3791/65329 (2024).

View Video