Summary

Effektive teknikker for fôring og ex situ-kultur av en rugende skleraktinsk korall, Pocillopora acuta

Published: June 23, 2023
doi:

Summary

Klimaendringer påvirker korallrevets økosystemer globalt. Koraller hentet fra ex situ akvakultursystemer kan bidra til å støtte restaurering og forskningsinnsats. Her er fôrings- og korallkulturteknikker som kan brukes til å fremme langsiktig vedlikehold av rugende skleraktinske koraller ex situ skissert.

Abstract

Klimaendringer påvirker overlevelse, vekst og rekruttering av koraller globalt, med store skift i overflod og samfunnssammensetning forventet i revets økosystemer i løpet av de neste tiårene. Erkjennelsen av denne revforringelsen har ført til en rekke nye forsknings- og restaureringsbaserte aktive intervensjoner. Ex situ akvakultur kan spille en støttende rolle gjennom etablering av robuste korallkulturprotokoller (f.eks. for å forbedre helse og reproduksjon i langsiktige eksperimenter) og gjennom å tilby en konsekvent stamfiskforsyning (f.eks. til bruk i restaureringsprosjekter). Her skisseres enkle teknikker for fôring og ex situ-kultur av rugende skleraktinske koraller ved å bruke den vanlige og godt studerte korallen, Pocillopora acuta, som et eksempel. For å demonstrere denne tilnærmingen ble korallkolonier utsatt for forskjellige temperaturer (24 ° C vs. 28 ° C) og fôringsbehandlinger (matet vs. ikke matet) og reproduktiv produksjon og timing, samt muligheten for å mate Artemia nauplii til koraller ved begge temperaturer, ble sammenlignet. Reproduksjonsproduksjonen viste stor variasjon mellom koloniene, med forskjellige trender observert mellom temperaturbehandlingene; Ved 24 °C produserte fôrede kolonier flere larver enn kolonier uten mat, men det motsatte ble funnet i kolonier dyrket ved 28 °C. Alle koloniene reproduserte seg før fullmåne, og forskjeller i reproduksjonstidspunkt ble bare funnet mellom kolonier uten mat i 28 °C-behandlingen og matkolonier i 24 °C-behandlingen (gjennomsnittlig månedag for reproduksjon ± standardavvik: henholdsvis 6,5 ± 2,5 og 11,1 ± 2,6). Korallkoloniene spiste effektivt på Artemia nauplii ved begge behandlingstemperaturene. Disse foreslåtte fôrings- og kulturteknikkene fokuserer på reduksjon av korallstress og fremme reproduktiv levetid på en kostnadseffektiv og tilpassbar måte, med allsidig anvendelighet i både gjennomstrømnings- og resirkulerende akvakultursystemer.

Introduction

Mange korallrevøkosystemer globalt går tapt og forringes som følge av stress ved høye temperaturer drevet av klimaendringer 1,2. Korallbleking (dvs. nedbrytning av korall-algesymbiosen3) ble ansett som relativt sjelden de siste4, men forekommer nå oftere5, med årlig bleking forventet å forekomme i mange regioner innen midten til slutten av århundret 6,7. Denne forkortelsen av mellomperioden mellom blekingshendelser kan begrense kapasiteten til revets motstandskraft8. De direkte virkningene av stress ved høye temperaturer på korallkolonier (f.eks. vevsskade9; energiuttømming10) er iboende knyttet til indirekte påvirkninger på revskalanivå, hvorav en reduksjon i reproduksjons-/rekrutteringskapasitet er spesielt bekymringsfull11. Dette har ansporet en rekke anvendt forskning som utforsker, for eksempel aktiv in situ forbedring av rekruttering (f.eks. revsåing12), ny teknologi for oppskalering av korallrestaurering13 og simulering av reproduktive signaler for å indusere reproduksjon i ex situ-systemer 14. Komplementære til disse aktive inngrepene er den nylige anerkjennelsen av fordelene ved heterotrofisk fôring i koraller under høytemperaturstress15 og utforskningen av rollen som matforsyning kan spille i reproduksjon16.

Heterotrofisk fôring er kjent for å påvirke ytelsen til koraller17 og har vært spesielt knyttet til økt korallvekst18,19, samt termisk motstand og elastisitet20,21. Likevel er fordelene med heterotrofi ikke allestedsnærværende blant korallarter22 og kan variere basert på hvilken type mat som blir konsumert 23, samt nivået av lyseksponering24. I sammenheng med korallreproduksjon har heterotrofisk fôring vist variable resultater, med observasjoner av høyere25 samt lavere26 reproduksjonskapasitet etter heterotrofisk fôring rapportert. Påvirkningen av heterotrofisk fôring på korallreproduksjon over et temperaturspekter blir sjelden vurdert, men i den tempererte korallen Cladocora caespitosa ble heterotrofi funnet å være viktigere for reproduksjon under lavere temperaturforhold27. En bedre forståelse av rollen som temperatur og fôring på reproduktiv produksjon er sannsynligvis nødvendig for å avgjøre om spesifikke rev (f.eks. rev forbundet med høy mattilgjengelighet28) har en høyere kapasitet for rekruttering under klimaendringer.

I likhet med reproduktiv produksjon er effekten av temperatur og fôring på reproduktiv timing i koraller fortsatt relativt understudert, til tross for at synkronisering av reproduksjon med abiotiske / biotiske forhold er en viktig faktor for rekrutteringssuksess i et oppvarmende hav29. Varmere temperaturer har vist seg å resultere i tidligere reproduksjon i koralltermiske kondisjoneringsstudier utført i laboratoriet30, og dette har også blitt observert i koraller samlet fra naturlige rev over sesong31. Likevel, interessant nok ble den motsatte trenden nylig observert i matede koraller dyrket i løpet av 1 år i et ex situ gjennomstrømningssystem (dvs. reproduksjon skjedde tidligere i månens syklus ved kjøligere vintertemperaturer og senere i månens syklus ved varmere sommertemperaturer)32. Dette kontrasterende resultatet antyder at reproduktiv timing kan avvike fra typiske mønstre under forhold forbundet med rikelig energiske ressurser.

Langsiktige kontrollerte eksperimenter under forskjellige temperaturscenarier kan bidra til en bedre forståelse av heterotrofiens innflytelse på reproduksjon i skleraktinske koraller. Å opprettholde reproduserende korallkolonier under ex situ-betingelser for flere reproduktive sykluser kan imidlertid være utfordrende (men se tidligere forskning32,33). Her beskrives enkle og effektive teknikker for aktiv fôring (matkilde: Artemia nauplii) og langtidskultur av en rugende korall (Pocillopora acuta) i et gjennomstrømmingsoppdrettssystem; Likevel skal det bemerkes at alle de beskrevne teknikkene også kan brukes i resirkulerende akvakultursystemer. For å demonstrere disse teknikkene ble det utført en foreløpig sammenligning av reproduksjonsproduksjonen og tidspunktet for korallkolonier holdt ved 24 ° C og 28 ° C under “matet” og “umatet” behandlinger. Disse temperaturene ble valgt for å tilnærme sjøvannstemperaturer om vinteren og sommeren, henholdsvis i Sør-Taiwan30,34; En høyere temperatur ble ikke valgt fordi fremme av langsiktig ex situ-kultur, i stedet for å teste korallrespons på termisk stress, var et primært mål for dette eksperimentet. Videre ble tettheten av Artemia nauplii før og etter fôringsøktene kvantifisert for å sammenligne muligheten for heterotrofisk fôring ved begge temperaturbehandlingene.

Nærmere bestemt ble 24 kolonier av P. acuta (gjennomsnittlig total lineær forlengelse ± standardavvik: 21,3 cm ± 2,8 cm) oppnådd fra gjennomstrømningstanker ved forskningsanleggene til National Museum of Marine Biology & Aquarium, Sør-Taiwan. Pocillopora acuta er en vanlig korallart som har både en kringkastet gyting, men typisk rugende reproduksjonsstrategi35,36. Foreldrekoloniene til disse korallene ble opprinnelig samlet inn fra Outlet-revet (21.931°Ø, 120.745°N) omtrent 2 år tidligere for et annet eksperiment32. Følgelig hadde korallkoloniene som ble brukt i det nåværende eksperimentet blitt oppdrettet hele livet under ex situ kulturforhold; Spesielt ble koloniene utsatt for omgivelsestemperatur og en 12 timer: 12 h lys: mørk syklus ved 250 μmol quanta m-2 · s-1 og ble matet Artemia nauplii to ganger per uke. Vi erkjenner at denne langsiktige ex situ-kulturen kunne ha påvirket hvordan koloniene reagerte på behandlingsbetingelsene i dette eksperimentet. Vi vil derfor understreke at det primære målet her er å illustrere hvordan de beskrevne teknikkene effektivt kan brukes til å dyrke koraller ex situ ved å demonstrere et anvendt eksempel der effekten av temperatur og fôring på korallreproduksjon ble vurdert.

Korallkolonier ble jevnt fordelt over seks gjennomstrømningssystemkulturtanker (tankens indre lengde x bredde x høyde: 175 cm x 62 cm x 72 cm; tanklysregime: 12 timer: 12h lys: mørk syklus ved 250 μmol quanta m-2 · s-1) (figur 1A). Temperaturen i tre av tankene ble satt til 28 °C, og temperaturen i de tre andre tankene ble satt til 24 °C; hver tank hadde en logger som registrerte temperaturen hvert 10. minutt (se materialtabellen). Temperaturen ble uavhengig kontrollert i hver tank ved hjelp av kjølere og varmeovner, og vannsirkulasjonen ble opprettholdt ved hjelp av strømningsmotorer (se materialtabellen). Halvparten av koloniene i hver tank (n = 2 kolonier/tank) ble fôret med Artemia nauplii to ganger i uken, mens de andre koloniene ikke fikk mat. Hver fôringsøkt varte i 4 timer og ble gjennomført i to uavhengige temperaturspesifikke fôringstanker. Under fôring ble alle koloniene flyttet inn i fôringstankene, inkludert de ufôrede koloniene, for å standardisere den potensielle stresseffekten av å flytte koloniene mellom tankene. Koloniene i de matede og ikke-matede behandlingene ble plassert i sitt eget rom ved hjelp av en masket ramme i de temperaturspesifikke fôringstankene, slik at bare koloniene i matet tilstand mottok mat. Korallens reproduksjonsproduksjon og tidspunkt ble vurdert for hver koloni daglig kl. 09:00 ved å telle antall larver som hadde blitt sluppet ut i larveoppsamlingsbeholderne over natten.

Protocol

1. Hengende korallkolonieri ex situ akvakulturtanker Plasser en hakket stang (lengde x bredde x høyde: 75 cm x 1 cm x 3 cm), heretter kalt “hengestang”, over kulturtanken som forberedelse til oppheng av korallkoloniene.MERK: Den hengende stangen som ble brukt i dette eksperimentet var skreddersydd, men et enkelt PVC-rør med utstående skruer (dvs. å fungere som hakk) ville være tilstrekkelig så lenge det kan plasseres på en stabil måte over toppen av kulturtanken og er sterk…

Representative Results

De beskrevne protokollene tillot (1) sammenligning av reproduksjonsproduksjonen og tidspunktet for individuelle korallkolonier blant forskjellige fôrings- og temperaturbehandlinger og (2) en vurdering av muligheten for Artemia nauplii-fôring ved forskjellige temperaturer. Her gis en kort oversikt over funnene, men det bør utvises forsiktighet med hensyn til den brede tolkningen av de rapporterte effektene av temperatur og fôring på korallreproduksjon på grunn av eksperimentets kortsiktige karakter (dvs. ba…

Discussion

Denne foreløpige vurderingen av effekten av temperatur og fôring på korallreproduksjon avslørte forskjeller i reproduksjonsproduksjon og timing mellom kolonier dyrket under forskjellige behandlingsbetingelser. Videre ble det funnet at fôring av Artemia nauplii til korallkolonier syntes å være effektiv ved relativt kjølig (24 ° C) så vel som varme temperaturer (28 ° C). Disse kombinerte funnene fremhever anvendeligheten av disse enkle teknikkene for fôring og kultur for reproduksjon av skleraktinske k…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Denne forskningen ble finansiert av departementet for vitenskap og teknologi (Taiwan), tilskuddsnummer MOST 111-2611-M-291-005 og MOST 111-2811-M-291-001.

Materials

Artemia cysts  Supreme plus NA Food source 
Chiller Resun CL650 To cool down water temperature if needed
Conductivity portable meter WTW Cond 3110 To measure salinity
Enrichment diets Omega NA Used in Artemia cultivation
Fishing line Super Nylon monofilament To hang the coral colonies
Flow motors Maxspect GP03 To create water flow
Heater 350 W ISTA NA Heaters used in tanks
HOBO pendant temperature logger Onset Computer UA-002-08 To record water temperature
LED lights Mean Well FTS: HLG-185H-36B NA
Light portable meter LI-COR LI-250A Device used with light sensor to measure light intensity in PAR
Light sensor LI-COR LI-193SA NA
Plankton net 100 µm mesh size Omega NA To collect larvae and artemia 
Primary pump 6000 L/H Mr. Aqua BP6000 To draw water from tanks into chiller
Propeller-type current meter KENEK GR20 Device used with propeller-type detector to measure flow rate
Propeller-type detector KENEK GR3T-2-20N NA
Stereo microscope Zeiss Stemi 2000-C  To count the number of artemia 
Temperature controller 1000 W Rep Park O-RP-SDP-1 To set and maintain water temperature

References

  1. Hughes, T. P., et al. Coral reefs in the Anthropocene. Nature. 546 (7656), 82-90 (2017).
  2. Special Report on the Ocean and Cryosphere in a changing climate. Intergovernmental Panel on Climate Change Available from: https://www.ipcc.ch/srocc/ (2019)
  3. van Oppen, M. J. H., Lough, J. M. Synthesis: Coral bleaching: patterns, processes, causes and consequences. Coral Bleaching: Patterns, Processes, Causes and Consequences. , 343-348 (2018).
  4. Glynn, P. W. Coral reef bleaching: Ecological perspectives. Coral Reefs. 12 (1), 1-17 (1993).
  5. Hughes, T. P., et al. Spatial and temporal patterns of mass bleaching of corals in the Anthropocene. Science. 359 (6371), 80-83 (2018).
  6. Grottoli, A. G., et al. The cumulative impact of annual coral bleaching can turn some coral species winners into losers. Global Change Biology. 20 (12), 3823-3833 (2014).
  7. Frieler, K., et al. Limiting global warming to 2 °C is unlikely to save most coral reefs. Nature Climate Change. 3 (2), 165-170 (2013).
  8. Montefalcone, M., Morri, C., Bianchi, C. N. Long-term change in bioconstruction potential of Maldivian coral reefs following extreme climate anomalies. Global Change Biology. 24 (12), 5629-5641 (2018).
  9. Traylor-Knowles, N. Heat stress compromises epithelial integrity in the coral, Acropora hyacinthus. PeerJ. 7, e6510 (2019).
  10. Anthony, K. R. N., Hoogenboom, M. O., Maynard, J. A., Grottoli, A. G., Middlebrook, R. Energetics approach to predicting mortality risk from environmental stress: a case study of coral bleaching. Functional Ecology. 23 (3), 539-550 (2009).
  11. Ward, S., Harrison, P., Hoegh-Guldberg, O. Coral bleaching reduces reproduction of scleractinian corals and increases susceptibility to future stress. Proceedings of the 9th Coral Reef Symposium. , 1123-1128 (2002).
  12. Suzuki, G., et al. Enhancing coral larval supply and seedling production using a special bundle collection system "coral larval cradle" for large-scale coral restoration. Restoration Ecology. 28 (5), 1172-1182 (2020).
  13. Schmidt-Roach, S., et al. Novel infrastructure for coral gardening and reefscaping. Frontiers in Marine Science. 10, 1110830 (2023).
  14. Craggs, J., et al. Inducing broadcast coral spawning ex situ: Closed system mesocosm design and husbandry protocol. Ecology and Evolution. 7 (24), 11066-11078 (2017).
  15. Conti-Jerpe, I. E., et al. Trophic strategy and bleaching resistance in reef-building corals. Science Advances. 6 (15), 5443 (2020).
  16. Bellworthy, J., Spangenberg, J. E., Fine, M. Feeding increases the number of offspring but decreases parental investment of Red Sea coral Stylophora pistillata. Ecology and Evolution. 9 (21), 12245-12258 (2019).
  17. Houlbrèque, F., Ferrier-Pagès, C. Heterotrophy in tropical scleractinian corals. Biological Reviews. 84 (1), 1-17 (2009).
  18. Ferrier-Pagès, C., Witting, J., Tambutté, E., Sebens, K. P. Effect of natural zooplankton feeding on the tissue and skeletal growth of the scleractinian coral Stylophora pistillata. Coral Reefs. 22 (3), 229-240 (2003).
  19. Huang, Y. -. L., Mayfield, A. B., Fan, T. -. Y. Effects of feeding on the physiological performance of the stony coral Pocillopora acuta. Scientific Reports. 10 (1), 19988 (2020).
  20. Tagliafico, A., et al. Lipid-enriched diets reduce the impacts of thermal stress in corals. Marine Ecology Progress Series. 573, 129-141 (2017).
  21. Huffmyer, A. S., Johnson, C. J., Epps, A. M., Lemus, J. D., Gates, R. D. Feeding and thermal conditioning enhance coral temperature tolerance in juvenile Pocillopora acuta. Royal Society Open Science. 8 (5), 210644 (2021).
  22. Grottoli, A. G., Rodrigues, L. J., Palardy, J. E. Heterotrophic plasticity and resilience in bleached corals. Nature. 440 (7088), 1186-1189 (2006).
  23. Conlan, J. A., Bay, L. K., Severati, A., Humphrey, C., Francis, D. S. Comparing the capacity of five different dietary treatments to optimise growth and nutritional composition in two scleractinian corals. PLoS One. 13 (11), 0207956 (2018).
  24. Treignier, C., Grover, R., Ferrier-Pagés, C., Tolosa, I. Effect of light and feeding on the fatty acid and sterol composition of zooxanthellae and host tissue isolated from the scleractinian coral Turbinaria reniformis. Limnology and Oceanography. 53 (6), 2702-2710 (2008).
  25. Gori, A., et al. Effects of food availability on the sexual reproduction and biochemical composition of the Mediterranean gorgonian Paramuricea clavata. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. 444, 38-45 (2013).
  26. Séré, M. G., Massé, L. M., Perissinotto, R., Schleyer, M. H. Influence of heterotrophic feeding on the sexual reproduction of Pocillopora verrucosa in aquaria. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. 395 (1), 63-71 (2010).
  27. Rodolfo-Metalpa, R., Peirano, A., Houlbrèque, F., Abbate, M., Ferrier-Pagès, C. Effects of temperature, light and heterotrophy on the growth rate and budding of the temperate coral Cladocora caespitosa. Coral Reefs. 27 (1), 17-25 (2008).
  28. Fox, M. D., et al. Gradients in primary production predict trophic strategies of mixotrophic corals across spatial scales. Current Biology. 28 (21), 3355-3363 (2018).
  29. Shlesinger, T., Loya, Y. Breakdown in spawning synchrony: A silent threat to coral persistence. Science. 365 (6457), 1002-1007 (2019).
  30. McRae, C. J., Huang, W. -. B., Fan, T. -. Y., Côté, I. M. Effects of thermal conditioning on the performance of Pocillopora acuta adult coral colonies and their offspring. Coral Reefs. 40 (5), 1491-1503 (2021).
  31. Fan, T. Y., et al. Plasticity in lunar timing of larval release of two brooding pocilloporid corals in an internal tide-induced upwelling reef. Marine Ecology Progress Series. 569, 117-127 (2017).
  32. Lam, K. -. W., et al. Consistent monthly reproduction and completion of a brooding coral life cycle through ex situ culture. Diversity. 15 (2), 218 (2023).
  33. O’Neil, K. L., Serafin, R. M., Patterson, J. T., Craggs, J. R. K. Repeated ex situ Spawning in two highly disease susceptible corals in the family Meandrinidae. Frontiers in Marine Science. 8, 669976 (2021).
  34. Keshavmurthy, S., et al. Coral Reef resilience in Taiwan: Lessons from long-term ecological research on the Coral Reefs of Kenting national park (Taiwan). Journal of Marine Science and Engineering. 7 (11), 388 (2019).
  35. Smith, H. A., Moya, A., Cantin, N. E., van Oppen, M. J. H., Torda, G. Observations of simultaneous sperm release and larval planulation suggest reproductive assurance in the coral Pocillopora acuta. Frontiers in Marine Science. 6, 362 (2019).
  36. Yeoh, S. -. R., Dai, C. -. F. The production of sexual and asexual larvae within single broods of the scleractinian coral, Pocillopora damicornis. Marine Biology. 157 (2), 351-359 (2010).
  37. Bates, D., Mächler, M., Bolker, B., Walker, S. Fitting linear mixed-effects models using lme4. Journal of Statistical Software. 67 (1), 1-48 (2015).
  38. Kuznetsova, A., Brockhoff, P. B., Christensen, R. H. B. lmerTest package: Tests in linear mixed effects models. Journal of Statistical Software. 82 (13), 1-26 (2017).
  39. Length, R. . Emmeans: Estimated marginal means, aka least-squares means. R Package Version 1.7.4-1. , (2022).
  40. Fox, J., Weisberg, S. . An R Companion to Applied Regression. Third edition. , (2019).
  41. Harell, F. E. . Hmisc: Harrell Miscellaneous_. R package version 4.7-1. , (2022).
  42. Donelson, J. M., Munday, P. L., McCormick, M. I., Pankhurst, N. W., Pankhurst, P. M. Effects of elevated water temperature and food availability on the reproductive performance of a coral reef fish. Marine Ecology Progress Series. 401, 233-243 (2010).
  43. Torres, G., Giménez, L. Temperature modulates compensatory responses to food limitation at metamorphosis in a marine invertebrate. Functional Ecology. 34 (8), 1564-1576 (2020).
  44. Borell, E. M., Bischof, K. Feeding sustains photosynthetic quantum yield of a scleractinian coral during thermal stress. Oecologia. 157 (4), 593-601 (2008).
  45. Ferrier-Pagès, C., Rottier, C., Beraud, E., Levy, O. Experimental assessment of the feeding effort of three scleractinian coral species during a thermal stress: Effect on the rates of photosynthesis. Journal of Experimental Marine Biology and Ecology. 390 (2), 118-124 (2010).
  46. Harriott, V. J. Reproductive seasonality, settlement, and post-settlement mortality of Pocillopora damicornis (Linnaeus), at Lizard Island, Great Barrier Reef. Coral Reefs. 2 (3), 151-157 (1983).
  47. Shefy, D., Shashar, N., Rinkevich, B. The reproduction of the Red Sea coral Stylophora pistillata from Eilat: 4-decade perspective. Marine Biology. 165 (2), 27 (2018).
  48. Rinkevich, B., Loya, Y. Variability in the pattern of sexual reproduction of the coral Stylophora pistillata at Eilat, Red Sea: a long-term study. The Biological Bulletin. 173 (2), 335-344 (1987).
  49. Combosch, D. J., Vollmer, S. V. Mixed asexual and sexual reproduction in the Indo-Pacific reef coral Pocillopora damicornis. Ecology and Evolution. 3 (10), 3379-3387 (2013).
  50. Fan, T. -. Y., Dai, C. -. F. Reproductive plasticity in the reef coral Echinopora lamellosa. Marine Ecology Progress Series. 190, 297-301 (1999).
  51. Crowder, C. M., Liang, W. -. L., Weis, V. M., Fan, T. -. Y. Elevated temperature alters the lunar timing of planulation in the brooding Coral Pocillopora damicornis. PLoS One. 9 (10), e107906 (2014).
  52. Lin, C. -. H., Nozawa, Y. The influence of seawater temperature on the timing of coral spawning. Coral Reefs. 42, 417-426 (2023).
  53. O’Connor, M. I., et al. Temperature control of larval dispersal and the implications for marine ecology, evolution, and conservation. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America. 104 (4), 1266-1271 (2007).
  54. Nozawa, Y. Annual variation in the timing of coral spawning in a high-latitude environment: Influence of temperature. The Biological Bulletin. 222 (3), 192-202 (2012).
  55. Bouwmeester, J., et al. Solar radiation, temperature and the reproductive biology of the coral Lobactis scutaria in a changing climate. Scientific Reports. 13 (1), 246 (2023).
  56. Bouwmeester, J., et al. Latitudinal variation in monthly-scale reproductive synchrony among Acropora coral assemblages in the Indo-Pacific. Coral Reefs. 40 (5), 1411-1418 (2021).
  57. Lai, S., et al. First experimental evidence of corals feeding on seagrass matter. Coral Reefs. 32 (4), 1061-1064 (2013).
  58. Iryani, M. T. M., et al. Cyst viability and stress tolerance upon heat shock protein 70 knockdown in the brine shrimp Artemia franciscana. Cell Stress and Chaperones. 25 (6), 1099-1103 (2020).
  59. Nedimyer, K., Gaines, K., Roach, S. Coral Tree Nursery©: An innovative approach to growing corals in an ocean-based field nursery. Aquaculture, Aquarium, Conservation & Legislation. 4, 442-446 (2011).
  60. Leuzinger, S., Willis, B. L., Anthony, K. R. N. Energy allocation in a reef coral under varying resource availability. Marine Biology. 159 (1), 177-186 (2012).
  61. Chang, T. C., Mayfield, A. B., Fan, T. Y. Culture systems influence the physiological performance of the soft coral Sarcophyton glaucum. Science Reports. 10 (1), 20200 (2020).
  62. Forsman, Z. H., Kimokeo, B. K., Bird, C. E., Hunter, C. L., Toonen, R. J. Coral farming: Effects of light, water motion and artificial foods. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. 92 (4), 721-729 (2012).
  63. Costa, A. P. L., et al. The effect of mixotrophy in the ex situ culture of the soft coral Sarcophyton cf. glaucum. Aquaculture. 452, 151-159 (2016).
  64. Marubini, F., Davies, P. S. Nitrate increases zooxanthellae population density and reduces skeletogenesis in corals. Marine Biology. 127 (2), 319-328 (1996).
  65. Bartlett, T. C. Small scale experimental systems for coral research: Considerations, planning, and recommendations. NOAA Technical Memorandum NOS NCCOS 165 and CRCP 18. , 68 (2013).
  66. Galanto, N., Sartor, C., Moscato, V., Lizama, M., Lemer, S. Effects of elevated temperature on reproduction and larval settlement in Leptastrea purpurea. Coral Reefs. 41 (2), 293-302 (2022).
  67. Nietzer, S., Moeller, M., Kitamura, M., Schupp, P. J. Coral larvae every day: Leptastrea purpurea, a brooding species that could accelerate coral research. Frontiers in Marine Science. 5, 466 (2018).
  68. Edwards, A. J., et al. Direct seeding of mass-cultured coral larvae is not an effective option for reef rehabilitation. Marine Ecology Progress Series. 525, 105-116 (2015).
  69. Boström-Einarsson, L., et al. Coral restoration – A systematic review of current methods, successes, failures and future directions. PLoS One. 15 (1), 0226631 (2020).
  70. Anthony, K. R. N., et al. Interventions to help coral reefs under global change-A complex decision challenge. PLoS One. 15 (8), e0236399 (2020).
check_url/kr/65395?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Lam, K., McRae, C. J., Liu, Z., Zhang, X., Fan, T. Effective Techniques for the Feeding and Ex Situ Culture of a Brooding Scleractinian Coral, Pocillopora acuta. J. Vis. Exp. (196), e65395, doi:10.3791/65395 (2023).

View Video