이 연구는 밀도 구배 원심분리(DGC)를 통해 인간의 대변에서 농축된 박테리아 세포외 소포체(BEV)를 분리 및 정제하는 방법을 설명하고, 형태, 입자 크기 및 농도에서 BEV의 물리적 특성을 식별하고, 임상 및 과학 연구에서 DGC 접근 방식의 잠재적 응용 분야에 대해 논의합니다.
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| Name | Company | Catalog Number | Comments |
|---|---|---|---|
| 1 % (w/v) 글루타르알데히드(탈이온수 내 2.5% 원액으로 제조) | ACMEC | AP1126 | 8.3.3단계에서 TEM을 사용한 BEV에 대한 형태학적 관찰 |
| 1%(w/v) 메틸셀룰로오스(탈이온수 내 원래 분말로 준비) | Sigma-Aldrich | M7027 | 8.3.6단계에서 TEM을 사용한 BEV에 대한 형태학적 관찰 |
| 1.5%(w/v) 우라닐 아세테이트(탈이온수 내 원래 분말로 준비) | Polysciences | 21447-25 | 8.3.5 단계에서 TEM을 사용한 BEV에 대한 형태학적 관찰 |
| 1000 μ L, 200 &뮤; L, 10 &뮤; L 피펫 | KIRGEN | KG1313, KG1212, KG1011 | 용액 |
| 5 % (w / v) 소 혈청 알부민 용액 (TBST 완충액의 원래 분말에서 준비) | Fdbio science | FD0030 | 8.5.6 단계 5 ×에서 차단을 위해 웨스턴 블로팅에 사용 |
| ; 로딩 버퍼 | Fdbio science | FD006 | 8.5.1 단계에서 웨스턴 블로팅 및 Coomassie 브릴리언트 블루 염색에 사용 |
| 75 % (v / v) 알코올 | LIRCON | LIRCON-500 mL | 표면 소독 |
| 96-웰 플레이트 | Rar | A8096 | 흡광도 값을 측정합니다 |
| Anti-Calnexin 항체 | Abcam | ab92573 | Western blotting (Primary 항체) |
| Anti-CD63 항체 | Abcam | ab134045 | Western blotting (1차 항체) |
| Anti-CD9 항체 | Abcam | ab236630 | Western blotting (1차 항체) |
| Anti-Flagellin 항체 | Sino Biological | 40067-MM06 | Western blotting (1차 항체) |
| Anti-Integrin beta 1 항체 | Abcam | ab30394 | Western blotting (Primary Antibody) |
| Anti-LPS antibody | Thermo Fisher | MA1-83152 | Western blotting (Primary Antibody) |
| Anti-LTA antibody | Thermo Fisher | MA1-7402 | 웨스턴 블로팅 (1차 항체) |
| 안티-옴피 항체 | CUSABIO | CSB-PA359226ZA01EOD, https://www.cusabio.com/ | 웨스턴 블로팅 (1차 항체) |
| 안티 신테닌 항체 | Abcam | ab133267 | 웨스턴 블로팅 (1차 항체) |
| Anti-TSG101 항체 | Abcam | ab125011 | 웨스턴 블로팅 (1차 항체) |
| 오토클레이브 | ZEALWAY | GR110DP | 실험에 사용된 공급 및 매체에 대한 살균 |
| Balance | Mettler Toledo | AL104 | 로 샘플이 로드된 튜브의 균형을 맞추십시오 |
| . | Fdbio 과학 | FD2001 | 8.2 단계에서 BEV의 단백질 함량을 측정 |
| 생물 안전 캐비닛 | Haier | HR1200- II B2 | Peform |
| 에서 보인 BEV 격리 및 정제의 개략도 작업 흐름을 대 | |||
| 원심 분리기 5810 R에 대한 절차를 확인하십시오. Rotor F-34-6-38 | Eppendorf | 5805000092; 5804727002, 어댑터: 5804774000 | BEV를 위한 전처리 (단계 3) |
| 화학발광 장치 | BIO-OI | OI600SE-MF | 단계 8.5.12에서 신호 감지를 위한 웨스턴 블로팅에 사용 |
| Cytation 5 | BioTek | F01 | 흡광도(단계 8.1) 및 형광(그림 6) 값을 측정하기 위한 마이크로플레이트 검출기 |
| Dil-labled 저밀도 지단백질 | ACMEC | AC12038 | 간섭 성분의 분포 정의 |
| 전기영동 장비 | Bio-rad | 1658033 | 8.5.2, 8.5.3, 8.5.5 단계에서 단백질 분리 및 전달을 위한 웨스턴 블로팅에 사용됩니다 |
| 향상된 화학발광 키트 HRP | Fdbio 과학 | FD8020 | 단계에서 신호 감지를 위한 웨스턴 블로팅에 사용됩니다 |
| Escherichia coli | American Type Culture Collection | ATCC8739 | BEV를 양성 대조군으로 분리합니다. 프로토콜: LB 분말 25g을 1L 탈이온수에 녹이고 오토클레이브합니다. 800 &mu를 전송합니다. L은 배지에 보존 된 Escherichia coli를 사용합니다. 37 °에서 재배하십시오. C를 인큐베이터 셰이커에 넣습니다. 그 때 3, 000 ×에 분리기; g 4°C에서 20분 동안; C, 12, 000 &회; g 4°C에서 30분 동안; C, 0.22 &mu를 통해 상등액을 필터링합니다. M 막은, 160, 000 ×에 초고속 원심분리를 실행합니다; g 4°C에서 70분 동안 &C. 대장균의 조잡한 BEV로 정의된 펠렛을 1.2mL PBS에 현탁시켰습니다(3, 4단계). |
| Falcon 튜브 50 mL | KIRGEN | KG2811 | BEVs (Step 3) |
| Feto 단백질 염색 버퍼 | Absci | ab.001.50 | Coomassie brilliant blue staining at Step 8.5.4 |
| Filter paper | Biosharp | BS-TFP-070B | Morphological observation for BEVs using TEM at Step 8.3 (Blotting the solution) |
| Formvar/Carbon supported copper grids | Sigma-Aldrich | TEM-FCF200CU50 | 8.3단계에서 TEM을 사용한 BEV에 대한 형태학적 관찰 |
| Hepes 분말 | Meilunbio | MB6078 | 밀도 구배 원심분리를 위한 다양한 농도의 요오딕산올 완충액 준비 |
| HRP AffiniPure Goat Anti-Mouse IgG (H+L) | Fdbio science | FDM007 | Western blotting (Secondary Antibody) |
| HRP AffiniPure Goat Anti-Rabbit IgG (H+L) | Fdbio 과학 | FDR007 | 웨스턴 블로팅 (보조 항체) |
| 인큐베이터 쉐이커 | Qiangwen | DHZ-L | 배양 대장균 |
| 킴와이프스&트레이드; 섬세한 작업 닦음 | Kimtech Science | 34155 | 단계에서 초원심분리기 튜브의 내벽을 닦습니다. 4.15 |
| LB 수프 | Hopebio | HB0128 | 배양 대장균 |
| 저온 냉동고 (-80 ° C) | Haier | DW-86L338J | 샘플 저장 |
| 메탄올 | Alalddin | M116118 | 단계에서 PVDF 멤브레인을 활성화하기 위해 웨스턴 블로팅에 사용 |
| 마이크로 튜브 1.5mL | KIRGEN | KG2211 | 밀도 구배 원심분리 후 분획 회수 |
| 마이크로 튜브 2mL | KIRGEN | KG2911 | 밀도 구배 원심분리 후 분획 회수 |
| Micro 튜브 5 mL | BBI | F610888-0001 | 밀도 구배 원심분리 후 분획 회수 |
| 마이크로플레이트 리더 | 써모 피셔 | Multiskan MK3 | 8.2 단계에서 BEV의 단백질 함량 측정 |
| Millipore 필터 0.22 μ m | Merck 밀리포어 | SLGP033RB | 여과 살균; 재질 : 폴리 에테르 설폰, PES |
| NaCl | GHTECH | 1.01307.040 | 밀도 구배 원심 분리 용액 |
| NaOH | GHTECH | 1.01394.068 | 밀도 구배 원심 분리 용액 (pH 조정) |
| Optima ™ XPN-100 | Beckman Coulter | A94469 | 4, 7단계에서 BEV 분리를 위한 초원심분리 |
| OptiPrep™ | Serumwerk Bernburg AG | 1893 | 밀도 구배 원심 분리 원액 |
| Orbital Shaker | Youning | CS-100 | 2 단계에서 대변 용해 |
| 인산염 완충 식염수 | Procell | PB180327 | 2 단계에서 대변 용해 |
| 피펫터 | Eppendorf | 3120000267, 3120000259 | 용액 이송 |
| 플라스틱 파스퇴르 피펫 | ABCbio | ABC217003-4 | 단계에서 전처리 시 상등액 제거 3.4 |
| 폴리비닐리덴 디플루오라이드 (PVDF) 막 | Millipore | ISEQ00010, IPVH00010 | 8.5.5 단계에서 단백질 전달을 위한 웨스턴 블로팅에 사용 |
| 사전 제작된 폴리아크릴아미드 겔, 4– 20% 15 Wells | ACE | F15420Gel | 8.5.2, 8.5.3단계에서 단백질 분리를 위한 웨스턴 블로팅에 사용 |
| 차 항체 희석제 | Fdbio science | FD0040 | 8.5.8단계에서 웨스턴 블로팅에 사용 |
| 단백질 사다리 | Fdbio science | FD0672 | 8.5단계에서 웨스턴 블로팅 및 Coomassie brilliant blue stain에 사용 |
| 빠른 단백질 블로팅 용액 | UBIO | UW0500 | 8.5.5단계에서 단백질 전달을 위한 웨스턴 블로팅에 사용됨 |
| Rotor SW 32 Ti Swinging-Bucket Rotor | Beckman Coulter | 369650 | 초원심분리는 Step 4, 7 |
| Syringe 20 mL, 50 mL에서 | Jetway | ZSQ-20ML, YCXWJZSQ-50 mL | 전송 버퍼는 TBS 분말을 사전 처리하면서 상층액을 제거합니다 |
| Fdbio science | FD1021 | Hitachi에서 웨스턴 블로팅에 사용됩니다 | |
| . | H-7650 | 8.3단계에서 BEV에 대한 형태학적 관찰 | |
| Tween-20 | Fdbio 과학 | FD0020 | 8.5단계에서 웨스턴 블로팅에 사용 |
| 초원심분리기 튜브 | Beckman | 326823, 355642 | 4, 7단계에서 BEV 격리를 위한 초원심분리 |
| 울트라클린 벤치 | AIRTECH | SW-CJ-2FD | 에 대한 절차 수행 |
| CU600 | 8.2.5단계에서 BEV의 단백질 함량 측정에 사용됨 | ||
| ZetaView | Particle Metrix | S/N 21-734, 소프트웨어 ZetaView(버전 8.05.14 SP7) | 8.4단계에서 BEV의 입자 크기 및 농도를 측정하기 위한 나노 입자 추적 분석(NTA) |
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