Summary

पूर्व वीवो मिर्गी के ड्रोसोफिला मॉडल के लिए कैल्शियम इमेजिंग

Published: October 13, 2023
doi:

Summary

यहां, हम एपिलेप्टिफॉर्म गतिविधियों की निगरानी के लिए GCaMP6-व्यक्त वयस्क ड्रोसोफिला में पूर्व विवो कैल्शियम इमेजिंग के लिए एक प्रोटोकॉल प्रस्तुत करते हैं। प्रोटोकॉल पूर्व विवो कैल्शियम इमेजिंग के माध्यम से वयस्क ड्रोसोफिला में ictal घटनाओं की जांच के लिए एक मूल्यवान उपकरण प्रदान करता है, सेलुलर स्तर पर मिर्गी के संभावित तंत्र की खोज के लिए अनुमति देता है।

Abstract

मिर्गी एक न्यूरोलॉजिकल विकार है जो आवर्तक दौरे की विशेषता है, आंशिक रूप से आनुवंशिक उत्पत्ति के साथ सहसंबद्ध है, जो दुनिया भर में 70 मिलियन से अधिक व्यक्तियों को प्रभावित करता है। मिर्गी के नैदानिक महत्व के बावजूद, केंद्रीय तंत्रिका तंत्र में तंत्रिका गतिविधि का कार्यात्मक विश्लेषण अभी भी विकसित किया जाना है। इमेजिंग प्रौद्योगिकी में हालिया प्रगति, आनुवंशिक रूप से एन्कोडेड कैल्शियम संकेतकों, जैसे कि GCaMP6 की स्थिर अभिव्यक्ति के संयोजन में, मस्तिष्क-व्यापी और एकल-कोशिका रिज़ॉल्यूशन स्तरों दोनों पर मिर्गी के अध्ययन में क्रांति ला दी है। ड्रोसोफिला मेलानोगास्टर अपने परिष्कृत आणविक आनुवंशिकी और व्यवहार परख के कारण मिर्गी के अंतर्निहित आणविक और सेलुलर तंत्र की जांच के लिए एक उपकरण के रूप में उभरा है। इस अध्ययन में, हम मिर्गी गतिविधियों की निगरानी के लिए GCaMP6-व्यक्त वयस्क ड्रोसोफिला में पूर्व विवो कैल्शियम इमेजिंग के लिए एक उपन्यास और कुशल प्रोटोकॉल प्रस्तुत करते हैं। पूरे मस्तिष्क को सीएसी, एक प्रसिद्ध मिर्गी जीन से तैयार किया जाता है, जो बैंग-संवेदनशील जब्ती-जैसे व्यवहार परख के अनुवर्ती के रूप में तंत्रिका गतिविधि की पहचान करने के लिए एक कॉन्फोकल माइक्रोस्कोप के साथ कैल्शियम इमेजिंग के लिए नॉकडाउन मक्खियों को मारता है। सीएसी नॉकडाउन मक्खियों ने जब्ती जैसे व्यवहार और असामान्य कैल्शियम गतिविधियों की उच्च दर दिखाई, जिसमें जंगली प्रकार की मक्खियों की तुलना में अधिक बड़े स्पाइक्स और कम छोटे स्पाइक्स शामिल हैं। कैल्शियम गतिविधियों को जब्ती जैसे व्यवहार से सहसंबद्ध किया गया था। यह पद्धति मिर्गी के लिए रोगजनक जीन की जांच करने और सेलुलर स्तर पर मिर्गी के संभावित तंत्र की खोज करने में एक कुशल पद्धति के रूप में कार्य करती है।

Introduction

मिर्गी, एक जटिल पुरानी न्यूरोलॉजिकल विकार जो सहज और अकारण बरामदगी और असामान्य न्यूरोनल नेटवर्क गतिविधि की पुनरावृत्ति की विशेषता है, ने दुनिया भर में 70 मिलियन से अधिक व्यक्तियों को प्रभावित किया है, जिससे यह सबसे आम न्यूरोलॉजिकलबीमारियों में से एक है 1 और परिवारों और समाज के भारी बोझ के लिए अग्रणी। मिर्गी के प्रभाव को ध्यान में रखते हुए, दौरे के एटियलजि की पहचान करने के लिए कई अध्ययन किए गए हैं, जिनमें से आनुवंशिकी को कई प्रकार के मिर्गी या मिर्गी सिंड्रोम2 के प्राथमिक कारण के रूप में अनुमोदित किया गया है। पिछले दशकों से, जीनोमिक प्रौद्योगिकियों में प्रगति ने उपन्यास मिर्गी से जुड़े जीन, जो आयन चैनल और गैर-आयन चैनल जीन 3,4 सहित जब्ती घटना में महत्वपूर्ण भूमिका निभाते हैं, की खोज में तेजी से वृद्धि हुई है। हालांकि, जीन और मिर्गी के फेनोटाइप के बीच अंतर्निहित तंत्र और कार्यात्मक विश्लेषण अपूर्ण रूप से समझा जाता है। मिर्गी से जुड़े जीन और तंत्र की पहचान कुशलतापूर्वक 5,6 रोगियों के प्रबंधन के लिए संभावना प्रदान करता है.

साइटोसोलिक कैल्शियम सिग्नल न्यूरोनल गतिविधि और सिनैप्टिक ट्रांसमिशन में महत्वपूर्ण तत्व हैं। मस्तिष्क स्लाइस7 सहित कैल्शियम इमेजिंग, विवो 8,9, और ईएक्स विवो10 में, 1970 के दशक12,13 के बाद से न्यूरोनल उत्तेजना के लिए एक मार्कर के रूप में न्यूरोनल गतिविधि11 की निगरानी के लिए उपयोग किया गया है। इमेजिंग प्रौद्योगिकी में हाल की प्रगति, आनुवंशिक रूप से एन्कोडेड कैल्शियम संकेतक (जीईसीआई) के साथ संयोजन में, जैसे कि जीसीएएमपी 6, ने मस्तिष्क-व्यापी और एकल-कोशिका रिज़ॉल्यूशन स्तर 14,15,16 दोनों पर मिर्गी के अध्ययन में क्रांति ला दी है, जिसमें उच्च स्तर की स्थानिक परिशुद्धता है। कैल्शियम एकाग्रता और यात्रियों में परिवर्तन कार्रवाई क्षमता और synaptic संचरण में मनाया गया, क्रमशः14, intracellular कैल्शियम के स्तर के परिवर्तन का संकेत न्यूरॉन्स 17,18 की विद्युत excitability के साथ एक सख्त सहसंबंध प्रदर्शित करता है. कैल्शियम इमेजिंग भी एक विकासात्मक जब्ती मॉडल9 के रूप में लागू किया गया है और एंटीकोनवल्सी यौगिकों19 स्क्रीनिंग के लिए ड्रोसोफिला में प्रदर्शन किया गया है.

ड्रोसोफिला मेलानोगास्टर वैज्ञानिक अनुसंधान में एक शक्तिशाली मॉडल जीव के रूप में उभर रहा है, जैसे कि मिर्गी, इसके परिष्कृत आणविक आनुवंशिकी और व्यवहार परख20,21,22 के लिए। इसके अलावा, ड्रोसोफिला में उन्नत आनुवंशिक उपकरणों ने आनुवंशिक रूप से एन्कोडेड कैल्शियम संकेतक GCaMP6 की अभिव्यक्ति में योगदान दिया है। उदाहरण के लिए, Gal4 और UAS- आधारित बाइनरी ट्रांसक्रिप्शनल सिस्टम GCaMP6 की विशिष्ट अभिव्यक्ति को स्थानिक और अस्थायी रूप से नियंत्रित तरीके से सक्षम करते हैं। ड्रोसोफिला एक छोटे से जीव है, विवो कैल्शियम इमेजिंग में कुशल आपरेशन कौशल की आवश्यकता होती है एक शल्य चिकित्सा हस्तक्षेप, जिसमें मस्तिष्क के पृष्ठीय का केवल एक छोटा सा हिस्सा14,23 एक छोटी सी खिड़की के माध्यम से उजागर किया गया था प्रदर्शन करने के लिए. इसी समय, ड्रोसोफिला के बरकरार मस्तिष्क में पूर्व विवो कैल्शियम इमेजिंग का उपयोग पूरे मस्तिष्क के ब्याज के क्षेत्रों (आरओआई) की निगरानी के लिए किया जा सकता है।

इस अध्ययन में, हम मिर्गी गतिविधियों की निगरानी के लिए GCaMP6-व्यक्त वयस्क ड्रोसोफिला में पूर्व विवो कैल्शियम इमेजिंग प्रस्तुत करते हैं। CACNA1A एक प्रसिद्ध मिर्गी जीन है, सीएसी कैव 2 चैनल से संबंधित है, जो CACNA1A के लिए एक होमोलॉग है। हमने cac knockdown मक्खियों टब-Gal4>GCaMP6m/cac-RNAi के दिमाग को विच्छेदित करके और xyt स्कैनिंग मोड के साथ एक कॉन्फोकल माइक्रोस्कोप का उपयोग करके उन्हें इमेजिंग करके शुरू किया। हमने तब संकेतकों की गणना करके आरओआई के कैल्शियम संकेतों में परिवर्तन का विश्लेषण किया जो सहज जब्ती जैसी घटनाओं की मात्रा निर्धारित करते हैं, जैसे कि % ΔF / F मान और GCaMP6 प्रतिदीप्ति की कैल्शियम घटनाएं। इसके अतिरिक्त, हमने कैल्शियम इमेजिंग के परिणामों को मान्य करने के लिए सीएसी-नॉकडाउन मक्खियों पर जब्ती व्यवहार परीक्षणों को प्रेरित करने के लिए भंवर मशीन द्वारा यांत्रिक उत्तेजना का प्रदर्शन किया। कुल मिलाकर, यह प्रोटोकॉल पूर्व विवो कैल्शियम इमेजिंग के माध्यम से वयस्क ड्रोसोफिला में ictal घटनाओं की जांच के लिए एक मूल्यवान उपकरण प्रदान करता है, जो सेलुलर स्तरों पर मिर्गी के संभावित तंत्र की खोज के लिए अनुमति देता है।

Protocol

1. बैंग-संवेदनशील परख के लिए प्रोटोकॉल Gal4/UAS सिस्टम21 के माध्यम से UAS-cac-RNAi लाइन के साथ टब-Gal4 ड्राइवर लाइन को पार करके प्रयोगात्मक मक्खियों की स्थापना करें। टब-Gal4 लाइन की कुंवारी मक?…

Representative Results

इस प्रोटोकॉल का उपयोग करते हुए, हमने पाया कि सीएसी नॉकडाउन मक्खियों ने डब्ल्यूटी मक्खियों (17.00 ± 2.99 [एन = 6] बनाम 4.50 ± 2.03 [एन = 6]; पी = 0.0061; छात्र का टी-परीक्षण, चित्र 1 ए)। अधिकांश टब-गैल4>यूएए?…

Discussion

कैल्शियम आयन एक महत्वपूर्ण दूसरे संदेशवाहक के रूप में कार्य करता है, जो रासायनिक और विद्युत गड़बड़ी दोनों के लिए शारीरिक और पैथोफिजियोलॉजिकल प्रतिक्रियाओं की एक श्रृंखला में महत्वपूर्ण भूमिका निभा…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

इस काम को ग्वांगडोंग बेसिक एंड एप्लाइड बेसिक रिसर्च फाउंडेशन (अनुदान संख्या 2022A1515111123 से जिंग-दा किआओ) द्वारा समर्थित किया गया था और जीएमयू (जिंग-दा किआओ) में वैज्ञानिक अनुसंधान को बढ़ाने की योजना है। इस काम को गुआंगज़ौ मेडिकल यूनिवर्सिटी स्टूडेंट इनोवेशन एबिलिटी एनिसमेंट प्लान (फंडिंग नंबर 02-408-2304-02038XM) द्वारा भी समर्थित किया गया था।

Materials

Brushes Panera AAhc022-2 for handling flies
Calcium chloride (CaCl2) Sigma-Aldrich C4901
Confocal microscope SP8; Zeiss, Jena, Germany. N/A for calcium imaging
CO2 anesthesia machine N/A N/A for Anesthetizing the flies.
C-sharp holder N/A N/A handmade, for mounting the brain
Culture vials Biologix 51-0500 2.5 cm diameter, 9.5 cm height
Fiji software National Institutes of Health, Bethesda, MD, USA version: 2.14.0 for analysis
Fly morgue N/A N/A handmade, for handling flies
Fly stocks cac-RNAi 27244 from Bloomington Drosophila Stock Center
Fly stocks GCaMP6m 42750 from Bloomington Drosophila Stock Center
Fly stocks tub-Gal4 N/A from the Sion-Frech Hoffmann Institute, Guangzhou Medical University
Glucose Sigma-Aldrich G8270
High-resolution camera N/A N/A for recording the seizure-like behavior assay
L-lysine Sigma-Aldrich L5626
Magnesium chloride solution (MgCl2) Sigma-Aldrich M1028
Papain suspension Worthington Biochemical LS003126
Petri dishes Sigma-Aldrich SLW1480/02D for dissection
Pipette Thermo Scientific 4640010, 4640030, 4640050, 4640060 for transporting a measured volume of liquid and diseccected brain
Potassium chloride (KCl) Sigma-Aldrich P4504
Recording dish Thermo Scientific 150682- Glass Based Dish for holding the brain and calcium imaging
Sodium bicarbonate (NaHCO3) Sigma-Aldrich S5761
Sodium chloride (NaCl) Sigma-Aldrich S5886
Sodium hydroxide (NaOH) Fisher Scientific S25550
Sodium phosphate monobasic (NaH2PO4) Sigma-Aldrich S8282
Stereo-binocular microscope SHANG GUANG XTZ-D for handling flies and dissection
Syringe needles pythonbio HCL0693 for dissection
Tripod WEIFENG 45634732523 for recording the seizure-like behavior assay
Vortex mixer Lab dancer, IKA, Germany/Sigma-Aldrich Z653438 for performing the seizure-like behavior assay
Whiteboard N/A N/A handmade, foam pad or paper for background

References

  1. Thijs, R. D., Surges, R., O’brien, T. J., Sander, J. W. Epilepsy in adults. Lancet. 393 (10172), 689-701 (2019).
  2. Ellis, C. A., Petrovski, S., Berkovic, S. F. Epilepsy genetics: Clinical impacts and biological insights. Lancet Neurol. 19 (1), 93-100 (2020).
  3. Wang, J., et al. Epilepsy-associated genes. Seizure. 44, 11-20 (2017).
  4. Oliver, K. L., et al. Genes4epilepsy: An epilepsy gene resource. Epilepsia. 64 (5), 1368-1375 (2023).
  5. Rogawski, M. A., Loscher, W., Rho, J. M. Mechanisms of action of antiseizure drugs and the ketogenic diet. Cold Spring Harb Perspect Med. 6 (5), 022780 (2016).
  6. Ademuwagun, I. A., Rotimi, S. O., Syrbe, S., Ajamma, Y. U., Adebiyi, E. Voltage gated sodium channel genes in epilepsy: Mutations, functional studies, and treatment dimensions. Front Neurol. 12, 600050 (2021).
  7. Leweke, F. M., Louvel, J., Rausche, G., Heinemann, U. Effects of pentetrazol on neuronal activity and on extracellular calcium concentration in rat hippocampal slices. Epilepsy Res. 6 (3), 187-198 (1990).
  8. Yang, W., Yuste, R. In vivo imaging of neural activity. Nat Methods. 14 (4), 349-359 (2017).
  9. Hewapathirane, D. S., Dunfield, D., Yen, W., Chen, S., Haas, K. In vivo imaging of seizure activity in a novel developmental seizure model. Exp Neurol. 211 (2), 480-488 (2008).
  10. Ishimoto, H., Sano, H. Ex vivo calcium imaging for visualizing brain responses to endocrine signaling in drosophila. J Vis Exp. 136, 57701 (2018).
  11. Chen, T. W., et al. Ultrasensitive fluorescent proteins for imaging neuronal activity. Nature. 499 (7458), 295-300 (2013).
  12. Moisescu, D. G., Ashley, C. C., Campbell, A. K. Comparative aspects of the calcium-sensitive photoproteins aequorin and obelin. Biochim Biophys Acta. 396 (1), 133-140 (1975).
  13. Blinks, J. R., Prendergast, F. G., Allen, D. G. Photoproteins as biological calcium indicators. Pharmacol Rev. 28 (1), 1-93 (1976).
  14. Tian, L., et al. Imaging neural activity in worms, flies and mice with improved gcamp calcium indicators. Nat Methods. 6 (12), 875-881 (2009).
  15. Svoboda, K., Helmchen, F., Denk, W., Tank, D. W. Spread of dendritic excitation in layer 2/3 pyramidal neurons in rat barrel cortex in vivo. Nat Neurosci. 2 (1), 65-73 (1999).
  16. Rochefort, N. L., Jia, H., Konnerth, A. Calcium imaging in the living brain: Prospects for molecular medicine. Trends Mol Med. 14 (9), 389-399 (2008).
  17. Russell, J. T. Imaging calcium signals in vivo: A powerful tool in physiology and pharmacology. Br J Pharmacol. 163 (8), 1605-1625 (2011).
  18. Neher, E., Sakaba, T. Multiple roles of calcium ions in the regulation of neurotransmitter release. Neuron. 59 (6), 861-872 (2008).
  19. Streit, A. K., Fan, Y. N., Masullo, L., Baines, R. A. Calcium imaging of neuronal activity in drosophila can identify anticonvulsive compounds. PLoS One. 11 (2), 0148461 (2016).
  20. Parker, L., Howlett, I. C., Rusan, Z. M., Tanouye, M. A. Seizure and epilepsy: Studies of seizure disorders in drosophila. Int Rev Neurobiol. 99, 1-21 (2011).
  21. Del Valle Rodriguez, A., Didiano, D., Desplan, C. Power tools for gene expression and clonal analysis in drosophila. Nat Methods. 9 (1), 47-55 (2011).
  22. Liu, C. Q., et al. Efficient strategies based on behavioral and electrophysiological methods for epilepsy-related gene screening in the drosophila model. Front Mol Neurosci. 16, 1121877 (2023).
  23. Wang, Y., et al. Genetic manipulation of the odor-evoked distributed neural activity in the drosophila mushroom body. Neuron. 29 (1), 267-276 (2001).
  24. Wang, J., et al. Unc13b variants associated with partial epilepsy with favourable outcome. Brain. 144 (10), 3050-3060 (2021).
  25. Ganetzky, B., Wu, C. F. Indirect suppression involving behavioral mutants with altered nerve excitability in drosophila melanogaster. 유전학. 100 (4), 597-614 (1982).
  26. Roemmich, A. J., Schutte, S. S., O’dowd, D. K. Ex vivo whole-cell recordings in adult drosophila brain. Bio Protoc. 8 (14), 2467 (2018).
  27. Gu, H., O’dowd, D. K. Whole cell recordings from brain of adult drosophila. J Vis Exp. (6), 248 (2007).
  28. Qiao, J., Yang, S., Geng, H., Yung, W. H., Ke, Y. Input-timing-dependent plasticity at incoming synapses of the mushroom body facilitates olfactory learning in drosophila. Curr Biol. 32 (22), 4869-4880 (2022).
  29. Liu, C. -. Q., Lin, Y. -. M., Zhang, X. -. X., Peng, R. -. C., Qiao, J. -. D. Protective effect of CACNA1A deficiency against seizure in the CACNA1A-CELSR2 digenic knockdown flies. Research Square. , (2023).
  30. Uchitel, O. D., Inchauspe, C. G., Urbano, F. J. D. i., Guilmi, M. N. Cav2.1 voltage activated calcium channels and synaptic transmission in familial hemiplegic migraine pathogenesis. J Physiol Paris. 106 (1-2), 12-22 (2012).
  31. Le Roux, M., et al. Cacna1a-associated epilepsy: Electroclinical findings and treatment response on seizures in 18 patients. Eur J Paediatr Neurol. 33, 75-85 (2021).
  32. Alehabib, E., et al. Clinical and molecular spectrum of p/q type calcium channel cav2.1 in epileptic patients. Orphanet J Rare Dis. 16 (1), 461 (2021).
  33. Li, X. L., et al. Cacna1a mutations associated with epilepsies and their molecular sub-regional implications. Front Mol Neurosci. 15, 860662 (2022).
  34. Indelicato, E., Boesch, S. From genotype to phenotype: Expanding the clinical spectrum of cacna1a variants in the era of next generation sequencing. Front Neurol. 12, 639994 (2021).
  35. Saras, A., Tanouye, M. A. Mutations of the calcium channel gene cacophony suppress seizures in drosophila. Plos Genetics. 12 (1), e1005784 (2016).
  36. Cozzolino, O., et al. Evolution of epileptiform activity in zebrafish by statistical-based integration of electrophysiology and 2-photon ca2+ imaging. Cells. 9 (3), 769 (2020).
  37. Mituzaite, J., Petersen, R., Claridge-Chang, A., Baines, R. A. Characterization of seizure induction methods in drosophila. eNeuro. 8 (4), (2021).
  38. Miller, D. E., Cook, K. R., Hawley, R. S. The joy of balancers. Plos Genetics. 15 (11), e1008421 (2019).
check_url/kr/65825?article_type=t

Play Video

Cite This Article
He, M., Liu, C., Zhang, X., Lin, Y., Mao, Y., Qiao, J. Ex Vivo Calcium Imaging for Drosophila Model of Epilepsy. J. Vis. Exp. (200), e65825, doi:10.3791/65825 (2023).

View Video