Summary

Avaliação da Microarquitetura Óssea Trabecular em Modelo de Osteoporose em Camundongos

Published: September 08, 2023
doi:

Summary

Este protocolo apresenta um método econômico e eficiente para avaliação quantitativa da microarquitetura óssea em um modelo de osteoporose em camundongos, combinando técnicas de coloração pela hematoxilina-eosina (HE) e microtomografia computadorizada (Micro-CT).

Abstract

A microestrutura óssea refere-se à disposição e qualidade do tecido ósseo em nível microscópico. A compreensão da microestrutura óssea do esqueleto é crucial para obter informações sobre a fisiopatologia da osteoporose e melhorar seu tratamento. No entanto, o manuseio de amostras ósseas pode ser complexo devido às suas propriedades duras e densas. Em segundo lugar, softwares especializados dificultam o processamento e a análise de imagens. Neste protocolo, apresentamos uma solução econômica e de fácil utilização para análise da microestrutura óssea trabecular. Etapas detalhadas e precauções são fornecidas. A micro-TC é uma técnica de imagem tridimensional (3D) não destrutiva que fornece imagens de alta resolução da estrutura óssea trabecular. Permite a avaliação objetiva e quantitativa da qualidade óssea, razão pela qual é amplamente considerado como o método padrão-ouro para avaliação da qualidade óssea. No entanto, a histomorfometria permanece indispensável, pois oferece parâmetros cruciais em nível celular, preenchendo a lacuna entre avaliações bidimensionais (2D) e 3D de espécimes ósseos. Quanto às técnicas histológicas, optou-se pela descalcificação do tecido ósseo e, em seguida, realizar a tradicional inclusão em parafina. Em resumo, a combinação desses dois métodos pode fornecer informações mais abrangentes e precisas sobre a microestrutura óssea.

Introduction

A osteoporose é uma doença óssea metabólica prevalente, especialmente entre os idosos, e está associada a um risco aumentado de fraturas por fragilidade. À medida que a osteoporose se torna mais comum na China1, haverá uma demanda crescente para o estudo das estruturas ósseas de pequenos animais 2,3. Os métodos anteriores de mensuração da perda óssea baseiam-se nos resultados da absorciometria bidimensional de raios-X de dupla energia. No entanto, isso não capta as alterações na microestrutura arquitetural do osso trabecular, que é um fator-chave para a resistênciaesquelética4. A microestrutura do osso afeta sua resistência, rigidez e resistência à fratura. Comparando-se a microarquitetura óssea nos estados normal e patológico, é possível identificar alterações na morfologia, estrutura e função do tecido ósseo causadas pela osteoporose. Essas informações contribuem para o entendimento do desenvolvimento da osteoporose e sua associação com outras doenças.

A microtomografia computadorizada (Micro-CT) tornou-se recentemente uma técnica popular para avaliação da morfologia óssea, onde pode fornecer dados precisos e abrangentes sobre parâmetros de estrutura e densidade óssea, como volume, fração, espessura e separaçãoóssea5,6. Ao mesmo tempo, os resultados do Micro-CT podem ser afetados pelo software de análise7. Diferentes métodos de aquisição, avaliação e emissão de laudos de imagens são utilizados por vários sistemas comerciais de Micro-CT. Essa inconsistência dificulta a comparação e interpretação dos resultados relatados por diferentes estudos5. Além disso, atualmente não pode substituir a histomorfometria óssea no fornecimento de informações aos pesquisadores sobre parâmetros em nível celular no sistema esquelético8. Enquanto isso, as técnicas histológicas permitem a observação direta e a mensuração da morfologia microscópica do osso. A coloração pela hematoxilina e eosina (HE) é uma técnica de coloração comum usada em histologia para visualizar a estrutura geral de células e tecidos. É utilizado para identificar a presença de tecido ósseo e sua microarquitetura.

Este artigo utiliza a Micro-CT combinada com a técnica de fatiamento tecidual (coloração Hematoxilina-Eosina [HE]) para coletar imagens do tecido ósseo e realizar análise quantitativa do osso trabecular para avaliar as alterações da microestrutura óssea em um modelo de camundongo com osteoporose.

Protocol

O protocolo animal foi aprovado pelo Comitê de Ética Animal da Universidade de Medicina Tradicional Chinesa de Chengdu (Número de registro: 2020-34). Camundongos C57BL/6J fêmeas (12 semanas de idade, n = 14) foram divididos em dois grupos aleatoriamente, um grupo sham-operado (grupo Sham, n = 7) e um grupo modelo (grupo OVX, n = 7). Os animais foram adquiridos de um fornecedor comercial (ver Tabela de Materiais). Todos os camundongos foram mantidos em gaiolas individuais a 22-26 °C com 45%-55% de um…

Representative Results

Análise por micro-TCMedimos os parâmetros microarquiteturais trabeculares em camundongos de ambos os grupos e relatamos seus valores médios e DPs na Tabela 1. A distribuição de alguns parâmetros (isto é, a relação entre o volume ósseo e o volume total de tecido, espessura trabecular, separação trabecular) dentro de cada grupo está ilustrada na Figura 3. Estes resul…

Discussion

A osteoporose pode levar a fraturas frequentes, que são dispendiosas, podem causar dor, incapacidade ou até mesmo a morte, e afetar seriamente a qualidade de vida dos pacientes20. Ao longo dos anos, o modelo de ooforectomia tem sido reconhecido como um dos métodos padrão para o estudo da osteoporose21. O modelo animal pré-clínico mais comum para osteoporose é o rato ovariectomizado (OVX). Apesar disso, a maioria das pesquisas sobre os mecanismos das desordens ósseas…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Este trabalho foi apoiado pela Administração Provincial de Sichuan de Medicina Tradicional Chinesa (2021YJ0175) e pelo Projeto de Inovação de Pesquisa de Pós-Graduação da Escola de Medicina Clínica (LCYJSKT2023-11), Universidade de Medicina Tradicional Chinesa de Chengdu.

Materials

4% Paraformaldehyde Biosharp BL539A
Adobe Photoshop Adobe Inc.
Ammonia Solution Chengdu Kolon Chemical Co., Ltd 2021070101
Analyze 12.0 AnalyzeDirect, Inc
Anatomical Forceps Jinzhong surgical instrument Co., Ltd J3C030
Anhydrous Ethanol Chengdu Kolon Chemical Co., Ltd 2022070501
Automatic Dyeing Machine Thermo scientific Varistain™ Gemini ES
Bone Microarchitecture Analysis Add-on AnalyzeDirect, Inc
C57BL/6J mice SPF (Beijing) Biotechnology Co., Ltd.
Carrier Slides Nantong Mei Wei De Experimental Equipment Co., Ltd 220518001
Coverslips Nantong Mei Wei De Experimental Equipment Co. 220518001
Decalcification Solution Wuhan Xavier Biotechnology Co., Ltd CR2203047
Delicate Scissors Jinzhong surgical instrument Co., Ltd ZJA010
Embedding box marking machine Thermo scientific  PrintMate AS
Embedding Machine Wuhan Junjie Electronics Co., Ltd JB-P5
Fiji: ImageJ National Institutes of Health, USA
Film Sealer Thermo scientific Autostainer 360
Freezing Table Wuhan Junjie Electronics Co., Ltd JB-L5
H&E Staining Kit Leagene DH0020
Hydrochloric Acid Solution Sichuan Xilong Science Co., Ltd 210608
ImageJ2 Plugin BoneJ 7.0.16
Medical Gauze Shandong Ang Yang Medical Technology Co.
Mersilk 3-0 Silk Braided Non-Absorbable Sutures Ethicon, Inc. SA84G
Needle Holder Jinzhong surgical instrument Co., Ltd J32010
Neutral Balsam Sinopharm Group Chemical Reagent Co., Ltd 10004160
Oven Shanghai Yiheng Scientific Instruments Co., Ltd DHG-9240A
PANNORAMIC Digital Slide Scanners 3DHISTECH Ltd.  PANNORAMIC DESK/MIDI/250/1000
PBS buffer Biosharp G4202
Povidone-iodine solution 5% Chengdu Yongan Pharmaceutical Co., Ltd
Quantum GX2 microCT Imaging System PerkinElmer, Inc.
Rotary Microtome Thermo scientific HM325
Scalpel Quanzhou Excellence Medical Co., Ltd 20170022
Scan & Browse Software 3DHISTECH Ltd.  CaseViewer2.4
Single-Use Sterile Rubber Surgical Gloves Guangdong Huitong Latex Products Group Co., Ltd 22B141EO
Sodium Chloride Solution 0.9% Sichuan Kelun Pharmaceutical Co., Ltd
Sterile Hypodermic Syringes for Single Use Shandong Weigao Group Medical Polymer Products  Co., Ltd
Sterile Medical Suture Needles Shanghai Pudong Jinhuan Medical Products Co., Ltd.  PW8068
Tissue Processor Thermo scientific STP420 ES
Tissue Spreading and Baking Machine Wuhan Junjie Electronics Co., Ltd JK-6
Tribromoethanol Nanjing Aibei Biotechnology Co., Ltd M2920
Wax Trimmer Wuhan Junjie Electronics Co., Ltd JXL-818
Xylene Chengdu Kolon Chemical Co., Ltd 2022051901

References

  1. Wang, J., et al. The prevalence of osteoporosis in China, a community based cohort study of osteoporosis. Frontiers in Public Health. 11, 1084005 (2023).
  2. Stein, M., et al. Why animal experiments are still indispensable in bone research: A statement by the European Calcified Tissue Society. Journal of Bone and Mineral Research. 38 (8), 1045-1061 (2023).
  3. Kerschan-Schindl, K., Papageorgiou, M., Föger-Samwald, U., Butylina, M., Weber, M., Pietschmann, P. Assessment of bone microstructure by micro CT in C57BL/6J mice for sex-specific differentiation. International Journal of Molecular Sciences. 23 (23), 14585 (2022).
  4. Fonseca, H., Moreira-Gonçalves, D., Coriolano, H. J. A., Duarte, J. A. Bone quality: the determinants of bone strength and fragility. Sports Medicine. 44, 37-53 (2014).
  5. Bouxsein, M. L., Boyd, S. K., Christiansen, B. A., Guldberg, R. E., Jepsen, K. J., Müller, R. Guidelines for assessment of bone microstructure in rodents using micro-computed tomography. Journal of Bone and Mineral Research. 25 (7), 1468-1486 (2010).
  6. Akhter, M. P., Recker, R. R. High resolution imaging in bone tissue research-review. Bone. 143, 115620 (2021).
  7. Mys, K., et al. Quantification of 3D microstructural parameters of trabecular bone is affected by the analysis software. Bone. 142, 115653 (2021).
  8. Chavassieux, P., Chapurlat, R. Interest of bone histomorphometry in bone pathophysiology investigation: Foundation, present, and future. Frontiers in Endocrinology. 13, 907914 (2022).
  9. Komori, T. Animal models for osteoporosis. European Journal of Pharmacology. 759, 287-294 (2015).
  10. Zhu, S., et al. Ovariectomy-induced bone loss in TNFα and IL6 gene knockout mice is regulated by different mechanisms. Journal of Molecular Endocrinology. 60 (3), 185-198 (2018).
  11. Baum, T., et al. Osteoporosis imaging: effects of bone preservation on MDCT-based trabecular bone microstructure parameters and finite element models. BMC Medical Imaging. 15, 22 (2015).
  12. Nazarian, A., Hermannsson, B. J., Muller, J., Zurakowski, D., Snyder, B. D. Effects of tissue preservation on murine bone mechanical properties. Journal of Biomechanics. 42 (1), 82-86 (2009).
  13. Martín-Badosa, E., Amblard, D., Nuzzo, S., Elmoutaouakkil, A., Vico, L., Peyrin, F. Excised bone structures in mice: imaging at three-dimensional synchrotron radiation micro CT. Radiology. 229 (3), 921-928 (2003).
  14. Egan, K. P., Brennan, T. A., Pignolo, R. J. Bone histomorphometry using free and commonly available software. Histopathology. 61 (6), 1168-1173 (2012).
  15. Brandi, M. L. Microarchitecture, the key to bone quality. Rheumatology. 48 (suppl_4), iv3-iv8 (2009).
  16. Schindelin, J., et al. Fiji: an open-source platform for biological-image analysis. Nature Methods. 9 (7), 676-682 (2012).
  17. Domander, R., Felder, A. A., Doube, M. BoneJ2-refactoring established research software. Wellcome Open Research. 6, 37 (2021).
  18. Parfitt, A. M., et al. Bone histomorphometry: standardization of nomenclature, symbols, and units: report of the ASBMR Histomorphometry Nomenclature Committee. Journal of Bone and Mineral Research. 2 (6), 595-610 (1987).
  19. Kazama, J. J., Koda, R., Yamamoto, S., Narita, I., Gejyo, F., Tokumoto, A. Cancellous bone volume is an indicator for trabecular bone connectivity in dialysis patients. Clinical Journal of the American Society of Nephrology: CJASN. 5 (2), 292-298 (2010).
  20. Watts, N. B. Postmenopausal osteoporosis: A clinical review. Journal of Women’s Health. 27 (9), 1093-1096 (2018).
  21. Thompson, D. D., Simmons, H. A., Pirie, C. M., Ke, H. Z. FDA Guidelines and animal models for osteoporosis. Bone. 17 (4), S125-S133 (1995).
  22. Iwaniec, U. T., Yuan, D., Power, R. A., Wronski, T. J. Strain-dependent variations in the response of cancellous bone to ovariectomy in mice. Journal of Bone and Mineral Research. 21 (7), 1068-1074 (2006).
  23. Ferguson, V. L., Ayers, R. A., Bateman, T. A., Simske, S. J. Bone development and age-related bone loss in male C57BL/6J mice. Bone. 33 (3), 387-398 (2003).
  24. Glatt, V., Canalis, E., Stadmeyer, L., Bouxsein, M. L. Age-related changes in trabecular architecture differ in female and male C57BL/6J mice. Journal of Bone and Mineral Research. 22 (8), 1197-1207 (2007).
  25. Seeman, E. The structural and biomechanical basis of the gain and loss of bone strength in women and men. Endocrinology and Metabolism Clinics. 32 (1), 25-38 (2003).
  26. Ticha, P., et al. A novel cryo-embedding method for in-depth analysis of craniofacial mini pig bone specimens. Scientific Reports. 10 (1), 19510 (2020).
  27. Genant, H. K., Engelke, K., Prevrhal, S. Advanced CT bone imaging in osteoporosis. Rheumatology. 47 (suppl_4), iv9-iv16 (2008).
  28. Zaw Thin, M., Moore, C., Snoeks, T., Kalber, T., Downward, J., Behrens, A. Micro-CT acquisition and image processing to track and characterize pulmonary nodules in mice. Nature Protocols. 18 (3), 990-1015 (2023).
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Cite This Article
Li, J., Hu, Y., You, H., Li, R., Ran, Q., Ouyang, T., Huang, Y. Trabecular Bone Microarchitecture Evaluation in an Osteoporosis Mouse Model. J. Vis. Exp. (199), e65880, doi:10.3791/65880 (2023).

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