Summary

Extração de veneno da vespa parasitoide Trichogramma dendrolimi usando um hospedeiro artificial

Published: October 06, 2023
doi:

Summary

Aqui, apresentamos um protocolo para extração de veneno de Trichogramma dendrolimi usando um hospedeiro artificial criado com filme de polietileno e solução de aminoácidos.

Abstract

As vespas parasitoides são um grupo diversificado de insetos himenópteros que servem como recursos inestimáveis para o biocontrole de pragas. Para garantir o sucesso do parasitismo, as vespas parasitoides injetam veneno em seus hospedeiros para suprimir a imunidade de seus hospedeiros, modular o desenvolvimento, o metabolismo e até mesmo o comportamento dos hospedeiros. Com mais de 600.000 espécies estimadas, a diversidade de vespas parasitoides supera a de outros animais peçonhentos, como cobras, caracóis cônicos e aranhas. O veneno da vespa parasitoide é uma fonte pouco explorada de moléculas bioativas com potenciais aplicações no controle de pragas e na medicina. No entanto, a coleta de veneno de parasitoides é um desafio devido à incapacidade de usar estimulação direta ou elétrica e à dificuldade de dissecção devido ao seu pequeno tamanho. Trichogramma é um gênero de vespas parasitoides de ovos minúsculas (~0,5 mm) que são amplamente utilizadas para o controle biológico de pragas de lepidópteros na agricultura e florestas. Aqui, relatamos um método para extração de veneno de T. dendrolimi usando hospedeiros artificiais. Esses hospedeiros artificiais são criados com filme de polietileno e soluções de aminoácidos e, em seguida, inoculados com vespas Trichogramma para parasitismo. O veneno foi posteriormente coletado e concentrado. Este método permite a extração de grandes quantidades de veneno de Trichogramma , evitando a contaminação de outros tecidos causada pela dissecção, um problema comum em protocolos de dissecção de reservatórios de veneno. Esta abordagem inovadora facilita o estudo do veneno de Trichogramma , abrindo caminho para novas pesquisas e potenciais aplicações.

Introduction

As vespas parasitoides são insetos himenópteros parasitas que são importantes recursos para o controle biológico1. Existe uma grande variedade de vespas parasitoides, com mais de 600.000 espécies estimadas2. A diversidade de vespas parasitoides excede em muito a de outros artrópodes peçonhentos, como cobras, caracóis cônicos, aranhas, escorpiões e abelhas. O veneno é um importante fator parasitário em vespas parasitoides. Para o sucesso do parasitismo, o veneno é injetado no hospedeiro, modulando o comportamento, a imunidade, o desenvolvimento e o metabolismo do hospedeiro3. Além disso, o veneno de vespas parasitoides exibe notável diversidade em suas estruturas moleculares, alvos e funções, refletindo complexa coevolução com seus hospedeiros. Assim, o veneno do parasitoide é um recurso valioso e pouco valorizado de moléculas ativas para fins inseticidas oumedicinais4. Ao contrário do veneno de cobras, caracóis, aranhas, escorpiões e abelhas, o veneno da vespa parasitoide não pode ser coletado por estimulação direta ou estimulação elétrica5. O método atual de extração do veneno da vespa parasitoide é dissecar o reservatório de veneno. No entanto, as vespas parasitoides são frequentemente pequenas, e a dissecção de vespas parasitoides requer altas habilidades técnicas. Portanto, se pudermos encontrar uma maneira de coletar o veneno de vespas parasitoides de forma eficiente e conveniente, será de grande ajuda pesquisar o veneno de vespas parasitoides.

Trichogramma (Hymenoptera: Trichogrammatidae) é um gênero de vespas parasitoides minúsculas (~0,5 mm de comprimento)6. Essas vespas estão entre os agentes de biocontrole mais amplamente utilizados, particularmente visando ovos de várias pragas de lepidópteros na agricultura e nas florestas. Por exemplo, T. dendrolimi, uma das espécies de Trichogramma mais utilizadas na China, tem sido extensivamente aplicada para controlar uma variedade de pragas agrícolas e florestais, como Dendrolimus superans, Ostrinia furnacalis e Chilo suppressalis. Estudos anteriores mostraram que vespas Trichogramma poderiam injetar seus ovos em hospedeiros artificiais7. Hospedeiros artificiais podem ser criados usando materiais como cera8, ágar9, Parafilm10 e filme plástico11. A solução em hospedeiros artificiais que induz oviposição suficiente para Trichogramma pode ser simples, como aminoácidos ou sais inorgânicos12. Baseado na característica de que T. dendrolimi pode parasitar hospedeiros artificiais, este estudo fornece um novo método para extrair veneno de vespas parasitoides usando hospedeiros artificiais. Esta abordagem visa abordar as deficiências de baixo rendimento, baixa pureza e suscetibilidade à contaminação nas técnicas de extração atuais. Usando este método, uma grande quantidade de veneno de alta pureza de T. dendrolimi pode ser extraída, o que atende às necessidades de pesquisa científica e triagem de moléculas bioativas para fins inseticidas ou médicos.

Protocol

1. Criação de insetos Alimentar Corcyra cephalonica em farinha de milho à temperatura de 26 ± 1°C e umidade relativa de 40% ± 10%. Cepa T. dendrolimi do insetário Jilin em ambientes fechados utilizando ovos de Corcyra cephalonica como hospedeiros. Alimentar adultos de vespa a 10% de água de sacarose em tubos de Drosophila a uma temperatura de 26 ± 1 °C, umidade relativa de 70% ± 10%, claro (L): escuro (D) período de 14 h: 10 h.<…

Representative Results

A concentração proteica das amostras representativas de veneno foi medida por meio do kit de ensaio proteico, com os resultados apresentados na Tabela 1. Os resultados mostraram que a concentração de proteína do veneno coletada por esse método variou de 0,35 μg/μL a 0,46 μg/μL, enquanto o controle negativo da solução de aminoácidos apresentou apenas uma concentração proteica de 0,03 μg/μL a 0,05 μg/μL. A concentração de proteína do veneno coletada por este método é muito maior do …

Discussion

Aqui, apresentamos um método para extração de veneno de T. dendrolimi usando hospedeiros artificiais. Os pontos-chave no experimento de coleta de veneno são os seguintes. (1) Durante a preparação, T. dendrolimi deve ser anestesiado rapidamente com uma concentração adequada de CO2. Se a concentração de CO2 for muito baixa, será insuficiente para anestesiar o Trichogramma rapidamente. Por outro lado, se a concentração for muito alta, Trichogramma pode m…

Disclosures

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Agradecemos o apoio financeiro da Fundação de Ciências Naturais da Província de Hainan (Grant no. 323QN262), da National Natural Science Foundation of China (Grant no. 31701843 e 32172483), do Jiangsu Agriculture Science and Technology Innovation Fund (Grant No. CX(22)3012 e CX(21)3008), a Fundação “Doutor Shuangchhuang” da Província de Jiangsu (Grant No. 202030472), e o fundo de inicialização da Universidade Agrícola de Nanjing (Grant No. 804018).

Materials

10 μm Nylon Net Millipore NY1002500 For filtering the eggs
10% Polyvinyl alcohol Aladdin P139533 For attractting  T. dendrolimi  to lay eggs
10% Sucrose water Sinopharm Chemical Reagent  10021463 Feed Trichogramma dendrolimi
4x LDS loading buffer Ace Hardware B23010301 SDS-PAGE
Collection box Deli 8555 Container for T. dendrolimi parasitism
Future PAGE  4–12% (12 wells) Ace Hardware J70236502X SDS-PAGE
GenScript eStain L1 protein staining apparatus GenScript L00753 SDS-PAGE
Glass grinding rod   Applygen tb6268 Semicircular protrudations 
L- Leucine Solarbio L0011 Artificial host components
L-Histidine Aladdin A2219458 Artificial host components
L-Phenylalanine Solarbio P0010 Artificial host components
Mini-Centrifuges Scilogex D1008 Centrifuge
MOPS-SDS running buffer Ace Hardware B23021 SDS-PAGE
Omni-Easy Instant BCA protein assay kit Shanghai Yamay Biomedical Technology  ZJ102 For esimation of venom protein concentration
PCR plate layout of 96 holes Thermo Fisher AB1400L Semicircular protrudations 
Polyethylene plastic film Suzhou Aopang Trading   001c5427 Artificial egg card
Prestained color protein marker(10–180 kDa) YiFeiXue Biotech YWB007 SDS-PAGE
Rubber band Guangzhou qianrui biology science and technology 009 Tighten the plastic film and the collection box
Silicone rubber septa mat, 96-well, round hole Sangon Biotech F504416-0001 Semicircular protrudations 

References

  1. Pennacchio, F., Strand, M. R. Evolution of developmental strategies in parasitic hymenoptera. Annual Review of Entomology. 51, 233-258 (2006).
  2. Yan, Z. C., Ye, X. H., Wang, B. B., Fang, Q., Ye, G. Y. Research advances on composition, function and evolution of venom proteins in parasitoid wasps. Chinese Journal of Biological Control. 33 (1), 1-10 (2017).
  3. Asgari, S., Rivers, D. B. Venom proteins from endoparasitoid wasps and their role in host-parasite interactions. Annual Review of Entomology. 56, 313-335 (2011).
  4. Moreau, S. J. M., Guillot, S. Advances and prospects on biosynthesis, structures, and functions of venom proteins from parasitic wasps. Insect Biochemistry and Molecular Biology. 35 (11), 1209-1223 (2005).
  5. Yan, Z. C., et al. A venom serpin splicing isoform of the endoparasitoid wasp Pteromalus puparum suppresses host prophenoloxidase cascade by forming complexes with host hemolymph proteinases. Journal Biological Chemistry. 292 (3), 1038-1051 (2017).
  6. Woelke, J. B., et al. Description and biology of two new egg parasitoid species (Hymenoptera: Trichogrammatidae) reared from eggs of Heliconiini butterflies (Lepidoptera: Nymphalidae: Heliconiinae) in Panama. Journal of Natural History. 53 (11-12), 639-657 (2019).
  7. Zang, L. S., Wang, S., Zhang, F., Desneux, N. Biological control with Trichogramma in China: History, present status, and perspectives. Annual Review of Entomology. 66, 463-484 (2021).
  8. Nettles, W. C. J., Morrison, R. K., Xie, Z. N., Ball, D., Shenkir, C. A., Vinson, S. B. Synergistic action of potassium chloride and magnesium sulfate on parasitoid wasp oviposition. Science. 218, 4568 (1982).
  9. Tilden, R. L., Ferkovich, S. M. Kairomonal stimulation of oviposition into an artificial substrate by the endoparasitoid Microplitis croceipes (Hymenoptera)Braconidae). Annals of the Entomological Society of America. 81 (1), 152-156 (1988).
  10. Xie, Z. N., Li, L., Xie, Y. Q. In vitro culture of Habrobracon hebetor. Chinese Journal of Biological Control. 5 (2), 49-51 (1989).
  11. Han, S. T., Liu, W. H., Li, L. Y., Chen, Q. X., Zeng, B. K. Breeding Trichogramma ostriniae with artificial eggs. Journal of Environmental Entomology. 21 (1), 9-12 (1999).
  12. Li, L. Y., Chen, Q. X., Liu, W. H. Oviposition behavior of twelve species of Trichogramma and its influence on the efficiency of rearing them in vitro. Journal of Environmental Entomology. 11 (1), 31-35 (1989).
  13. Xing, J. Q., Li, L. Y. Rearing of an egg parasite Anastatus japonicus Ashmead in vitro. Acta Entomologica Sinica. 33 (2), 166-173 (1990).
  14. Moreau, S. J. M. "It stings a bit but it cleans well": Venoms of Hymenoptera and their antimicrobial potential. Journal of Insect Physiology. 59 (2), 186-204 (2013).
  15. Moreau, S. J. M., Asgari, S. Venom proteins from parasitoid wasps and their biological function. Toxins. 7 (7), 2385-2412 (2015).
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Cite This Article
Wang, H., Yu, Z., Ren, X., Li, Y., Yan, Z. Extracting Venom from the Parasitoid Wasp Trichogramma dendrolimi Using an Artificial Host. J. Vis. Exp. (200), e66032, doi:10.3791/66032 (2023).

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