Summary

Metylerat DNA Immunoprecipitation

Published: January 02, 2009
doi:

Summary

Denna video visar protokollet för metylerade DNA immunoprecipitation (MeDIP). MeDIP är en två dagars förfarande som selektivt utdrag metylerade DNA-fragment från en genomisk DNA-prov med hjälp av antikroppar med specificitet för 5-methylcytosine (anti-5 MC).

Abstract

Identifieringen av mönstren DNA-metylering är ett vanligt förfarande i studiet av epigenetik, eftersom metylering är känt för att ha betydande effekter på genuttryck, och deltar med normal utveckling och sjukdomar<sup> 1-4</sup>. Således är förmågan att skilja mellan metylerade DNA och icke-metylerat DNA avgörande för att generera metylering profiler för sådana studier. Metylerade DNA immunoprecipitation (MeDIP) är en effektiv teknik för utvinning av metylerade DNA från ett urval av intresse<sup> 5-7</sup>. Ett urval av så lite som 200 ng DNA är tillräckligt för antikroppen, eller immunoprecipitation (IP), reaktion. DNA är sonicated i fragment varierar i storlek från 300-1000 BP, och är indelad i immunoprecipitated (IP) och ingång (IN) portioner. IP-DNA är värme därefter denatureras och sedan inkuberas med anti-5'mC, vilket gör att den monoklonala antikroppen att binda metylerat DNA. Efter detta är magnetiska kulor med en sekundär antikropp med affinitet för den primära antikroppen till, och inkuberas. Dessa pärla kopplade antikroppar binder den monoklonala antikroppen som används i första steget. DNA är bundet till antikropp komplex (metylerat DNA) är skild från resten av DNA med hjälp av en magnet för att dra komplex av lösningen. Flera tvättar med IP buffert skall sedan genomföras för att ta bort obundna, icke-metylerat DNA. Den metylerade DNA / antikropp komplex är sedan kokas med proteinas K att smälta antikropparna vilket innebär att endast den metylerade DNA intakt. Det berikade DNA renas genom fenol: kloroform utvinning för att ta bort proteinet ärendet och sedan kondenseras och suspenderade i vatten för senare användning. PCR-teknik kan användas för att validera effektivitet MeDIP förfarande genom att analysera PCR-produkter av IP och IN DNA för regioner känd brist och kända för att innehålla denaturerad sekvenser. Det renade metylerade DNA kan sedan användas för locus-specifika (PCR) eller genom hela (microarray och sekvensering) metylering studier, och är särskilt användbart när den används tillsammans med annan forskning verktyg som profilering av genuttryck och array jämförande genomet hybridisering ( CGH)<sup> 8</sup>. Ytterligare undersökningar av DNA-metylering kommer att leda till upptäckten av nya epigenetiska mål, som i sin tur kan användas för att utveckla nya terapeutiska och prognostiska forskning verktyg för sjukdomar som cancer som kännetecknas av avvikande metylerade DNA<sup> 2, 4, 9-11</sup>.

Protocol

DNA-extraktion och provberedning DNA från en mängd olika prover (odlade celler, färskfrusen samt formalinfixerade paraffinförvarad vävnader) kan användas för MeDIP. Det är viktigt att använda renat DNA utan tillhörande proteiner såsom histoner. Det är också viktigt att ta bort så mycket RNA som möjligt från provet, eftersom det kan störa både DNA-kvantifiering och bindande antikroppar. Den mängd DNA används för MeDIP kan variera från 200 ng till 1 mikrogram beroende på m…

Discussion

Det finns en växande medvetenhet om de betydande metylering roll DNA spelar i sjukdomen, är därför att utveckla testmetoder för att mäta denna modifiering blir allt viktigare 3, 12, 13. Den MeDIP tekniken är en mottaglig verktyg för screening på både hel-genomet och locus-specifik nivå 6, 7. Denna teknik ger en snabb bild av nivåer DNA-metylering med hjälp av begränsade mängder start DNA och gör det lätt att jämförelser mellan olika källor. Nedströms program som använder MeDIP…

Acknowledgements

Vi vill tacka medlemmarna i Brown och Lam labb för deras deltagande i kritisera denna video och artikel. Detta arbete stöddes av medel från den kanadensiska Institutes for Health Research och Michael Smith Stiftelsen för hälsoforskning.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Biorupter sonicator Tool Diagenode UCD-200 TM  
1.7ml SafeSeal Microcentrifuge Tubes 기타 Sorenson BioScience 11510  
ND 3300 Spectrophotometer Tool NanoDrop    
Primary Antibody: Anti-5′-methylcytosine mouse mAb Reagent CalBiochem 162 33 D3  
Secondary Antibody: Dynabeads M-280 Sheep anti-mouse IgG Reagent Invitrogen 112-01D  
Magnetic Tube Rack Tool Invitrogen CS15000  
Mini LabRoller Tool Labnet International H5500  
IP Buffer       10 mM NaPO4 pH 7.0, 140 mM NaCl, 0.05% Triton X-100. Stored at room temperature
Digestion Buffer       10 mM Tris pH8.0, 100 mM EDTA, 0.5% SDS, 50 mM NaCl

References

  1. Beck, S., Rakyan, V. K. The methylome: approaches for global DNA methylation profiling. Trends Genet. 24, 231-237 (2008).
  2. Lu, Q., et al. Epigenetics, disease, and therapeutic interventions. Ageing research reviews. 5, 449-467 (2006).
  3. Zilberman, D., Henikoff, S. Genome-wide analysis of DNA methylation patterns. Development. 134, 3959-3965 (2007).
  4. Feinberg, A. P., Tycko, B. The history of cancer epigenetics. Nature reviews. 4, 143-153 (2004).
  5. Weber, M., et al. Distribution, silencing potential and evolutionary impact of promoter DNA methylation in the human genome. Nat Genet. 39, 457-466 (2007).
  6. Weber, M., et al. Chromosome-wide and promoter-specific analyses identify sites of differential DNA methylation in normal and transformed human cells. Nat Genet. 37, 853-862 (2005).
  7. Wilson, I. M., et al. Epigenomics: mapping the methylome. Cell Cycle. 5, 155-158 (2006).
  8. Gazin, C., Wajapeyee, N., Gobeil, S., Virbasius, C. M., Green, M. R. An elaborate pathway required for Ras-mediated epigenetic silencing. Nature. 449, 1073-1077 (2007).
  9. Karpinski, P., Sasiadek, M. M., Blin, N. Aberrant epigenetic patterns in the etiology of gastrointestinal cancers. Journal of applied. 49, 1-10 (2008).
  10. Maekawa, M., Watanabe, Y. Epigenetics: relations to disease and laboratory findings. Current medicinal chemistry. 14, 2642-2653 (2007).
  11. Vucic, E. A., Brown, C. J., Lam, W. L. Epigenetics of cancer progression. Pharmacogenomics. 9, 215-234 (2008).
  12. Egger, G., Liang, G., Aparicio, A., Jones, P. A. Epigenetics in human disease and prospects for epigenetic therapy. Nature. 429, 457-463 (2004).
  13. Jones, P. A., Baylin, S. B. The fundamental role of epigenetic events in cancer. Nat Rev Genet. 3, 415-428 (2002).
  14. Fraga, M. F., Esteller, M. DNA methylation: a profile of methods and applications. Biotechniques. 33, 632-649 (2002).
check_url/kr/935?article_type=t

Play Video

Cite This Article
Thu, K. L., Vucic, E. A., Kennett, J. Y., Heryet, C., Brown, C. J., Lam, W. L., Wilson, I. M. Methylated DNA Immunoprecipitation. J. Vis. Exp. (23), e935, doi:10.3791/935 (2009).

View Video