Summary

Méthode de coloration Mont anticorps entier de Chick

Published: February 02, 2009
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Summary

Cette vidéo montre tout le mont immunohistochimie, une méthode par laquelle le profil d'expression spatiale et temporelle d'un antigène peut être visualisé dans des embryons de poulet jeunes. Cette méthode a été initialement présenté par Jane et Tom Dodd Jessell.

Abstract

L'embryon de poulet est un outil précieux dans l'étude du développement embryonnaire précoce. Sa transparence, l'accessibilité et la facilité de manipulation, en font un outil idéal pour étudier l'expression d'anticorps dans le développement du cerveau, du tube neural et des somites. Cette vidéo montre les différentes étapes de coloration des anticorps entiers de montage en utilisant HRP conjugué anticorps secondaire; d'abord, l'embryon est disséquée de l'oeuf et fixés dans du paraformaldéhyde. Deuxièmement, la peroxydase endogène est inactivé; L'embryon est ensuite exposée à l'anticorps primaire. Après plusieurs lavages, l'embryon est incubée avec un anticorps secondaire conjugué à la HRP. L'activité peroxydase est révélée en utilisant la réaction avec le substrat diaminobenzidine. Enfin, l'embryon est fixe et traitées pour la photographie et de sectionnement. L'avantage de cette méthode sur l'utilisation d'anticorps fluorescents est que les embryons peuvent être traités pour la coupe de la cire, permettant ainsi à l'étude de sites antigéniques en coupe transversale. Cette méthode a été initialement présenté par Jane et Tom Dodd Jessell<sup> 1</sup>.

Protocol

I. Schéma Aperçu: Cette vidéo montre les différentes étapes de l'immunohistochimie monter ensemble dans l'embryon de poulet. Tout d'abord, l'embryon est fixé en PFA [IHC1]. Ensuite, l'activité peroxydase endogène est éteint [IHC2]. L'embryon est ensuite incubée dans l'anticorps primaire [IHC3]. Après plusieurs lavages, l'embryon est incubé dans anticorps secondaire [IHC4]; réaction colorée se révèle en DAB [IHC5] et la coloration des anticorps ap…

Discussion

Cette vidéo montre les différentes étapes dans l'exécution de coloration des anticorps entiers monter dans des embryons de poulet jeunes. Ce protocole est essentiellement utilisé pour la caractérisation spatiale et temporelle de nouveaux anticorps chez le poulet 2,3, ainsi que pour l'utilisation de marqueurs antigéniques connues pour déterminer les malformations embryonnaires suivantes insulte 4.

Acknowledgements

Les anticorps monoclonaux (15.3B9, PAX7) développé par (J. Dodd, MC Jessell et A. Kawakami) ont été obtenus auprès de la Banque de développement d'hybridomes études élaborées sous les auspices de l'NICHD et maintenu par l'Université de l'Iowa, Département des sciences biologiques , dans l'Iowa. DP est récipiendaire du Prix Ruth Kirschstein 1F32-01A1 DA021977 du National Institute on Drug Abuse. Ce travail a été soutenu par la Fondation Margaret M. Alkek au RHF.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Eggs   Charles River Laboratories Premium Fertile Fertilized, HH4 (16 hr)
Stereomicroscope Microscope Leica Microsystems MZ9.5 or similar  
Marsh Automatic Incubator 기타 Lyon RX  
Curved Forceps (1) Tool Electron Microscopy Sciences 72991-4C  
Forceps (2) Tool Fine Science Tools 11002-13  
Fine scissors Tool Fine Science Tools 14161-10  
Plastic dishes Tool Falcon 353001  
Rubber Bulb Tool Electron Microscopy Sciences 70980  
Pasteur Capillary Pipette Tool Electron Microscopy Sciences 70950-12 round edge under flame
Microdissecting knife Tool Fine Science Tools 10056-12 Use to cut embryo from surrounding membranes following fixation
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base Reagent Dow Corning 0001986475 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
16% PFA Reagent Electron Microscopy Sciences 15710  
30% H2O2 Reagent Sigma H1009  
BSA Reagent Sigma A3803  
NGS Reagent Jackson Immuno 005-000-121  
Primary Antibodies Reagent Developmental studies Hybridoma Bank 4G11, 15.3B9, PAX7 For these antibodies, investgators used mouse donnors
Peroxidase conjugated-Goat Anti-Mouse IgG (H+L) Reagent Jackson Immuno 115-035-003  
3,3’-diaminobenzidine tetrahydrochloride Reagent Pierce 34001 Store at -20; Allow bottle to warm to RT before use.
Cedar wood oil Reagent Sigma W522503  
Fast green FCF Reagent Sigma F7252  
Minuten pins 0.2mm diam   Fine Science Tools 26002-20  

References

  1. Yamada, T., Placzek, M., Tanaka, H., Dodd, J., Jessell, T. M. Control of cell pattern in the developing nervous system: Polarizing activity of the floor plate and notochord. Cell. 64, 635-647 (1991).
  2. Streit, A., Stern, C. D., Thery, C., Ireland, G. W., Aparicio, S., Sharpe, M. J., Gherardi, E. A role for HGF/SF in neural induction and its expression in Hensen’s node during gastrulation. Development. 121, 813-824 (1995).
  3. Basch, M., Bronner-Fraser, M., Garcia-Castro, M. Specification of neural crest occurs during gastrulation and requires Pax7. Nature. 441, 218-222 (2006).
  4. Psychoyos, D., Stern, C. D. Restoration of the organizer after radical ablation of Hensen’s node and the anterior primitive streak in the chick embryo. Development. 122, 3263-3273 (1996).
check_url/kr/956?article_type=t

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Cite This Article
Psychoyos, D., Finnell, R. Method for Whole Mount Antibody Staining in Chick. J. Vis. Exp. (24), e956, doi:10.3791/956 (2009).

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