Summary

칙의 전체 마운트 항체 스테 이닝을위한 방법

Published: February 02, 2009
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Summary

이 동영상은 모든 마운트 immunohistochemistry, 항원의 공간 및 시간적 표현식 패턴이 젊은 여자는 태아의 시각 될 수있는 방법을 보여줍니다. 이 방법은 원래 제인 다드와 톰 Jessell에 의해 도입되었다.

Abstract

여자의 난자는 초기 배아 발달의 연구에 귀중한 도구입니다. 투명성, 접근성 및 조작 용이성, 그건 뇌, 신경 튜브 및 체절 개발에 항체 표현을 공부를위한 이상적인 도구가합니다. 이 동영상은 HRP 복합 이차 항체를 사용하여 전체 마운트 항체 얼룩의 여러 단계를 보여주는, 첫째, 배아는 난자에서 해부하고 paraformaldehyde에서 해결되었습니다. 둘째, 내생 퍼옥시데이즈은 inactivated이며 배 (胚)는 다음 주 항체에 노출됩니다. 여러 세척 후, 배아는 HRP에 복합 보조 항체와 incubated입니다. 퍼옥시데이즈 활동 diaminobenzidine 기판과 반응을 사용하여 드러났습니다. 마지막으로, 배 (胚)는 고정하고 사진과 sectioning에 대한 처리됩니다. 형광 항체의 사용을 통해이 방법의 장점은 그 배아가 있으므로 단면의 항원 사이트의 연구를 지원, 왁스 sectioning에 대해 처리할 수 있습니다. 이 방법은 원래 제인 다드와 톰 Jessell에 의해 도입되었다<sup> 1</sup>.

Protocol

I. 도식 개요 : 이 비디오는 여자의 배아에서 전체 마운트 immunohistochemistry의 여러 단계를 보여줍니다. 첫째, 배아는 PFA에서 수정된 [IHC1]. 그런 다음, 내생 퍼옥시데이즈 활동은 침묵이다 [IHC2]. 배아는 다음 주 항체 [IHC3]에서 incubated입니다. 여러 세척 후 배아가 이차 항체에 incubated입니다 [IHC4]; 컬러 반응이 DAB [IHC5]를 사용하고 계시이며 항체 얼룩이 나타납니다 오렌지 [IHC6]. <…

Discussion

이 동영상은 젊은 여자는 배아의 전체 마운트 항체 얼룩을 수행하는 다른 단계를 보여줍니다. 이 프로토콜은 기본적으로 여자가 2,3의 소설 항체의 공간 및 시간적 특성을 위해 사용뿐만 아니라 모욕 4 다음 배아 기형을 결정하는 것으로 알려진 antigenic 마커의 사용입니다.

Acknowledgements

(J. 다드, TM Jessell 및 A. 가와 카미)에 의해 개발된 단클론 항체는 (15.3B9, PAX7) 생물 과학학과, 아이오와 대학에서 NICHD 유지의 후원하에 개발된 발달 연구 브리 도마 은행에서 얻은되었습니다 아이오와. DP는 약물 남용에있는 국립 연구소에서 루스 Kirschstein 수상 1F32 – 01A1 DA021977의받는 사람입니다. 이 작품은 RHF에 마가렛 M. 알켁 재단에 의해 지원되었다.

Materials

Material Name Type Company Catalogue Number Comment
Eggs   Charles River Laboratories Premium Fertile Fertilized, HH4 (16 hr)
Stereomicroscope Microscope Leica Microsystems MZ9.5 or similar  
Marsh Automatic Incubator 기타 Lyon RX  
Curved Forceps (1) Tool Electron Microscopy Sciences 72991-4C  
Forceps (2) Tool Fine Science Tools 11002-13  
Fine scissors Tool Fine Science Tools 14161-10  
Plastic dishes Tool Falcon 353001  
Rubber Bulb Tool Electron Microscopy Sciences 70980  
Pasteur Capillary Pipette Tool Electron Microscopy Sciences 70950-12 round edge under flame
Microdissecting knife Tool Fine Science Tools 10056-12 Use to cut embryo from surrounding membranes following fixation
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base Reagent Dow Corning 0001986475 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
16% PFA Reagent Electron Microscopy Sciences 15710  
30% H2O2 Reagent Sigma H1009  
BSA Reagent Sigma A3803  
NGS Reagent Jackson Immuno 005-000-121  
Primary Antibodies Reagent Developmental studies Hybridoma Bank 4G11, 15.3B9, PAX7 For these antibodies, investgators used mouse donnors
Peroxidase conjugated-Goat Anti-Mouse IgG (H+L) Reagent Jackson Immuno 115-035-003  
3,3’-diaminobenzidine tetrahydrochloride Reagent Pierce 34001 Store at -20; Allow bottle to warm to RT before use.
Cedar wood oil Reagent Sigma W522503  
Fast green FCF Reagent Sigma F7252  
Minuten pins 0.2mm diam   Fine Science Tools 26002-20  

References

  1. Yamada, T., Placzek, M., Tanaka, H., Dodd, J., Jessell, T. M. Control of cell pattern in the developing nervous system: Polarizing activity of the floor plate and notochord. Cell. 64, 635-647 (1991).
  2. Streit, A., Stern, C. D., Thery, C., Ireland, G. W., Aparicio, S., Sharpe, M. J., Gherardi, E. A role for HGF/SF in neural induction and its expression in Hensen’s node during gastrulation. Development. 121, 813-824 (1995).
  3. Basch, M., Bronner-Fraser, M., Garcia-Castro, M. Specification of neural crest occurs during gastrulation and requires Pax7. Nature. 441, 218-222 (2006).
  4. Psychoyos, D., Stern, C. D. Restoration of the organizer after radical ablation of Hensen’s node and the anterior primitive streak in the chick embryo. Development. 122, 3263-3273 (1996).
check_url/kr/956?article_type=t

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Cite This Article
Psychoyos, D., Finnell, R. Method for Whole Mount Antibody Staining in Chick. J. Vis. Exp. (24), e956, doi:10.3791/956 (2009).

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