Name: 制备大鼠脑组织神经元和神经胶质发展研究总结文化 (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-09-30T23:59:00.000+00:00
Duration: 12 min 3 s
Description: 学习大鼠胚胎脑组织聚集体培养技术，用于研究中枢神经系统神经祖细胞分化为神经元和胶质细胞的发育过程。该方法为神经科学和发育生物学研究提供了可靠的体外模型。

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本研究部分由德克萨斯农工大学（Texas A&amp;M 大学

解剖前的准备
手术器械：使用高压灭菌器对所有解剖剪刀和镊子进行灭菌
盖玻片清洗：
<ol>
 <li>将所有盖玻片（24孔板用直径15 mm）浸入1 L烧杯中的33% HCl中，至少浸泡24 h</li>
 <li>用流水冲洗10 min，期间偶尔晃动，以去除所有残留的HCl</li>
 <li>用Millipore水漂洗</li>
 <li>沥干水分</li>
 <li>将盖玻片浸泡于95–98%乙醇中</li>
 <li>将盖玻片转移至平皿中的洁净纸巾上，并使其自然晾干</li>
 <li>将盖玻片转移至玻璃烧杯中，用铝箔包裹后进行高压灭菌 
 注意：此步骤后盖玻片可储存备用</li>
 <li>将单个盖玻片放入培养板中，准备进行包被</li>
 </ol>
盖玻片包被：
 <ol>
 <li>将聚-D-赖氨酸（PDL，10 mg/ml 溶于含 0.5% 牛血清白蛋白的 PBS 中，分装后于 -20°C 保存）的 100 倍浓缩液用 PBS 稀释，并经滤膜（0.22 μm）过滤除菌 </li>
 <li>用 1 倍 PDL 溶液（约 0.15 ml/cm2）在 37°C 培养箱中孵育 2 小时，对盖玻片进行包被 </li>
 <li>吸除 PDL 溶液，用无菌 ddH2O 洗涤 3 次，并将盖玻片完全干燥 </li>
 </ol>
注意：为每次解剖准备足量的盖玻片/培养板。PDL包被的盖玻片可在4°C下保存数周。
培养基与溶液
解剖液（DM）：使用无菌冰上预冷的不含 Ca2+ 和 Mg2+ 的汉克斯平衡盐溶液（HBSS，Invitrogen 14175），并添加 10 mM HEPES（Invitrogen 15630）。
聚集体培养基：DMEM/NBB27 培养基包含 DMEM/Neurobasal（1:1 体积比）、2% B27、1× Sato、0.5 mM 丙酮酸钠、0.75 mM GlutaMAX、60 μg/ml N-乙酰半胱氨酸、5 μg/ml 胰岛素、10 nM d-生物素以及 1% 青霉素/链霉素。配制 100 ml 聚集体培养基时，混合以下组分：50 ml DMEM（不含丙酮酸盐/谷氨酰胺，Invitrogen 11960）、50 ml Neurobasal 培养基（Invitrogen 211034）、375 μl GlutaMax（100×，Invitrogen 35050）、5.5 mg 丙酮酸钠（Sigma P2256）、2 ml B27（Invitrogen 17504）、6.3 mg N-乙酰半胱氨酸（Sigma A8199）、1 ml Sato 储存液（100× 储存液，见下文）、25 μl d-生物素储存液（4000× 储存液，PBS 中含 40 μM，分装后于 -20°C 保存，Sigma B4639）、100 μl 胰岛素（1000× 储存液，溶于 0.01 N HCl 中，浓度为 5 mg/ml，分装后于 -20°C 保存，Sigma 16634）、1 ml 青霉素/链霉素（100× 储存液，Invitrogen 15140），过滤除菌后于 4°C 保存。
Sato 100倍储存液： 配制40 ml储存液：将40 ml Neurobasal与400 mg apo-转铁蛋白（Sigma T2252）、400 mg BSA（Sigma A9647）、10 μl孕酮（25 mg/ml乙醇溶液，分装后于-20°C保存，Sigma P8783）、64 mg亚精胺（Sigma P7505）以及40 μl亚硒酸钠（30 μM PBS溶液，分装后于-20°C保存，Sigma S5261）混合。用滤器对Sato储存液进行除菌过滤，并分装后于-20°C保存。
神经元铺板培养基（PM）：Neurobasal 培养基、2% B27、2 mM 谷氨酰胺（100 倍储存液，分装后于 -20°C 保存，Invitrogen 25030）、25 μM 谷氨酸（100 倍储存液，分装后于 -20°C 保存）以及 1% 青霉素/链霉素。
神经元培养基（CM）：Neurobasal 培养基、2% B27、2 mM 谷氨酰胺（100倍浓缩液，分装后于 -20°C 保存）以及 1% 青霉素/链霉素。
5-FdU 储存液：100 倍浓度储存液，含 1 mM 5-氟-2'-脱氧尿苷（Sigma F0503）和 1 mM 尿苷（Sigma U3003）的 Neurobasal 培养基。经滤膜除菌后分装保存于 -20°C。
木瓜蛋白酶消化液（解剖前新鲜配制）：
<ol>
 <li>将 3.2 mg L-半胱氨酸（Sigma C-7352）溶解于 4 ml DM 中</li>
 <li>用 1N NaOH 调节 pH 至约 7.4（用 pH 试纸检测），并在 37°C 水浴中放置 
注意：在组织消化前立即进行下一步操作（见下文）。</li>
 <li>加入木瓜蛋白酶，使其终浓度为 20 单位/ml</li>
 <li>过滤除菌（0.22 µm），并置于 37°C 水浴中</li>
</ol>
胰蛋白酶抑制剂溶液（解剖前新鲜配制）：
<ol>
 <li>将 0.2 g 胰蛋白酶抑制剂（Sigma T7295）溶于 20 ml DM 中</li>
 <li>检测 pH 值，并用 1 N NaOH 调节 pH 至约 7.4</li>
 <li>过滤除菌后，置于 37°C 水浴中</li>
</ol>
脑解剖
设置：
<ul>
 <li>灭菌的镊子和剪刀</li>
 <li>70% 乙醇</li>
 <li>实验台上清洁的纸巾和尿垫</li>
 <li>实验台上盛有冰冻 DM 的 10 cm 培养皿，用于子宫和胚胎</li>
 <li>解剖显微镜下的冰平台</li>
 <li>2–3 个盛有 DM 并置于冰上的 6 cm 培养皿</li>
 <li>37°C 水浴中预热的 PM</li>
</ul>
<ol>
 <li>根据贵机构动物护理与使用委员会（IACUC）批准的程序，处死一只妊娠16天（E16）的Sprague-Dawley大鼠</li>
 <li>将大鼠仰卧于吸水垫上，并用酒精喷洒腹部区域进行消毒</li>
 <li>使用镊子提起腹部皮肤，用剪刀仅剪开皮肤，做V形切口</li>
 <li>分开皮肤，使用另一把无菌镊子和剪刀剪开肌层</li>
 <li>取出胚胎囊串链，转移至含有冰上预冷DM培养基的10 cm培养皿中</li>
 <li>使用显微解剖剪小心地从每个胚胎囊中分离出胚胎，再从每个胚胎中取出脑组织，并将游离的脑组织放入盛有DM培养基、置于冰上的洁净10 cm培养皿中</li>
 <li>在超净工作台内，借助解剖显微镜，切下中脑/后脑部分，用精细镊子去除脑膜，将清理后的皮层/海马组织转移至盛有DM培养基、置于冰袋上的新6 cm培养皿中 
 注意： 此时组织已准备好进行酶消化。</li>
 <li>配制木瓜蛋白酶（papain）和胰蛋白酶抑制剂溶液，并过滤除菌</li>
 <li>吸除皮层/海马组织中多余的DM培养基</li>
 <li>加入4 ml已配制好的木瓜蛋白酶消化液</li>
 <li>将全部内容转移至50 ml离心管中，将Falcon管置于37°C水浴中，精确孵育5分钟</li>
 <li>用移液器吸除木瓜蛋白酶溶液</li>
 <li>加入5 ml胰蛋白酶抑制剂溶液，轻轻涡旋混匀，再置于37°C水浴中孵育2–3分钟</li>
 <li>吸除胰蛋白酶抑制剂溶液</li>
 <li>重复步骤13和14共三次</li>
 <li>加入20 ml预温的PM培养基</li>
 <li>反复吹打至所有团块消失（约20–30次）</li>
 <li>以100×g离心7分钟</li>
 <li>将沉淀重悬于10 ml PM培养基中，通过离心洗涤两次</li>
 <li>将沉淀重悬于10 ml PM培养基中用于常规神经元培养，或重悬于NBB27/DMEM培养基中用于聚集体培养</li>
 <li>将细胞悬液通过70 μm细胞筛</li>
 <li>计数活细胞</li>
 <li>按以下所述进行聚集体培养，或直接将细胞接种用于常规神经元培养 
注意： 在此步骤中，可通过将解离后的细胞以200–640个细胞/mm2的密度接种于多聚赖氨酸（PDL）包被的培养板上，获得高度富集的神经元培养物。待细胞贴壁后（约2–4小时），更换为预温的PM培养基。若需长期培养，在第4天更换一半培养基为预温的CM培养基。为获得高纯度神经元培养物，可在DIV2时加入有丝分裂抑制剂5-FdU（终浓度10 μM），以抑制非神经元细胞增殖（即作用于DIV2–3）。在CM培养基中恢复培养2天后，再次用5-FdU脉冲处理2天（DIV6–7），随后完全更换培养基。此后每3–4天更换一半新鲜预温的CM培养基。神经元可存活长达4周。</li>
</ol>
聚集体的制备与接种
<ol>
 <li>将解离的细胞悬浮于含有1× Sato、10 ng/ml CNTF和10 μM forskolin的NBB27/DMEM培养基中，细胞密度为2×106 个细胞/ml</li>
 <li>将2 ml细胞悬液转移至未包被的6孔板的每个孔中</li>
 <li>培养3个晚上。每天使用P1000移液器轻轻重悬细胞一次 注意：细胞开始形成聚集体（图1）。</li>
 <li>在聚集体铺板前一天，用Matrigel包被培养板或盖玻片：
 <ul>
 <li>将储存液Matrigel（生长因子减少型，BD Biosciences 354230）在冰上用冷DMEM按1:20稀释 
 注意： Matrigel分装应按照制造商说明书操作。所有用于分装的枪头、Eppendorf管和溶液均需预冷，以避免Matrigel发生聚合。Matrigel分装后保存于-80°C，使用前在4°C解冻。</li>
 <li>将稀释后的Matrigel溶液每孔300 μl加入先前已用PDL包被的盖玻片上，于37°C培养箱中过夜包被</li>
 <li>用预热的PBS洗涤，再用预热的无菌ddH2O洗涤培养板，并将培养板留在培养箱中。</li>
 </ul></li>
 <li>聚集体形成后第3天，再次轻轻重悬细胞，并通过200 μm滤网将悬液过滤至50 ml Falcon管中。静置约3–5分钟，使聚集体依靠重力自然沉降到管底</li>
 <li>小心移除上清液</li>
 <li>加入培养基，轻轻重悬聚集体后再次沉降。重复此步骤数次，以去除死细胞、单个细胞及碎片。使用显微镜检查上清液中是否仍含有未聚集成团的细胞或碎片</li>
 <li>将聚集体轻轻重悬于相同的NBB27/DMEM培养基中（图1），并计数聚集体数量</li>
 <li>调整聚集体密度至约25–30个聚集体/50 μl</li>
 <li>将聚集体悬液分装至2 ml Eppendorf管中（每管500–1000 μl），用于后续铺板 
注意： 由于聚集体容易沉降到管底，因此必须准备多个分装管。在将聚集体接种到包被的盖玻片或培养板前，应频繁轻轻重悬，以确保每个盖玻片上的聚集体数量相近。</li>
 <li>从培养箱中取出含有Matrigel包被盖玻片的培养板。吸除每孔中的液体，用预热的PBS和ddH2O洗涤盖玻片，然后短暂干燥。此时盖玻片已准备好用于聚集体接种</li>
 <li>将含有聚集体悬液的管轻轻倒置，使聚集体分布均匀后再进行接种。向每张盖玻片中央加入50 μl聚集体悬液，轻柔地将培养板放回培养箱，避免扰动，以使聚集体均匀贴附于盖玻片上 
注意： 聚集体的密度至关重要。若聚集体之间距离过近或接种密度过高，随着生长它们容易相互融合。</li>
 <li>接种后4–6小时或次日清晨，向每孔中补充DMEM/NBB27培养基500 μl</li>
 <li>为维持聚集体培养，每3–4天更换一半培养基。换液时应小心操作，避免扰动聚集体，可通过沿孔壁缓慢加入新培养基的方式完成 
注意： 聚集体贴附至培养板数小时后，即可观察到从聚集体向外延伸的神经突。轴突在前两周内快速生长，并在不同聚集体之间形成丰富的连接（图2）。胶质前体细胞从聚集体呈放射状迁移，并随时间逐渐分化为星形胶质细胞和成熟的少突胶质细胞。</li>
</ol>
<img src="/files/ftp_upload/1304/1304fig1.jpg" alt="细胞培养三天内的生长情况；显微镜图像显示聚集体形成及洗涤后的结果。" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="figure 1"> 图1. 细胞在不同天数形成聚集体的相差显微图像，以及洗涤后的聚集体图像。
<img src="/files/ftp_upload/1304/1304fig2.jpg" alt="神经元生长比较，相差显微镜，DIV 2 与 DIV 12，细胞网络分析。" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="figure 2"> 图2. 在Matrigel包被的盖玻片上接种后2天和12天的聚集体培养物的相差显微图像。

<ol><li>Matthieu, J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Myelination+in+rat+brain+aggregating+cell+cultures%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Myelination in rat brain aggregating cell cultures.</a> Neuroscience. 3, 565-56 (1978).</li>
<li>Chen, Y. ing <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Isolation+and+culture+of+rat+and+mouse+oligodendrocyte+precursor+cells%5BTitle%5D)+AND+%22Nat.+Protocols%22%5BJournal%5D)">Isolation and culture of rat and mouse oligodendrocyte precursor cells.</a> Nat. Protocols. 2, 1044-10 (2007).</li>
<li>Watkins, T. A., Emery, B., Mulinyawe, S., Barres, B. A. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Distinct+stages+of+myelination+regulated+by+gamma-secretase+and+astrocytes+in+a+rapidly+myelinating+CNS+coculture+system%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Distinct stages of myelination regulated by gamma-secretase and astrocytes in a rapidly myelinating CNS coculture system.</a> Neuron. 60, 555-55 (2008).</li>
<li>Svenningsen, A. F., Shan, W. ei-S. ong, Colman, D. avidR., Pedraza, L. iliana <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rapid+method+for+culturing+embryonic+neuron-glial+cell+cocultures%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+Neuroscience+Research%22%5BJournal%5D)">Rapid method for culturing embryonic neuron-glial cell cocultures.</a> Journal of Neuroscience Research. 72, 565-56 (2003).</li>
</ol>

早期研究报道，在旋转介导的悬浮聚集体培养中可形成突触和成熟的髓鞘1。本文所述的中枢神经系统（CNS）聚集体培养系统结合了多能前体细胞在三维聚集体中的无血清生长特性与传统二维培养的便利性，便于在体外分析细胞的发育、迁移和分化过程。in vitro。该系统可进行修改，用于神经前体细胞研究以及神经元-胶质细胞相互作用的探讨。例如，可将遗传修饰的细胞（如少突胶质细胞前体细胞）2加入聚集体培养中。也可研究小胶质细胞和巨噬细胞等免疫细胞或各种试剂对神经元和胶质细胞发育与分化的影响。最近，纯化的视网膜神经节细胞再聚集体已被用于在不含其他细胞的条件下与少突胶质细胞共培养，以研究中枢神经系统的髓鞘形成3。与先前报道一致4，Matrigel在促进细胞黏附、加速 neurite（神经突）生长及胶质细胞分化方面优于多聚赖氨酸（PDL）。因此，本实验方案中采用Matrigel作为细胞聚集体的基质。

大鼠脑组织聚集体培养物的制备用于神经元与胶质细胞发育研究

Preparation of Rat Brain Aggregate Cultures for Neuron and Glia Development Studies

一种能够重现中枢神经系统（CNS）前体细胞发育并分化为成熟神经元和胶质细胞的体外系统，将为神经科学家研究轴突-胶质相互作用、多能前体细胞的特性与分化，以及少突胶质细胞谱系在细胞和分子水平的发育进程提供强有力的平台。本文介绍一种源自胚胎大鼠前脑的中枢神经系统聚集体培养系统，该系统可在无血清培养基中维持培养达3-4周，本实验室将其作为研究神经元-胶质细胞相互作用及中枢神经系统髓鞘形成的模型。本视频将演示如何从E16大鼠脑组织中分离并培养此类中枢神经系统聚集体。此外，通过同一脑组织解剖操作，还可便捷地获得高度富集的常规解离神经元培养物，用于中枢神经系统神经元的多种研究，或用于与其他细胞的共培养实验。

本文描述了一种胚胎大鼠脑组织聚集体培养体系的实验方案。聚集体中的多能前体细胞可发育并分化为神经元、星形胶质细胞和少突胶质细胞。

一种体外系统，可重现中枢神经系统（CNS）中前体细胞发育并分化为成熟神经元和胶质细胞的过程……

我们介绍一种用于培养中枢神经系统神经前体细胞的系统，这些细胞在发育过程中会分化为成熟的神经元和胶质细胞。该实验流程始于分离4个E16大鼠胚胎的脑组织，并用胰蛋白酶进行消化。将组织处理成单细胞悬液，经过滤、计数后，接种于六孔板中。将孔板中的细胞每天轻柔重悬一次，持续两到三天，以促进聚集体形成。随后收集聚集体，通过200微米孔径的滤网筛分，并通过洗涤去除小团块和细胞碎片。最后，对聚集体进行计数，并接种至包被有Matrigel的盖玻片上。大家好，我是来自德克萨斯农工大学兽医综合生物科学系约翰·L博士实验室的Coto。今天我们将向您展示一种脑类器官培养的方法。我们在三级实验室中使用该方法研究内皮细胞谱系、细胞发育以及细胞间的相互作用。那么我们开始吧。在开始之前，请准备好实验台上的灭菌工具、70%乙醇、用于操作的垫巾，以及盛有冰上放置的培养基的10厘米培养皿。在通风橱内，准备一台体视显微镜，配备冰上平台，并将数个盛有冰上解剖液的10厘米培养皿置于冰上。最后，配制好后续使用的各种溶液，并将铺板培养基在37摄氏度水浴中预热。本实验方案首先从Sprague dolly大鼠中获取胚胎发育第16天（E16）的胚胎。首先，根据所在机构动物护理与使用委员会批准的程序，对一只怀孕雌性大鼠实施安乐死。将已安乐死的大鼠置于尿垫上，并用酒精喷洒其腹部以进行清洁。接着，用镊子夹起腹部皮肤，另一只手使用剪刀仅剪开皮肤，将皮肤分开后，换用另一套灭菌的镊子和剪刀剪开肌肉层。接下来，取出子宫并转移至含有冰上预冷的解剖培养基的10厘米培养皿中。下一步在生物安全柜中使用显微解剖剪进行。小心地将每个胚胎从子宫中分离出来。现在可以开始收获并进行操作。处理胚胎脑组织时，从每个胚胎中取出脑组织，并将分离出的脑放入置于冰上、盛有解剖液的洁净10厘米培养皿中。在解剖显微镜下完成脑组织的解剖。去除中脑和后脑部分。使用精细镊子去除脑膜，将剩余的前脑组织转移至含有解剖液的50毫升离心管中。此时组织已准备好进行下一步操作。通过酶消化法解离细胞。在准备开始消化前，配制新鲜的丙烷和胰蛋白酶抑制剂过滤溶液，经灭菌后置于水浴中加热至37摄氏度。去除解剖后脑组织中多余的培养基。然后向50毫升离心管中加入4毫升已配制好的丙烷消化液。将离心管置于37°C水浴中，准确孵育5分钟。时间到达后，使用移液器移除丙烷溶液。接着，加入 5 mL 新鲜配制的胰蛋白酶抑制剂溶液，并将试管重新放入 37 °C 水浴中继续孵育 2 至 3 分钟。时间到达后，移除胰蛋白酶抑制剂溶液。用胰蛋白酶抑制剂溶液再重复孵育三次。最后一次去除胰蛋白酶抑制剂溶液后，向试管中加入 20 毫升温热的铺板培养基 pm。现在需要进行细胞重悬和洗涤。使用10毫升移液器反复吹打细胞约20至30次，直至所有细胞团块完全消失。然后在100 ×g下离心7分钟。此时，您的细胞应已彼此充分分离。七分钟后，弃去上清液，将沉淀重悬于 10 毫升铺板培养基中以洗涤细胞。然后再次离心。弃去上清液，并重复洗涤和离心步骤。第二次洗涤后进行下一步。将沉淀重悬于10毫升聚集培养基中，通过70微米细胞筛过滤细胞，最后使用血细胞计数板计数活细胞。现在，您可以开始让解离的脑细胞形成聚集体。计数后，将解离的细胞重悬于聚集体培养基中，密度为每毫升2×10⁶个细胞。将2毫升细胞悬液转移至未包被的6孔板的每个孔中。每天晚上将细胞轻轻重悬三次。使用 P1000 移液器操作后，细胞将在集落铺板当天开始形成聚集体。细胞培养三个晚上后，再次轻轻重悬细胞，并将细胞悬液通过 200 微米滤网转移到 50 毫升 Falcon 管中。让聚集体在离心管底部静置约三到五分钟。然后小心吸去上清液，加入培养基，轻柔重悬聚集体，并再次让其沉降。重复此操作数次。为了去除死细胞、单个细胞和碎片，使用显微镜检查上清液中是否仍含有未聚集成团的细胞和碎片。在充分洗涤聚集体后，将其轻轻重悬于相同的培养基中，并对聚集体进行计数以确定其浓度。随后将聚集体的密度调整至每50微升含25至30个聚集体左右。现在需要将聚集物接种到盖玻片上。将1000微升的聚集物悬液分装至2毫升的Eppendorf管中，由于聚集物容易沉降到管底，因此必须制备多管聚集物悬液以用于后续铺板。本步骤所用的盖玻片需预先涂布细胞培养基质Matrigel，并在37摄氏度下孵育过夜。在制备好总悬浮液的Alec watts后，将含有包被Matrigel的盖玻片的培养板从培养箱中取出。移除每个孔中的溶液，用预热的PBS洗涤盖玻片，然后用DD H2O洗涤。现在可以进行聚集体接种，将聚集体接种到盖玻片上。轻轻颠倒聚集体悬液管以混匀并使聚集体均匀分布。然后取50 µL聚集体悬液加入每张盖玻片的中央。轻轻将培养板放回培养箱，避免进一步干扰，以使聚集体均匀附着在盖玻片上。聚集体的密度至关重要，若聚集体之间距离过近或接种密度过高，在初始接种后四到六小时的生长过程中，它们容易相互融合。向每个孔中加入 500 µL 培养基。为了维持聚集体培养，每三到四天更换一半的培养基。更换培养基时，应沿培养孔的侧壁缓慢加入，以避免扰动聚集体。在聚集体附着于盖玻片数小时后，即可观察到从聚集体中延伸出的神经突起。 在前两周内，轴突迅速生长，并在类器官之间形成丰富的连接。胶质前体细胞从类器官向外呈放射状迁移，并随时间推移分化为星形胶质细胞和成熟的少突胶质细胞。我们刚刚向您展示了如何培养脑类器官。进行此操作时，重要的是要正确估算容量，并均匀地观察聚集体。就是这样。感谢观看，祝您的实验顺利。

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科研

JoVE Journal

Biology

生物学

制备大鼠脑组织神经元和神经胶质发展研究总结文化

本文提供了一种在胶质细胞饲养层存在下培养大鼠皮层神经元的实验方案。培养的神经元可建立极性并形成突触，且可将神经元与胶质细胞分离，用于多种实验应用，如电生理学、钙成像、细胞存活率检测、免疫细胞化学以及RNA/DNA/蛋白质提取。...

原代大鼠皮层神经元与胶质细胞的双层共培养

从大脑复杂的细胞异质性中分离原代小胶质细胞，对于研究其在生理和病理条件下的作用至关重要。本方案描述了一种机械分离与混合细胞培养技术，可获得高产量、高纯度且具有活性的原代小胶质细胞 体外...

从新生大鼠脑组织的混合胶质细胞培养物中分离原代小胶质细胞

我们介绍一种从啮齿类动物胚胎中快速分离和培养海马及皮层神经元的方法。该方案使我们能够开展需要近乎纯化神经元培养的实验。...

大鼠胚胎神经细胞的分离与培养：一种快速方案

本视频展示了一种建立胶质细胞三维培养的技术。将来源于大鼠脑的胶质细胞包埋在含有细胞外基质成分的光交联聚合物基质中。在培养基中孵育后，胶质细胞在支撑基质内增殖，形成三维培养体系。...

建立大鼠脑源性胶质细胞的三维培养

本研究的目的是验证一种方法的可重复性 体外...

建立一个 体外 大鼠血脑屏障（BBB）模型：重点关注BBB的不可渗透性与受体介导的转运

我们描述了对新生小鼠进行标记和基因分型以及从中建立原代神经元培养物的实验步骤。该基因分型方法快速、高效且可靠，可实现核酸的自动化提取。这对于新生期致死的小鼠及其培养物尤其重要，因为这些实验要求在培养前完成基因分型。...

动物快速基因分型及脑神经元原代培养的建立

本文描述了一种建立共培养体系的方案，该体系包含由诱导性多能干细胞（iPSCs）衍生的神经元、原代皮层神经元以及星形胶质细胞。该共培养系统可用于检测新生成的、由iPSCs衍生的神经元与已存在的表达光敏通道蛋白-2（channelrhodopsin-2）的皮层神经元之间突触连接和神经回路的形成。...

一种用于评估共培养系统中神经元连接形成的光遗传学方法

我们修改并实施了一项先前发表的方案，该方案描述了将人 诱导 多能干细胞（hiPSCs）快速、可重复且高效地分化为兴奋性皮层神经元的方法12。具体而言，我们的改进可实现对神经元细胞密度的控制，并可在微电极阵列上应用，以在神经网络水平上检测其电生理特性。...

利用微电极阵列测量网络活性的诱导多能干细胞快速神经元分化

本文介绍了在胶质细胞单层上倒置培养于玻璃盖玻片的低密度原代海马神经元的培养方案。神经元层与胶质细胞层之间由石蜡蜡珠分隔。通过该方法培养的神经元适用于高分辨率光学成像和功能检测。...

低密度原代海马神经元培养

本文描述了从大鼠颈上神经节中分离和培养胚胎期交感神经元的方法。同时提供了用于免疫细胞化学染色以及制备神经元提取物以进行质谱分析的详细实验方案。...

从胚胎颈上神经节培养大鼠交感神经元用于形态学与蛋白质组学分析

本文介绍一种利用特定培养基的简单方法，可从胚胎皮层高效且可重复地建立富含神经元和星形胶质细胞的培养物，或神经元-胶质细胞共培养物。...

一种用于研究缺血过程中神经元-胶质细胞相互作用的细胞培养模型

学习大鼠胚胎脑组织聚集体培养技术，用于研究中枢神经系统神经祖细胞分化为神经元和胶质细胞的发育过程。该方法为神经科学和发育生物学研究提供了可靠的体外模型。

大鼠脑组织聚集体培养物的制备用于神经元与胶质细胞发育研究

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