Name: 이미징에서 스텐트 - Restenosis : 저렴한, 신뢰성 및 빠른 잠복기 모델 (동영상) | JoVE Journal
Uploaded: 2009-09-14T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 46 s
Description: 학습하세요 스텐트 이식술 및 OCT 영상화를 이용한 쥐 모델에서의 스텐트 내 재협착 연구 방법을. 이 저렴하고 신뢰성 높은 전임상 모델은 심혈관 중재 치료 합병증 연구에 필수적입니다.

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기금 현재의 연구는 의학 스탠포드 유니버 시티 스쿨, 스탠포드, CA, 미국에서 Cardiothoracic 수술의학과에 대한 포크 연구 기금에 의해 지원되었다. 토바 이어스 Deuse는 독일 심장 학회의 연구 보조금에 의해 투자되었다. 소냐 Schrepfer는 독일 Forschungsgemeinschaft (DFG) (SCHR992/2-1)에서 연구 부여를 받았습니다.

대동맥 스텐트 배포 <ol><li> 5백50-6백g 무게 남자 스프 라그 - 돌리 쥐가 할렌 (인디애나 폴리스, 인디애나, 미국)에서 구입할 수 있습니다. 일반적인 조건 하에서 하우스 쥐, 먹이 표준 쥐 차우와 물 광고 libitum. </li><li> 로 쥐를 마취 isoflurane (2 %)과 케타민 (25 MG / kg). 미세한보기에서 infrarenal 대동맥을 노출 미니 개복술 상단 중간을 수행합니다. </li><li> 신장 동맥의 수준에서 아래 분기점으로, 주변 조직에서 복부 대동맥을 절개하다. 주의 : IVC에서 대동맥을 절개하다 필요 없어. </li><li> 대동맥 혈액 흐름을 중지 microclamps를 사용합니다. 말초 클램프 다음 먼저 근위 클램프를 놓으십시오. </li><li> 작은 가로 절개로 대동맥을 열고 헤파린 (200 세대)과 대동맥을 플러시. </li><li> 대동맥 내피는 2 프랑​​스어 포가티 동맥 embolectomy의 카테터 (박스터 헬스케어, 디어 필드, IL, 미국)의 통로로 denuded 있습니다. </li><li> 모든 인간의 스텐트 8mm와 길이 12mm 사이의 크기, 직경 2.5mm - 3mm를 사용합니다. 주의 : 스텐 트의 직경은 사전 및 사후 스텐트 협착을 피하기 위해 10 분의 1 이상으로 혈관 직경을 초과해서는 안됩니다. 주의 : 동일한 연구 내에 스텐트 길이를 변경하지 마십시오. </li><li> 원하는 직경을 달성하기 위해 적절한 풍선 압력을 사용하여 스텐 트를 배포합니다. </li><li> 작은 대동맥 절개는 9-0 Prolene의 봉합 (Ethicon, Norderstedt, 독일)와 닫힙니다. </li><li> 4-0 Vicryl 실행 봉합 (Ethicon, Norderstedt, 독일)와 레이어의 복부 절개를 닫습니다. 피부 봉합은 아직도 Viacryl를 사용해도 7~14일 이내에 제거하여야한다. </li><li> 동물은 식수 7 일간 intraoperatively Carprofen (6mg/KG) 및 Metamizol를 받았다. </li></ol> 광학 결맞음 Tomography (-10 월) 이미징 OCT 이미지는 M2 OCT 이미징 시스템 (LightLab 이미징 주식 회사, 포드, MA, 미국)와 함께 얻을 수 있습니다. ImageWire은 조직에 빛을 전달하고 신호를 수집하기 위해 이미징 프로브입니다. ImageWire는 0.006로 구성되어 있습니다 &quot;(0.15 ㎜) 광섬유 코어 0.019 최대 OD와 칼집 안에&quot;(0.48 mm). <ol><li> 로 쥐를 마취 isoflurane (2 %)과 케타민 (25 MG / kg). 미세한보기에서 infrarenal 대동맥을 폭로하기 위해 중간 다시 실행 개복술을 수행합니다. </li><li> 근위 대동맥과 장골의 동맥을 모두 클램프. </li><li> 대동맥의 말초 끝에 가로 arteriotomy을 수행, 1ml PBS는 28G 카테터를 이용한 플러시와 OCT의 카테터를 삽입하고 대동맥에 그것을 전달합니다. </li><li> 전동 pullback OCT 영상은 초당 1.0 mm의 pullback 속도로 수행됩니다. </li><li> 초당 15 프레임의 영상을 취득, 이미지는 색상 룩업 테이블로 표시되고 디지털로 저장이됩니다. </li><li> arteriotomy를 닫습니다. </li><li> 4-0 Vicryl 실행 봉합 (Ethicon, Norderstedt, 독일)와 복부 및 incisions를 닫습니다. 피부 봉합은 아직도 Viacryl를 사용해도 7~14일 이내에 제거하여야한다. </li><li> 최대 neointima 형성은 스텐트 이식 후 6 주 내에 개발할 것입니다. </li></ol> OCT 이미지 분석 OCT 측정은 쥐를 기반 인터페이스와 LightLab OCT 이미징 독점 소프트웨어를 사용하여 수행됩니다. <ol><li> 이 시스템의 표준 교정 기법입니다 OCT 이미징 와이어의 반사에 시스템을 보정합니다. </li><li> 추적 루멘 각 1.0 mm 간격으로 수동으로 스텐트 교차 단면 영역 (CSA). </li><li> 루멘 CSA에서 빼는 스텐트 CSA와 같은 상패 크로스 단면적을 계산합니다. 스텐트 CSA (%)로 나누어 상패의 CSA 등 %의 플라크 영역을 계산합니다. 평균 퍼센트 플라크 영역을 계산합니다. </li></ol> OCT 기술의 검증 OCT 결과는 조직 병리학 (그림 1)과 잘 상관 관계. 위에서 설명한대로 Histologic 상패의 CSAs이 계산됩니다. 조직학은 스핀들 모양의 세포의 고밀도 단 몇 mononuclear 염증 세포와 내막 증식을 보여줍니다. 육주 후, stents 완전히 neointimal 과립 조직으로 덮여 있으며, 상패의 CSA가 1.3 ± 0.4 mm 대책 2 2.5mm 스텐트 인치 <img src="/files/ftp_upload/1346/1346fig1tmb.jpg" border="0" /> 그림 1 : OCT (A)와 histological (B, 배율 16X) 배포 후 스텐트 6주 이미지. OCT 이미지에서 얻은 상패의 CSA 결과는 조직 병리학과 잘 상관 관계. 하시기 바랍니다 <a href="https://www.jove.com/files/ftp_upload/1346/1346fig1.jpg">여기를 클릭</a> 그림 1의 더 큰 버전을 볼 수 있습니다.

<ol><li>Langeveld, B., Roks, A. J. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Commentary%3A+rat+restenosis+models%3A+means+for+thorough+restenosis+research%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+endovascular+therapy%22%5BJournal%5D)">Commentary: rat restenosis models: means for thorough restenosis research.</a> Journal of endovascular therapy. 12 (3), 343-345 (2005).</li>
<li>Roguin, A., Grenadier, E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Stent-based+percutaneous+coronary+interventions+in+small+coronary+arteries%5BTitle%5D)+AND+%22Acute+Card+Care%22%5BJournal%5D)">Stent-based percutaneous coronary interventions in small coronary arteries.</a> Acute Card Care. 8, 70-74 (2006).</li>
<li>Post, M. J., Waltenberger, J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Small+Is+Beautiful%3A+A+Miniature+Stent+Model%5BTitle%5D)+AND+%22Arterioscler.+Thromb.+Vasc.+Biol%22%5BJournal%5D)">Small Is Beautiful: A Miniature Stent Model.</a> Arterioscler. Thromb. Vasc. Biol. 27, 701-702 (2007).</li>
<li>Langeveld, B., Roks, A. J. M., Tio, R. A., Boven, A. J. van, Want, J. J. L. vander, Henning, R. H. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+abdominal+aorta+stenting%3A+a+new+and+reliable+small+animal+model+for+in-stent+restenosis%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+vascular+research%22%5BJournal%5D)">Rat abdominal aorta stenting: a new and reliable small animal model for in-stent restenosis.</a> Journal of vascular research. 41 (5), 377-386 (2004).</li>
<li>Lowe, H. C., Chesterman, C. N., Khachigian, L. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Rat+aortic+stenting%3A+toward+a+simple+model+of+in-stent+restenosis%5BTitle%5D)+AND+%22The+American+journal+of+cardiology%22%5BJournal%5D)">Rat aortic stenting: toward a simple model of in-stent restenosis.</a> The American journal of cardiology. 88 (6), 720-721 (2001).</li>
<li>Groenewegen, R., Harst, R. vander, Roks, R., Buikema, R., Zijlstra, R., Gilst, R. van <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Effects+of+angiotensin+II+and+angiotensin+II+type+1+receptor+blockade+on+neointimal+formation+after+stent+implantation%5BTitle%5D)+AND+%22International+Journal+of+Cardiology%22%5BJournal%5D)">Effects of angiotensin II and angiotensin II type 1 receptor blockade on neointimal formation after stent implantation.</a> International Journal of Cardiology. , (2007).</li>
<li>de Smet, B. J. G. L., Zijlstra, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((A+look+at+drug+eluting+stents+with+optical+coherence+tomography%5BTitle%5D)+AND+%22European+Heart+Journal%22%5BJournal%5D)">A look at drug eluting stents with optical coherence tomography.</a> European Heart Journal. 28 (8), 918-919 (2007).</li>
<li>Pinto, T. L., Waksman, R. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Clinical+applications+of+optical+coherence+tomography%5BTitle%5D)+AND+%22Journal+of+interventional+cardiology%22%5BJournal%5D)">Clinical applications of optical coherence tomography.</a> Journal of interventional cardiology. 19 (6), 566-573 (2006).</li>
<li>Matsumoto, D., Shite, J., Shinke, T., Otake, H., Tanino, Y., Ogasawara, D. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neointimal+coverage+of+sirolimus-eluting+stents+at+6-month+follow-up%3A+evaluated+by+optical+coherence+tomography%5BTitle%5D)+AND+%22European+Heart+Journal%22%5BJournal%5D)">Neointimal coverage of sirolimus-eluting stents at 6-month follow-up: evaluated by optical coherence tomography.</a> European Heart Journal. 28 (8), 961-967 (2007).</li>
<li>Kawase, Y., Suzuki, Y., Ikeno, F., Yoneyama, R., Hoshino, K., Ly, H. Q. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Comparison+of+nonuniform+rotational+distortion+between+mechanical+IVUS+and+OCT+using+a+phantom+model.+Ultrasound+in+medicine+%26amp%3B+biology%5BTitle%5D)+AND+%22%22%5BJournal%5D)">Comparison of nonuniform rotational distortion between mechanical IVUS and OCT using a phantom model. Ultrasound in medicine &amp; biology.</a> 33 (1), 67-73 (2007).</li>
</ol>

모든 쥐가 표준 온도, 습도, 조명 조건 하에서 스탠포드 대학 메디컬 센터 (스탠포드, CA)에서 동물 보호 시설에서 지내게되었고, 쥐 차우 물을 광고 libitum을 제공했다. 조사는 건강의 미국 국립 연구소 (NIH 간행물 번호 85-23, 1996 개정)에 의해 출판 실험실 동물의 관리 및 사용에 대한 가이드를 맞췄나. 연구 프로토콜은 실험실 동물 관리에 행정 패널, 스탠포드 대학에 의해 승인되었습니다.

토끼 장골의 동맥과 돼지 관상 동맥 모델은 가장 자주 스텐트 배치 1, 방사선 및 수술 장비가 필요의 조합에 사용되지만, 동물 주택 용량은 제한하고, 구입의 비용은 높다이다. 쥐 스텐트 모델의 제한 쥐가을 위해 특별히 설계된 stents의 사용에 필요한, 더 많은 혈관 부상 2 결과 금속 대 동맥 비율 및 혈전증 3 인위적으로 높은 발생률이다. 쥐 stenting 모델은 단순하고 저렴, 신속, 정확한 잠복기 모델 4. 로우 외하여 쥐의 대동맥의 직접적인 stenting의 초기보고 이후. 인 스텐트 restenosis의 pathophysiology의 평가에 대해이 모델의 5, 가능성 및 적합성 철저하게 5,6을 보여왔다. 쥐 대동맥의 직경은 physiologic 선박 구조의 중단없이 상업적으로 이용 가능한 stents의 확장을 허용하는 충분한 것입니다. 그것은 그들이 토끼 및 돼지에서 할 같은 혈전 형성, 염증, 그리고 SMC 확산으로 pathophysiological 메커니즘은,이 쥐 모델에서 개발하는 것으로 나타났습니다. 따라서 이러한 모델은 restenosis의 실제 과정의 좋은 표현입니다. OCT 고해상도 이미징 기술은 내막 증식을 평가하는 데 유용합니다. 침투 깊이는 1.5-2 mm이지만, 그 해상도가 intravascular 초음파 (IVUS) 7,8의보다 큰 크기의 순서입니다. IVUS와 OCT를 비교 여러 연구 OCT 현재 스텐트 이식 후 8-10 neointimal 증식을 평가하는 기본 기술입니다 결론을 내린다. 특히 소형 선박 직경과 작은 동물로, 10의 높은 해상도가 그것을 restenosis의 평가에 가장 적합한 이미징 양상을 렌더링. 요약이 비디오는 (1) 쥐 대동맥 stenting이 쉽게 가능합니다 (2) 쥐의 복부 대동맥의 stenting 상업 생산 stents를 테스트하기에 적합하며 (3) OCT 이미지가 - 스텐트의 길이 모니터링을위한 정확하고 우아한 기법을 알게됩니다 restenosis.

이미징에서 스텐트 - restenosis : 저렴한, 신뢰성 및 빠른 잠복기 모델

Imaging In-Stent Restenosis: An Inexpensive, Reliable, and Rapid Preclinical Model

restenosis의 잠복기 모델 인 스텐트 restenosis로 연결하고 기존 및 미래의 약물 eluting stents의를 최적화하는 pathophysiological 프로세스를 해명하기 위해 필수적입니다. 항체 및 유전자 변형 및 녹아웃 종자의 다양한 쥐가에서 사용할 수 있습니다. 따라서, 쥐에서 인 - 스텐트 restenosis을위한 모델은 pathobiological 및 pathophysiological 연구 편리한 것입니다. 이 비디오에서는, 우리는 전체 절차를 제시하고 높은 처리량을 스텐트 연구에 적합한 쥐를 스텐트 모델 피트가 - 폭포. 우리는 스텐트 전개의 수술 절차와 OCT의 가장 우아한 기술 (광학 결맞음의 Tomography)를 사용 - 스텐트 restenosis의 평가를 표시합니다. 이 기술은 플라크의 CSAs 평가에서 높은 정확도를 제공합니다 (크로스 섹션 영역)와 특별하고 시간이 소요될 삽입과 sectioning 기술을 필요로 histological 섹션과 잘 연결합니다. OCT 영상 추가 조직학을 사용하여 한 시간 스냅샷에 비해 동일한 동물 사이에서 - 스텐트 restenosis의 발전 세로 모니터링을 허용합니다.

이 비디오에서 - 스텐트 restenosis 개발 pathobiological과 pathophysiological 프로세스를 연구하기 위해 잠복기 저렴하고 안정적​​인 모델을 사용하는 방법을 보여줍니다. OCT (광학 결맞음 Tomography)와 OCT 이미지 분석을 사용하여 생체내 모니터링 세로도 증명하고 있습니다.

이미징에서 스텐트 - Restenosis : 저렴한, 신뢰성 및 빠른 잠복기 모델

재협착의 전임상 모델은 스텐트 내 재협착을 유발하는 병태생리학적 과정을 밝혀내고, 기존의 치료법을 최적화하며 ... 하는 데 필수적입니다.

안녕하세요, 저는 스탠포드 대학교의 줄기세포 이식 및 이식 면역학 연구실의 Schwab 박사입니다. 저는 Dee 박사입니다. 센트럴 대학교 흉부외과에서 근무하고 있습니다.저는 스탠퍼드 대학교 심혈관 의학과의 Dr.Keno입니다. 오늘은 스텐트 삽입술 절차를 보여드리겠습니다. 또한, 생체 내 영상 촬영을 위한 새로운 기술인 OCT를 시연하겠습니다.저희 연구실에서는 인스턴트 협착의 발달을 연구하기 위해 비용이 저렴하고 신뢰할 수 있으며 신속한 이 전임상 모델을 사용합니다. 그럼 시작하겠습니다. 이 절차를 시작하려면, 피스톨에 saline 10 ccs를 채우고 공기를 제거한 후 잠가서 스텐트를 준비하십시오.다음으로, 스텐트 카테터와 피스톨을 연결합니다. 스텐트가 준비되면, 수컷 Sprague Dawley 랫드에 isoflurane을 투여하여 마취시키고 상복부 정중 절개를 통해 신하대동맥을 노출시킵니다. 다음 단계들은 현미경 시야 하에서 수행됩니다.신동맥 수준부터 분기점까지 주변 조직으로부터 복부 대동맥을 박리합니다. 하대정맥으로부터 대동맥을 박리할 필요는 없다는 점에 유의하십시오. 마이크로 클램프를 사용하여 근위부 클램프를 먼저 배치함으로써 대동맥 혈류를 차단합니다.원위부 클램프 쪽을 따라 분지들을 개별적으로 클램핑합니다. 다음으로, 근위부 클램프와 너무 가깝지 않은 위치에 작은 횡절개를 넣어 대동맥을 개방하고 헤파린으로 세척합니다. 대동맥이 개방되면, 2 French foggerty 동맥 색전 제거 카테터를 통과시켜 대동맥 내피를 제거합니다.스텐트에서 플라스틱 캡을 제거하고 스텐트를 대동맥 위치로 삽입하여 전개합니다. 동일한 연구 내에서는 스텐트 길이를 변경해서는 안 되며, 사용하는 스텐트에 따라 적절한 풍선 압력을 가하여 원하는 직경을 구현하십시오. 스텐트 전후의 협착을 방지하기 위해, 스텐트의 직경이 혈관 직경보다 10%를 초과해서는 안 됩니다. 스텐트 전개가 완료되면 헤파린으로 세척하십시오.스텐트 배치가 완료되었으므로, 현미경 배율을 10x로 전환합니다. 대동맥의 작은 절개 부위를 9.0 proline 연속 봉합사로 폐쇄합니다. 마지막으로, 클램프를 열고 복부 절개 부위를 3-0 Vicryl 연속 봉합사로 층별 폐쇄합니다.광간섭 단층 촬영(optical coherence tomography) 영상을 얻기 위해, 신장 하부 대동맥과 근위부 대동맥 및 양측 장골동맥을 노출시키기 위한 정중앙 재개복술을 시행하고 클램프로 고정합니다. 그 후, 대동맥 횡단 절개술을 시행합니다. 다음으로, OCT 카테터를 삽입하여 대동맥 내부로 진입시킵니다.이제 빛이 근위부에서 원위부로 이동하고 있습니다. 보시다시피, 여기서 바로 확인하실 수 있습니다. 네, 보이네요. 정말 멋지군요.카테터를 삽입한 후, 이제 OCT 영상 촬영을 시작할 수 있습니다. 대동맥을 식염수로 세척하고 전동 pullback을 실시합니다. OCT 영상 촬영은 초당 1mm의 pullback 속도로 수행합니다.이미지는 초당 15프레임으로 획득합니다. 획득한 이미지는 컬러 룩업 테이블과 함께 표시되며 디지털로 보관됩니다. 이미지 획득이 완료되면, 9.0 proline 연속 봉합사를 사용하여 동맥 절개 부위를 폐쇄합니다.마지막으로, 3-0 Vicryl 연속 봉합사를 사용하여 복부 절개 부위를 봉합합니다. OCT 영상을 모두 얻었으므로, 쥐 기반 인터페이스가 적용된 LightLab OCT 이미징 전용 소프트웨어를 사용하여 영상 분석을 시작할 수 있습니다. 먼저 OCT 이미징 와이어의 반사 값으로 시스템을 보정하십시오.다음으로, 계산을 위해 1mm 간격으로 루멘과 스텐트의 단면적을 수동으로 추적합니다. 플라크 단면적은 스텐트 단면적에서 루멘 단면적을 빼서 계산합니다. 플라크 면적 백분율은 플라크 단면적을 스텐트 단면적으로 나누어 계산합니다.OCT 결과는 조직병리학적 조직 플라그와 잘 일치합니다. 단면적은 설명된 방법대로 계산합니다. 스텐트 배치 6주 후의 조직학적 소견에서는 방추형 세포의 밀도가 높고 단핵 염증 세포는 소수만 관찰되는 내막 증식증이 나타납니다.6주 후의 세포 상태를 보면, 스텐트가 신내막 과증식 조직으로 완전히 덮여 있으며, 2.5 mm 스텐트에서 플라그의 단면적은 1.3 ± 0.4 mm²로 측정됩니다. 지금까지 인간 스텐트를 돼지 경동맥에 이식하는 방법과 OCT를 이용해 생체 내 협착 진행 과정을 모니터링하는 방법을 보여드렸습니다.이 절차를 수행할 때, 복부 AAR의 크기가 인간 관상동맥 및 스텐트 크기와 일치하도록 500g 이상의 돼지를 사용하십시오. 캔 실험실 현상(can lab phenomenon)과 전개 시 혈관 손상을 피해야 함을 기억하십시오. 이것으로 모든 설명을 마칩니다.시청해 주셔서 감사드리며, 귀하의 실험에 좋은 결과가 있기를 바랍니다.

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연구

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생물학

이 비디오는 immunodeficient 쥐 모델에서 인간의 함대 (IMA)를 사용하여 스텐 트를 배포 후 내막 증식증의 발전을 연구하는 모델을 보여줍니다.

인간 내유 동맥 (IMA) 이식과 Stenting : 인 Restenosis 스텐 트의 개발을 공부하는 인간 모델

스텐 트 유도된 동맥 변형 배포판은 광학 표면 스트레인 측정 시스템을 사용하여 특징. 이러한 시각화 기술은 호스트 혈관에 스텐 트 주입의 영향에 대한 통찰력을 얻기 위해 사용됩니다.

선박의 스텐 트를 배포하는 동안 벽 역학 모니터링

마우스 경동맥 동맥 스텐트 시술의 모델이 설명되어 있습니다. 다른 유사한 방법에 비해,이 절차를 편리하게 다른 약물 용출 스텐트 재 협착의 분자 메커니즘 혈관 벽의 반응에서 공부 할 수있는 가능성을 제공, 매우 빠른, 간단하고 액세스 할 수 있습니다.

재 협착의 연구에 대한 경동맥 스텐트 시술의 쥐과 모형

관상동맥 혈류 예비력(CFR)은 심근 산소 요구량 평가 및 심혈관 위험 평가에 유용합니다. 이 연구는 대동맥 밴딩의 실험적 압력 과부하 하에서 마우스의 관상 동맥에서 측정된 CFR의 변화를 종적으로 모니터링하기 위한 단계별 경흉부 도플러 심초음파 검사(TTDE) 방법을 확립합니다.

마우스의 압력 과부하 모델을 사용하여 관상 동맥 흐름 및 관상 동맥 흐름 준비 제도 이사회의 초음파를 바탕으로 평가

심혈관 수술 (바이 패스 수술, 혈관 성형술 또는 스텐트 삽입) 후의 재 협착은 이러한 과정의 내구성을 감소시키는 중요한 문제입니다. 이상적인 치료법은 내피 세포의 재생을 촉진시키면서 평활근 세포 (VSMC)의 증식을 억제합니다. 우리는 생체 내에서 VSMC의 증식과 내피 기능의 동시 평가를위한 모델을 설명합니다.

소뇌 대동맥 파열 상해 : 효율적<em&gt; In Vivo</em&gt; 평활근 세포 증식과 내피 기능 모델

우리는 허혈성 심장 질환의 폐쇄 가슴 돼지 모델을 만들기 위해 3 차원 인쇄 관상 동맥 임플란트의 경피 적 전달을위한 새로운 비용 효율적이고 효율적인 기술을 설명합니다. 임플란트는 높은 성공률을 가진 어머니와 자식 확장 카테터를 사용하여 제자리에 고정되었습니다.

허혈성 심장 질환의 돼지 모델에 3D 인쇄 관상 동맥 협착 임플란트의 배포를위한 새로운 경피적 인 접근 방식

이 프로토콜은 트랜스 대퇴 액세스를 사용하여 apoE-/- 배경을 가진 쥐의 복부 대동맥에 인간 관상 동맥 스텐트를 이식하는 것을 설명합니다. 다른 동물 모델과 비교하여 뮤린 모델은 높은 처리량, 재현성, 취급 및 하우징의 용이성 및 광범위한 분자 마커의 장점을 가지고 있습니다.

대퇴동맥 접근을 이용한 쥐 복부 대동맥에 인간 크기의 관상 동맥 스텐트를 이식

이 프로토콜은 돼지의 상행 대동맥 밴딩에 대한 최소 침습 수술 절차를 설명합니다.

돼지 대동맥 협착증의 최소 침습 모델

이 비디오에서 우리는 플라즈마 결합하지 않고 신경 세포 microfluidic 장치를 사용하는 방법을 보여줍니다.

Microfluidic 장치의 저렴한 제작에 대한 PDMS의 비 플라즈마 본딩

분석 초원 심 분리기 (AUC)은 샘플 셀이 샘플과 참조 버퍼와 실험을하는 동안을 보유하고 있으며 고진공 및 60,000 RPM으로 로터 속도 최대 노출됩니다. 이 동영상은 AUC 실험이 매우 중요한 구성 요소의 조립, 로딩 및 정렬에 필요한 세부 사항에 대한 엄격한 관심을 입증합니다.

조립, 로딩 및 분석 초원 심 분리기 샘플 셀 정렬

학습하세요 스텐트 이식술 및 OCT 영상화를 이용한 쥐 모델에서의 스텐트 내 재협착 연구 방법을. 이 저렴하고 신뢰성 높은 전임상 모델은 심혈관 중재 치료 합병증 연구에 필수적입니다.

이미징에서 스텐트 - Restenosis : 저렴한, 신뢰성 및 빠른 잠복기 모델

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