Name: 临床试验和脊髓去除在肌萎缩性侧索硬化症的小鼠模型（ALS） (视频) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-03-17T14:00:00.000+00:00
Duration: 12 min 35 s
Description: 学习肌萎缩性侧索硬化症小鼠模型的临床测试与脊髓制备方法。本视频演示转棒测试和悬挂握力测试评估运动功能，并详细展示脊髓切除技术用于免疫组织学分析。

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LT 已获得哥廷根大学医学中心研究资助计划（Forschungsförderungsprogramm）的资助。PL 和 MB 受德国研究基金会（DFG）哥廷根分子脑生理学研究中心（CMPB）的支持。作者感谢 Lars Tatenhorst 博士在视频拍摄方面的协助，以及 Birgit Liebau 在音频和视频编辑方面的帮助。

实验动物购自杰克逊实验室（Jackson Laboratory，货号 # 002726）1。对动物进行临床评分，并进行运动功能检测（转棒实验）和肌肉力量检测（悬挂丝线实验）。所有这些实验操作，以及后续为制备脊髓而实施的动物安乐死，均严格遵循当地关于动物实验规范操作的指导原则进行。
1. 临床评分
除了检测小鼠体重外，还采用以下4分制评分系统评估其运动功能障碍的迹象2：
4分：正常（无运动功能障碍迹象）
3分：尾巴悬吊时可见后肢震颤
2 分：存在步态异常
1 分：至少一条后肢出现拖拽
0分：对称性瘫痪，无法自行翻身，或体重减轻超过最大体重的20%；出现此情况时，动物应立即实施安乐死，实验终止
2. 运动功能与肌肉力量测试
悬挂金属丝
该实验用于评估肌肉力量3, 4。所有动物均在转棒实验后至少一至两天进行此项测试。将每只小鼠置于自制的金属丝网盖上，网孔间距为0.8 cm，随后小心地将网盖倒置，使其位于铺有垫料的底部上方60 cm处。在经过连续三次、每次至少180秒的训练后，开始测量小鼠的坠落潜伏期。每只小鼠最多进行三次尝试，每次尝试中其在倒置网盖上悬挂的最长时间不超过180秒，记录其中最长的一次悬挂时间。
转棒实验
采用 rotarod 装置（Ugo Basile，Comerio，意大利）评估运动协调性、平衡能力及运动学习能力3, 4。良好的表现需要高度的感覺運動協調能力。实验时应将仪器置于安静且无干扰的环境中，以避免对测试动物造成干扰性刺激。该装置由一台计算机控制的电机驱动旋转轴组成，设有五个通道，可同时测试五只小鼠。当小鼠跌落时，会触碰底部的塑料板，系统可自动检测跌落事件。在以 15 r.p.m. 恒定转速连续训练三次、每次至少持续 180 秒后，记录动物在旋转杆上保持不跌落的时间。每只动物进行三次测试，记录其中最长的不跌落潜伏期。选择 180 秒作为截止时间，是因为在此时间范围内可检测到运动协调性方面的大多数显著差异。
3. 脊髓制备
<ol class="lalpha">
 <li> 根据当地指南，通过二氧化碳（CO2）吸入法处死动物，并立即经心脏灌注磷酸盐缓冲液（PBS），随后灌注4%多聚甲醛溶液。 </li>
 <li> 为准备已处死小鼠的脊髓，将动物置于手术台上，并固定四肢于两侧，以充分暴露背部。 </li>
 <li> 使用70%乙醇溶液对解剖区域进行短暂清洗，以清洁表面并压平毛发。 </li>
 <li> 然后用锋利的手术刀沿正中线切开皮肤。为便于切割，需将皮肤向两侧拉紧。若需制备腿部肌肉，也需切开相应部位的皮肤。 </li>
 <li> 完成皮肤切口后，用镊子将皮肤向两侧拉开，以暴露其下方的浅筋膜组织。 </li>
 <li> 需去除颈部肌肉及项韧带，并小心分离。注意避免切得过深而损伤脊髓。可同时去除肩部肌肉，以更充分暴露脊柱。 </li>
 <li> 随后，从整个脊柱全长去除椎旁肌。 </li>
 <li> 为打开脊柱，需进行多节段椎板切除术。操作应从枕骨髁关节处的颅侧上端开始。 </li>
 <li> 可先松解前肢固定并过度伸展颈部，以便更顺利地切除第一椎体的椎板。操作时应避免接触已暴露的颈段脊髓，将椎板完整移除。 </li>
 <li> 使用斜角剪刀在两侧横断椎弓，再牵拉棘突，以逐节去除更多椎骨。应清除残留的椎骨侧部结构，以便后续完整取出脊髓。 </li>
 <li> 腰段脊髓的一个解剖学标志是膨大区，该结构在颈段脊髓中同样存在。 </li>
 <li> 完成整个脊髓的椎板切除术后，需确保切断所有腹侧神经根，并将脊髓从脑膜的硬脊膜中完全游离。 </li>
 <li> 随后在颅侧切断颈段脊髓，并开始取出脊髓组织。 </li>
 <li> 最终在远端马尾处切断脊髓，使其完全游离。 </li>
 <li> 最后，将脊髓置于后固定液（如4%多聚甲醛）中过夜，随后进行进一步处理。我们通常对脊髓进行冷冻切片，以用于免疫组织化学分析。 
   </li>
</ol>
4. 代表性结果
本视频文章的重点是脊髓组织制备技术。该技术是后续组织切片以及最终进行脊髓切片免疫组织化学分析的必要前提。作为最终结果的示例，本文展示了野生型（wt）小鼠和SOD G93A转基因（tg）小鼠腰段脊髓前角区域的免疫组织化学处理结果。运动神经元可通过抗ChAT一抗以及随后的Cy3二抗荧光标记进行识别。此外，还使用DAPI（4,6-二脒基-2-苯基吲哚）对细胞核进行了荧光复染（图1）。
<img src="/files/ftp_upload/3936/3936fig1.jpg" alt="显示 ChAT 和 DAPI 染色比较的前角组织荧光显微镜图像。" data-altupdatedat="1787630408000" data-alt="图 1"> 
图 1. 荧光显微照片显示了在 130 天龄的野生型（wt）（左侧）和 SOD G93A 转基因（tg）（右侧）小鼠腰段脊髓前角中，使用抗 ChAT 抗体（红色）对运动神经元进行免疫检测以及 DAPI（蓝色）对细胞核的复染结果。比例尺：40 μm。
由于SOD G93A小鼠的免疫组织化学分析并非本文的主要研究范围，建议参考最初描述这些转基因小鼠的原始文献以及近期研究治疗策略的相关文献以获取更多信息1, 5, 6。若需在免疫组织学层面区分治疗效果，应采用明确定义的定量评估算法，并辅以体视学分析软件（例如参见7）。

<ol><li>Gurney, M. E. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Motor+neuron+degeneration+in+mice+that+express+a+human+Cu%2C+Zn+superoxide+dismutase+mutation%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Motor neuron degeneration in mice that express a human Cu, Zn superoxide dismutase mutation.</a> Science. 264 (5166), 1772-1775 (1994).</li>
<li>Weydt, P. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Assessing+disease+onset+and+progression+in+the+SOD1+mouse+model+of+ALS%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroreport%22%5BJournal%5D)">Assessing disease onset and progression in the SOD1 mouse model of ALS.</a> Neuroreport. 14 (7), 1051-1054 (2003).</li>
<li>Crawley, J. N. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Behavioral+phenotyping+strategies+for+mutant+mice%5BTitle%5D)+AND+%22Neuron%22%5BJournal%5D)">Behavioral phenotyping strategies for mutant mice.</a> Neuron. 57 (6), 809-818 (2008).</li>
<li>Miana-Mena, F. J. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Optimal+methods+to+characterize+the+G93A+mouse+model+of+ALS%5BTitle%5D)+AND+%22Amyotroph.+Lateral+Scler.+Other+Motor+Neuron+Disord%22%5BJournal%5D)">Optimal methods to characterize the G93A mouse model of ALS.</a> Amyotroph. Lateral Scler. Other Motor Neuron Disord. 6 (1), 55-62 (2005).</li>
<li>Zhong, Z. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Activated+protein+C+therapy+slows+ALS-like+disease+in+mice+by+transcriptionally+inhibiting+SOD1+in+motor+neurons+and+microglia+cells%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Clin.+Invest%22%5BJournal%5D)">Activated protein C therapy slows ALS-like disease in mice by transcriptionally inhibiting SOD1 in motor neurons and microglia cells.</a> J. Clin. Invest. 119 (11), 3437-3449 (2009).</li>
<li>Pitzer, C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Granulocyte-colony+stimulating+factor+improves+outcome+in+a+mouse+model+of+amyotrophic+lateral+sclerosis%5BTitle%5D)+AND+%22Brain%22%5BJournal%5D)">Granulocyte-colony stimulating factor improves outcome in a mouse model of amyotrophic lateral sclerosis.</a> Brain. 131 (Pt. 12), 3335-3347 (2008).</li>
<li>Gowing, G. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Ablation+of+proliferating+microglia+does+not+affect+motor+neuron+degeneration+in+amyotrophic+lateral+sclerosis+caused+by+mutant+superoxide+dismutase%5BTitle%5D)+AND+%22J.+Neurosci%22%5BJournal%5D)">Ablation of proliferating microglia does not affect motor neuron degeneration in amyotrophic lateral sclerosis caused by mutant superoxide dismutase.</a> J. Neurosci. 28 (41), 10234-10244 (2008).</li>
<li>Scott, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((interpretation+of+studies+in+the+standard+murine+model+of+ALS%5BTitle%5D)+AND+%22Amyotroph+Lateral+Scler%22%5BJournal%5D)">interpretation of studies in the standard murine model of ALS.</a> Amyotroph Lateral Scler. 9 (1), 4-15 (2008).</li>
<li>Turner, B. J., Talbot, K. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Transgenics%2C+toxicity+and+therapeutics+in+rodent+models+of+mutant+SOD1-mediated+familial+ALS%5BTitle%5D)+AND+%22Prog+Neurobiol%22%5BJournal%5D)">Transgenics, toxicity and therapeutics in rodent models of mutant SOD1-mediated familial ALS.</a> Prog Neurobiol. 85 (1), 94-134 (2008).</li>
<li>Corse, A. M. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Preclinical+testing+of+neuroprotective+neurotrophic+factors+in+a+model+of+chronic+motor+neuron+degeneration%5BTitle%5D)+AND+%22Neurobiol+Dis%22%5BJournal%5D)">Preclinical testing of neuroprotective neurotrophic factors in a model of chronic motor neuron degeneration.</a> Neurobiol Dis. 6 (5), 335-346 (1999).</li>
<li>Knippenberg, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Significance+of+behavioural+tests+in+a+transgenic+mouse+model+of+amyotrophic+lateral+sclerosis+%28ALS%29%5BTitle%5D)+AND+%22Behav+Brain+Res%22%5BJournal%5D)">Significance of behavioural tests in a transgenic mouse model of amyotrophic lateral sclerosis (ALS).</a> Behav Brain Res. 213 (1), 82-87 (2010).</li>
<li>Burgess, R. W., Cox, G. A., Seburn, K. L. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Neuromuscular+disease+models+and+analysis%5BTitle%5D)+AND+%22Methods+Mol.+Biol%22%5BJournal%5D)">Neuromuscular disease models and analysis.</a> Methods Mol. Biol. 602, 347-393 (2010).</li>
<li>Hayworth, C. R., Gonzalez-Lima, F. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Pre-symptomatic+detection+of+chronic+motor+deficits+and+genotype+prediction+in+congenic+B6.SOD1%28G93A%29+ALS+mouse+model%5BTitle%5D)+AND+%22Neuroscience%22%5BJournal%5D)">Pre-symptomatic detection of chronic motor deficits and genotype prediction in congenic B6.SOD1(G93A) ALS mouse model.</a> Neuroscience. 164 (3), 975-985 (2009).</li>
<li>Ludolph, A. C. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Guidelines+for+preclinical+animal+research+in+ALS%2FMND%3A+A+consensus+meeting%5BTitle%5D)+AND+%22Amyotroph+Lateral+Scler%22%5BJournal%5D)">Guidelines for preclinical animal research in ALS/MND: A consensus meeting.</a> Amyotroph Lateral Scler. 11 (1-2), 38-45 (2010).</li>
<li>Boillee, S. <a target="_blank" href="http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed?term=((Onset+and+progression+in+inherited+ALS+determined+by+motor+neurons+and+microglia%5BTitle%5D)+AND+%22Science%22%5BJournal%5D)">Onset and progression in inherited ALS determined by motor neurons and microglia.</a> Science. 5778 (3), 1389-1392 (2006).</li>
</ol>

无利益冲突声明。

SOD1（G93A）转基因小鼠模型是一种有价值的动物模型，可用于研究与人类肌萎缩侧索硬化症相似的进行性运动神经元丢失的疾病进程8。已有多种不同的治疗方案在此模型中得到评估，为后续开展人类临床研究提供了基础8-10。为了能够在这些小鼠的实验治疗研究中检测到显著差异，至关重要的是纳入至少24只遗传背景相同、性别均衡且同窝出生的小鼠，并采用双盲设计8。类似于人类临床研究，应选择单一且统一的终点判断标准。本文中最为常用的标准是：将动物侧卧后，在30秒内无法自行恢复正常体位。一旦达到该标准，即对动物实施安乐死，并将其存活时间记录为生存期。
治疗研究可以在动物尚未表现出任何运动功能障碍迹象的临床前症状期开始（例如出生后第50天（DOL 50），甚至DOL 30），此时在我们的临床评分系统中评分为4分。另一种方法是采用症状期治疗方案，即在动物首次出现临床症状、且当其尾部被提起时已明显出现后肢震颤时开始治疗。此阶段定义为疾病 onset（发病），初始疾病阶段的临床评分为3分。在运动功能和肌肉力量测试中出现显著损伤通常要再过两到四周后...

<table><tbody><tr><td>小鼠转棒实验</td><td>Ugo Basile</td><td># 47600</td><td></td></tr><tr><td>悬挂式导线装置</td><td>定制制作</td><td></td><td></td></tr><tr><td>手术台 手术灯 防护手套</td><td></td><td></td><td></td></tr><tr><td>&amp;#8220;虹膜&amp;#8221; 剪刀，侧向倾斜</td><td>Fine Science Tools</td><td>14063-09</td><td></td></tr><tr><td>科汉-范纳斯直型弹簧剪</td><td>Fine Science Tools</td><td>15000-10</td><td></td></tr><tr><td>微型镊子</td><td>Hammacher，索林根，德国</td><td>HWC 111-10</td><td></td></tr><tr><td>手术刀 &amp;#8220;pr&amp;#228;zisa plus&amp;#8221;</td><td>Dahlhausen, K&amp;#246;德国</td><td>11.000.00.510，图10</td><td></td></tr></tbody></table>

用于肌萎缩侧索硬化症（als）小鼠模型的临床检测与脊髓取出

Clinical Testing and Spinal Cord Removal in a Mouse Model for Amyotrophic Lateral Sclerosis (ALS)

肌萎缩侧索硬化症（ALS）是一种致命的神经退行性疾病，导致运动神经元进行性退化。散发性疾病的发病高峰年龄约为60岁，而家族性疾病的发病高峰年龄约为50岁。由于其病情呈进行性发展，50%的患者在症状出现后30个月内死亡。为了评估该疾病的新治疗方案，已基于人类家族性SOD基因突变（如SOD1（G93A）突变）建立了ALS的遗传小鼠模型。在模型中需要评估的最重要方面包括总体生存期、临床病程和运动功能。本文展示了临床评估方法，演示了两种行为学运动测试的操作过程，并为所有参数提供了定量评分系统。由于对ALS小鼠模型的深入分析通常需要进行脊髓的免疫组织化学检查，我们详细展示了采用背侧椎板切除法进行脊髓标本制备的技术流程。文中还展示了典型的组织学结果。在ALS小鼠模型研究中全面应用这些检测方法，将使研究人员能够可靠地测试未来的治疗方案，为后续的人体临床试验提供基础。

对一种肌萎缩侧索硬化症（ALS）的小鼠模型进行临床和行为学评估。作为配套免疫组织化学分析的前提，本文详细展示了脊髓组织的制备过程。

用于肌萎缩侧索硬化症（ALS）小鼠模型的临床检测与脊髓取出

肌萎缩侧索硬化症（ALS）是一种致命的神经退行性疾病，导致运动神经元进行性变性。发病高峰约为60岁……

大家好，我叫Lar Turner，是德国英厄姆大学神经病学系的一名博士后。嗨，我叫Lin Gunda。我是一名医学生，目前正在本实验室完成我的毕业论文工作。今天我们将向您展示 SODG 93 小鼠肌萎缩侧索硬化症模型的临床检测。此外，我们将通过所谓的转棒实验来演示运动功能测试，同时还将通过悬挂金属丝抓力实验进行另一项运动功能测试，以开展免疫学分析。在完成对 a s 小鼠的功能测试后，必须进行脊髓、STIC 神经和腓肠肌的摘除。我们将详细展示这些手术操作步骤，并在最后呈现一些典型的免疫学研究结果。好的，现在我们首先开始临床测试。这是一种自由活动的野生型MOE，在我们的临床分类系统中不表现出任何临床症状，如肌肉震颤或帕西斯，其评分为四分。这是一种转基因A LS moe。在疾病早期阶段，该动物表现出右后肢严重震颤，属于评分三级（SCORE three E）。严重的步态异常使该动物被归为二级评分。在悬挂丝线试验中，至少一条后肢出现拖拽即被定为临床评分一级，同时对粗略的肌肉握力进行评估。将每只小鼠置于定制的金属丝网上，小心地将其翻转至倒置状态，位于铺有垫料的盒盖上方。在连续三次训练中每次至少坚持180秒后，测量其跌落潜伏期。每只小鼠最多给予三次尝试机会，使其倒置悬挂于盖子上，最长持续时间为180秒，记录其中最长的一次停留时间，并与右侧的白毛野生型小鼠进行比较。左侧的斑块转基因小鼠非常虚弱，在达到最长时间之前即从盖子上掉落。转棒仪用于评估运动协调性、平衡能力及运动学习能力。良好的表现需要高度的感觉运动协调性。该装置由计算机控制、电机驱动的旋转轴组成，并设有五个通道，可供五只动物同时进行实验。通过底部塑料板上的压力自动检测小鼠的失误。在以每分钟15转的恒定速度连续训练三次、每次至少180秒后，测量动物在旋转棒上保持不掉落的时间。每只动物进行三次试验，记录其中最长的不掉落潜伏期。左侧的健康野生型小鼠在转子杆上奔跑时无任何困难。相比之下，右侧的转基因阿尔茨海默病小鼠在转子杆上保持平衡都存在严重问题，一段时间后便从杆上滑落，此现象从后方观察可见。您可以看到该左侧行为异常小鼠存在严重的运动障碍。与健康的野生型小鼠相比，该小鼠无法跟上转棒的速度，且不能用前肢向上推动。为了进行脊髓的免疫化学分析，必须将动物处死。必须始终严格遵守当地关于动物实验操作规范的指导原则。在此背景下，本图简要概述了脊柱及其周围组织，展示了主要的解剖结构。我们将动物置于腹侧位置，从背部开始分离肌肉组织。在去除肌肉组织后，即可暴露并进入包裹脊髓的脊柱。动物处死后，用含多聚甲醛的灌流液灌流，随后可取出脊髓。将动物置于手术台上，四肢完全固定于两侧，以暴露小鼠背部。润湿动物体表以压平毛发，便于后续皮肤切开。为此，需使用锋利的手术刀。注意向两侧拉紧皮肤。为便于切割，应先暴露腿部肌肉。还需要切开它们的皮肤。完成皮肤切口后，将其轻轻拉开。用一对镊子去除腿部肌肉和坐骨神经后，我们继续暴露脊髓，并将动物放置在新的手术台上。现在可以很容易地辨认出颅骨颈部、肌肉和脊柱。在识别出所有这些结构后，便可顺利进入下一步操作。需要去除颈部的肌肉和项韧带。注意不要切得过深而损伤脊柱。下一步需完全去除椎旁肌肉以暴露脊柱。为了进入脊柱，需要进行多个截骨操作。我们从脊柱的颈椎部分开始，包括枕部寰椎关节。为了进行椎板切除术，必须切断椎弓，以便将所有椎骨突起从椎体上移除。如前所述，椎板切除术首先从切断椎弓开始。然后可以将硬脑膜拉开。再次注意不要损伤脊髓，因为还需要移除更多的椎骨。使用弯头剪刀同时剪开双侧多个椎弓非常有帮助。然后牵拉背侧突起，彻底去除椎板并拉近视野。可以看到，剪刀必须从脊髓管侧缘最外侧小心插入。需去除椎柱残余的侧部结构，以便后续完整取出脊髓。脊髓的解剖学标志包括所谓的颈膨大和腰膨大。完成整个脊髓的切除后，需确保切断脊髓的所有腹根，并将其从脑膜的硬膜中分离出来。接下来，切断颈段脊髓。从颅侧开始，再次进行脊髓的分离。操作时需极为谨慎地接触脊髓，避免对其造成损伤，因为这可能严重影响后续的免疫化学分析。脊髓的分离继续在胸段进行，并延伸至腰段部分。现在再次在马尾神经的一侧进行切割。此时我们能够完全将其释放。您可以看到脊髓被放置在其于脊柱内的原始位置旁边。最后，将其放入多聚甲醛固定液中进行后固定。作为脊髓免疫组织化学分析的经典示例，可使用识别胆碱乙酰转移酶的抗体来鉴定脊髓前角中的运动神经元。此处可见健康野生型动物脊髓前角中存在大量运动神经元。相比之下，处于终末期的肌萎缩侧索硬化转基因动物在前角中表现出的运动神经元数量要少得多。通过观看本视频文章，您应该已经了解了SODG93A小鼠这一肌萎缩侧索硬化模型的基本临床检查方法。已展示两种运动行为学测试：转棒测试和悬挂丝线测试。这两种方法能够有效评估基本的运动功能，操作简便、对运动功能障碍的检测具有高敏感性，且节省时间。本视频的主要部分演示了脊髓组织的制备技术。该方法当然也可应用于其他任何小鼠疾病模型，是后续对脊髓疾病病理进行免疫化学分析的关键步骤。感谢您的观看。我们希望本视频文章对您将来的实验有所帮助。

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临床试验和脊髓去除在肌萎缩性侧索硬化症的小鼠模型（ALS）

神经前体细胞移植是一种有前景的策略，可用于保护和/或替代脊髓损伤（SCI）及运动神经元病——肌萎缩侧索硬化症（ALS）中丧失或功能异常的颈段膈运动神经元。本文提供了在ALS和SCI啮齿类动物模型中，将细胞递送至颈段脊髓前角的实验方案。...

脊髓内细胞移植用于靶向治疗肌萎缩侧索硬化症和创伤性脊髓损伤中的颈段腹角

来源：Pourshafie, N., 等. 利用重组腺相关病毒9型系统性递送microRNA治疗啮齿类动物神经肌肉疾病. J. Vis. Exp.

在脊髓延髓肌萎缩症小鼠模型中注射重组腺相关病毒载体

本视频方案描述了一种敏感、可靠且快速的方法，用于评估肌萎缩侧索硬化症转基因小鼠模型中的神经肌肉功能缺陷。...

一种快速表型神经功能评分系统用于评估ALS的SOD1-G93A小鼠模型中的疾病进展

本文介绍了一种在新生小鼠中建立可重复性脊髓压迫损伤（SCI）的方法。该模型为研究自发性功能恢复背后的适应性可塑性机制提供了一个有利的平台。...

一种新生小鼠脊髓压迫性损伤模型

本文介绍了一种分阶段的行为学筛选方法，可用于在β-淀粉样蛋白沉积和tau蛋白病变的转基因小鼠模型中，筛选对认知功能和运动功能具有体内疗效的化合物。这些方法经过优化，适用于筛选化合物在短期记忆和工作记忆任务中的活性。...

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神经传导测量是评估神经退行性疾病小鼠模型的有用工具，但通常仅用于刺激后肢坐骨神经。本文介绍了一种测量复合肌肉动作电位（CMAP）的技术 体内...

体内电生理记录小鼠运动神经元变性模型前肢复合肌肉动作电位

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小鼠完全横断型脊髓损伤的诱导

本文展示了一种用于小鼠的新型自动化脊髓损伤挫伤装置，该装置能够精确地制备不同程度的脊髓损伤挫伤模型。...

用于小鼠脊髓挫伤模型的自动化撞击器

本实验方案描述了一种通过将肿瘤细胞注射至椎间空间来建立可重复的小鼠脊髓胶质瘤模型的方法，为研究和治疗开发提供了一种更有效且侵入性更小的途径。...

小鼠脊髓内肿瘤细胞的手术移植

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慢病毒诱导的纹状体病理作为多聚谷氨酰胺脊髓小脑性共济失调的临床前模型

本文详细介绍了针对成年小鼠中枢神经系统的鞘内给药方法，重点在于操作步骤的精确性以及实现重复给药的可能性。文中包含一项验证性研究的结果，显示反义寡核苷酸可降低SOD1-ALS模型小鼠中突变SOD1的表达水平，证明该方法在神经退行性疾病临床前研究中的应用价值。...

向人源 SOD1-G93A ALS 小鼠腰椎鞘内注射 SOD1-ASO 实现中枢神经系统精准靶向及可预测疗效

学习肌萎缩性侧索硬化症小鼠模型的临床测试与脊髓制备方法。本视频演示转棒测试和悬挂握力测试评估运动功能，并详细展示脊髓切除技术用于免疫组织学分析。

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