Name: Imuno-histoquímica para Topografia Wholemount cerebrais, Complexo (Vídeo) | JoVE Journal
Uploaded: 2012-04-05T13:00:00.000+00:00
Duration: 9 min 23 s
Description: Aprenda imuno-histoquímica em wholemount para visualizar padrões tridimensionais de expressão gênica no cerebelo intacto. Esta técnica permite observar topografias complexas sem necessidade de reconstrução tecidual.

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RVS é suportado pelo investigador nova start-up fundos de Albert Einstein College of Medicine da Universidade de Yeshiva.

1. Perfusão Animal e Dissection Cerebelo <ol><li> Dependendo da proteína, a perfusão pode ser essencial para 1,2 coloração bem sucedida. Perfusão intracardíaca é um procedimento invasivo, o procedimento não-sobrevivência que exige o uso adequado de anestésicos. Treinamento correto, aprovação institucional, e aprovação IACUC são todos necessários antes de tentar o procedimento. É sempre uma boa idéia consultar veterinários da instituição para obter ajuda na identificação de requisitos experimentais e adquirindo o treinamento correto. Antes do procedimento, o animal deve ser profundamente anestesiados e não responsivos a estímulos tais como a febre ou pitada cauda. Usando uma tesoura faça um corte na pele abdominal e parede muscular e, em seguida, continuar a abrir a caixa torácica, cortando apenas ao lado do esterno em cada lado. Além disso, o experimentador pode criar um maior espaço de trabalho interno cortando a fáscia circundante do diafragma. Ao levantar a parede abdominal e torácica Superiorly, o coração irá agora ser exposta. Fazer um pequeno corte no átrio direito para permitir que o sangue flua para fora e imediatamente inserir a agulha de perfusão para o ventrículo esquerdo. Uma bomba de hidrostática de base é o preferido para produzir as soluções de perfusão (ver Tabela 1 para detalhes). Primeiro, lave o sangue para fora com fosfato 0,1 M tamponada salina (PBS, ver Tabela 3), até o fluido corre claro. Em seguida, desligar a bomba hidrostática, mudar rapidamente o tubo de entrega de solução a um recipiente de paraformaldeído a 4% (PFA, ver Tabela 3) diluído em PBS e depois ligar a bomba de volta para entregar o fixador. A utilização de uma bomba não é necessário: com a prática, duas seringas cheias com o PBS e 4% PFA pode ser usado para produzir as soluções lentamente. </li><li> É crítico para dissecar cuidadosamente o cérebro para fora do crânio sem a introdução de quaisquer lesões ao tecido. Mesmo pequenas lacerações no cérebro durante a dissecção irá expandir gradualmente em fendas visíveis queanticorpos armadilha e causar manchas artefactual durante o processamento do tecido (por exemplo, asteriscos vermelhas na Fig. 2). Para dissecações cerebelares, é típico para cortar a pele para baixo no meio da cabeça e depois suavemente provocar as abas à parte para expor o crânio. Cortar o crânio de anterior para posterior ao longo da linha média dorsal, e também lateralmente ao longo de ambos os lados do crânio. Não corte além do bregma como esta corre o risco de entalhar o cerebelo. Utilizando uma pinça suavemente levantar a parte frontal do crânio longe do cérebro com cuidado para não rasgar o tecido cerebral que está ligado para as meninges. Sever dos nervos cranianos, no lado ventral do cérebro. </li><li> Separação do cerebelo do resto do cérebro é importante por duas razões. Primeiro, ele permite a exploração de padrões de expressão nos lóbulos anteriores, que estão escondidos da visão pela colículos in situ. A segunda é que a separação do tecido em menores, regiões isoladas permite mminério de fixação completa, o que pode facilitar a coloração de algumas proteínas. Durante esta etapa dissecção final, cuidados devem ser tomados para não tocar no cerebelo, com as pontas dos fórceps. Inserir as pontas de um par de pinças para o meio das colículos superiores e inferiores. Com um segundo conjunto de pinça lentamente provocar afastado o colículo inferior a partir do cerebelo. Em seguida, coloque o cerebelo para que sua face anterior é voltada para baixo e do tronco cerebral está apontando para cima. Inserir a pinça para o quarto ventrículo entre o tronco encefálico e IX lóbulos / X do cerebelo. Cortar os pedúnculos apertando com a pinça de ambos os lados e então suavemente levantar o cerebelo de distância a partir do tronco cerebral. Uma vez que o cerebelo é isolado, pós-corrigi-lo por imersão em PFA a 4% a 4 ° C durante um mínimo de 24-48 horas. O cerebelo podem ser armazenados em PFA a 4% durante um período prolongado de tempo. As meninges deve ser removido antes ou depois da coloração para melhor visibilidade dos padrões de expressão.Se o experimentador escolhe para remover as meninges antes da coloração existe uma forte possibilidade de que o cerebelo será cortado durante o processo. Descascar as meninges no final do procedimento de coloração é muito mais simples, porque eles se tornam mais fáceis de localizar após adquirem a coloração de fundo fraco e tornar-se frágil pós-processamento. </li></ol> 2. O processamento do tecido para a coloração Wholemount Como a abordagem de coloração wholemount demora mais do que coloração imuno-histoquímica de secções de tecido, é útil para planear a linha de tempo para cada um dos experimentos como mostrado no calendário exemplo fornecido (Tabela 2). Antes de começar, há várias coisas fundamentais para se manter em mente. 1) Os microtubos contendo o tecido deve ser rodada em um nutator em todos os momentos, excepto durante o processo de congelamento / descongelamento. 2) Várias soluções deve ser feito fresco para cada experiência (Ver Tabela 3 para as receitas de solução). 3)Durante todo o protocolo, quando mudar soluções, gentilmente deitar fora a solução passou em vez de remover o cerebelo com uma pinça, para evitar tocar no cerebelo. Então, depois de misturar a solução de novo no outro recipiente, utilizar uma pipeta para suavemente adicionar a solução de fresco para o tubo. 2,1 Dia 1: <ol class="lalpha"><li> Fixar o cerebelo em 3 Dent correção à temperatura ambiente por 6-8 horas balançando suavemente na nutator. Se metanol é destrutivo para o seu antígeno, considere substituindo passos 2.1a através 2.3a com um método de recuperação antigênica. O calor e os amortecedores usados ​​para recuperação antigênica vai ajudar a preparar o tecido para a penetração de anticorpos. </li><li> Cerebelo Bleach o em Bleach Dent 3 durante a noite a 4 ° C. </li></ol> 2,2 Dia 2: <ol class="lalpha"><li> Desidratar o cerebelo em duas rondas de MeOH a 100% à temperatura ambiente durante 30 min cada. </li><li> Em seguida, para aumentar a penetração das soluções, sujeitoo tecido a uma série de congelamento / descongelamento ciclos. Cuidadosamente colocar o tubo num recipiente com gelo seco e congelamento durante 30 min. Em seguida, remover o tubo e deixá-la à temperatura ambiente na bancada durante 15 minutos. O passo de congelamento / descongelamento deve ser realizada quatro vezes (pelo menos). </li><li> Após a última descongelamento do tecido, colocar o tubo num congelador -80 ° C durante a noite. </li><li> O tecido pode ser armazenado por períodos prolongados de tempo a -80 ° C, quer imediatamente antes ou depois dos passos de congelação / descongelação. Caso contrário, o protocolo deve ser continuado. </li></ol> 2,3 Dia 3: <ol class="lalpha"><li> Re-hidratar o cerebelo, lavando-o em 50% MeOH/50% de PBS, 15% MeOH/85% de PBS, e 100% de PBS durante 60-90 minutos cada à temperatura ambiente. </li><li> Em seguida, para o adulto rato cerebelos, sujeita o tecido a digestão enzimática com 10μg/ml proteinase K em PBS durante 2-3 minutos. No processo de digestão é necessária para cerebelo de animais jovens (P5 ou menos, no mouse). Mais digestion é sugerido para cérebros maiores. Por exemplo, a digestão pode ser tão elevada quanto 5-6 minutos para cérebros de primatas 4. </li><li> Após a digestão, lave o cerebelo em PBS três vezes durante 10 minutos cada à temperatura ambiente para remover o K. Proteinase </li><li> Bloquear o tecido em PMT (ver Tabela 3) durante a noite a 4 ° C. Leite em pó é muitas vezes a primeira escolha quando se selecciona um agente de bloqueio para o trabalho de proteína porque é barato, reduz eficazmente a coloração de fundo, e tipicamente não interfere com a ligação do anticorpo ou o acesso ao antigénio. Soros de animais também podem ser usados, embora o experimentador deve estar ciente do custo adicional e deve primeiro testar a qualidade soro para com reactividade cruzada imunoglobulinas e capacidade para produzir um sinal ideal para relação de ruído. </li></ol> 2,4 Dia 4-5: <ol class="lalpha"><li> Incubar o tecido em anticorpos primários diluídos em DMSO PMT suplementadas com 5% durante 48 horas a 4 ° C (larger cerebelos exigirá tempos de incubação maiores). </li></ol> 2,5 Dia 6: <ol class="lalpha"><li> Lavar o cerebelo 2-3 vezes por 2-3 horas cada em PMT a 4 ° C para remover os anticorpos não ligados primários. </li><li> Em seguida, o tecido incubar em anticorpos secundários em uma solução contendo PMT com DMSO a 5% a 4 ° C durante a noite (maior cerebelos pode requerem tempos de incubação maiores). </li></ol> 2,6 Dia 7: <ol class="lalpha"><li> Lavar o cerebelo 2-3 vezes por 2-3 horas cada em PMT a 4 ° C. </li><li> Dar o tecido de uma lavagem final com PBT (ver Tabela 3) durante 1-2 horas. Este passo remove o excesso de leite e aumenta a clareza da coloração. </li><li> Finalmente, incubar o tecido em DAB (3,3 &#39;-diaminobenzidina) solução até que a intensidade da coloração óptimo é atingido. O produto da reacção castanho deve ser claramente visíveis dentro ~ 10 minutos. É melhor usar DAB no escuro como a luz faz com que o cromógeno a precipitaçãote, o que pode aumentar a coloração de fundo. </li></ol> 2,7 Quando a intensidade de coloração óptimo é atingido, parar a reacção colocando o cerebelo em PBS com azida de sódio 0,04%. O tecido pode ser armazenada a longo prazo nesta solução. A azida de sódio é um potente inibidor do crescimento bacteriano, mas deve ser evitado até este passo como também inibe a peroxidase de rábano. 2,8 procedimento de amplificação opcional: seguir o protocolo normal, mas estas etapas devem ser realizadas no local das etapas 2.5b-2.7 acima. <ol class="lalpha"><li> Incubar o tecido durante a noite a 4 ° C em biotina-anticorpos secundários conjugados em PBST (ver Tabela 3) com DMSO a 5%. </li><li> Lavar o tecido durante 2-3 horas cada em mudanças de 3-4 PBST à temperatura ambiente. </li><li> Incubar o cerebelo durante a noite a 4 ° C em solução de complexo ABC em PBST. </li><li> Lavar o tecido durante 2-3 horas cada emtemperatura ambiente em mudanças de PBS 3-4. </li><li> Incubar o tecido em recém-preparado solução DAB, como descrito acima. </li><li> Quando a coloração é óptima, parar a reacção por lavagem o cerebelo em PBS com azida de sódio 0,04%. </li></ol> 3. Imagem do tecido manchado <ol><li> Imagens Wholemount pode ser capturada utilizando, por exemplo, uma Leica DFC3000 câmara FX montado sobre um estereomicroscópio Leica FA MZ16 executando Leica Application Suite software FX. Se desejado, a microscopia de desconvolução pode ser usada para adquirir múltiplas imagens consecutivas em diferentes planos focais, com cada imagem tendo apenas um único lóbulo em foco crocante. Em seguida, as imagens podem ser comprimidos em uma única pilha e software processado para remover a distorção. A imagem composta final irá ilustrar os padrões de expressão de superfície do cerebelo com toda a padronização visível no foco claro. </li><li> Tecido manchado Wholemount deve ser trabalhada enquanto imersa em PBS (ou outro meio que dará umíndice de refração ótimo). A fim de posicionar facilmente o wholemount para imagiologia, fazer um gel de agar a 1% em uma placa de Petri de plástico. Cortar pequenos orifícios no gel. Os furos vai permitir que o cerebelo de ser preso na orientação desejada. </li><li> Os dados brutos são importados para o Adobe Photoshop CS4 e ajustado para os níveis de contraste e brilho. </li></ol> Animais Todos os estudos em animais foram realizadas ao abrigo de um protocolo animal aprovado IACUC acordo com as diretrizes institucionais no Albert Einstein College of Medicine. Macho e fêmea outbred suíça Webster (Taconic, Albany, NY) os ratinhos foram mantidos no nosso colónia e utilizado para todos os estudos. Ratos adultos submetidos a eutanásia foram gentilmente cedidas pelo Dr. Bryen Jordan (Albert Einstein College of Medicine). Todos os animais foram pelo menos um mês de idade. 4. Os resultados representativos O cerebelo é compartimentalizada pela expressão molecular em quatro zonas transversais:a zona anterior (AZ: ~ lóbulos IV), a zona central (CZ: ~ lóbulos VI-VII), a zona posterior (PZ: ~ lóbulos VIII-dorsal IX) e na zona de nodular (NZ: ~ lóbulos IX e X ventral ) 5. Cada zona contém um único conjunto de listras parasagital 1,2,5,6 (Fig. 1). ZebrinII expressão em células de Purkinje revela listras no AZ e PZ (Fig. 2) e de expressão uniforme no CZ e NZ (Fig. 2). A organização parassagital de células de Purkinje é espelhada pela topografia campo terminal de fibras aferentes. Transcrição cocaína-anfetamina e regulamentado (CART) peptídeo é expresso em subconjuntos de fibras de escalada (Fig. 3) que se projetam para faixas de dendritos das células de Purkinje na camada molecular do córtex cerebelar 7 (Fig. 3b). Com as modificações adequadas, tais como amplificação 7, o protocolo wholemount permite a visualização de padrões olivocerebellar sem a need para um laboriosos, tempo reconstruções consumir a partir de secções de tecido de coloração (Fig. 3b). <img alt="A Figura 1" src="/files/ftp_upload/4042/4042fig1.jpg" /> Figura 1. A. ZebrinII / aldolaseC expressão revela bandas sagitais em seções transversais do cerebelo. Barra de escala = 500 uM. B. ZebrinII / aldolaseC é expresso exclusivamente em Purkinje somata celular e dendritos. Barra de escala = 150μm (gl = camada granular; pcl = camada de células Purkinje; ml = camada molecular). <img alt="A Figura 2" src="/files/ftp_upload/4042/4042fig2.jpg" /> Figura 2. Um cerebelo wholemount coradas para ZebrinII / aldolaseC mostrando as listras de células de Purkinje em imagens do anterior (AZ), central (CZ), e posterior (PZ) zonas do cerebelo. Aqui também mostram um exemplo da consequência negativa da nicking o cerebelo. A coloração resultante artefactual é indicadocom asteriscos vermelhos. Barra de escala = 1 mm (LS = simplex lobulus; PML = paramediana lóbulo; COP = cópula Pyramidis). <img alt="A Figura 3" src="/files/ftp_upload/4042/4042fig3.jpg" /> Figura 3. CART A. é expressa em escalar terminais de fibras na camada molecular. Barra de escala = 100 mm. (Ml = camada molecular; pcl = camada de células Purkinje; gl = camada granular) B. imunohistoquímica Wholemount de expressão CART na NZ. Barra de escala = 2 mm (COP = cópula Pyramidis; PML = paramediana lóbulo; PFL = paraflocculus; FL = flóculus).

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</ol>

Não temos nada a divulgar.

Nós descrevemos os detalhes técnicos necessários para a coloração wholemount sucesso utilizando uma abordagem versátil imuno-histoquímica para expressão da proteína reveladora no cérebro em desenvolvimento e adultos. Usando esta abordagem, complexos moleculares padrões de expressão podem ser analisadas e topografia cérebro apreciado sem a necessidade de trabalhoso e demorado procedimentos de secção consumindo de tecidos. Este protocolo foi usado para revelar a expressão padronizada de várias...

<table border="1"><tbody><tr><td> Materiais </td><td> Função no protocolo </td></tr><tr><td> Bomba de perfusão (Fisher Scientific/13-876-2) </td><td> Permite a perfusão consistente e lento. </td></tr><tr><td> Sharp-ponta Tesoura (FST/14081-08) </td><td> Uso geral na perfusão e dissecção. </td></tr><tr><td> Blunt-ponta Fórceps (FST/91100-12) </td><td> Para estabilizar o coração para inserção da agulha de perfusão. </td></tr><tr><td> Fórceps (FST por Dumont AA/11210-10) </td><td> Para utilização durante a dissecção do cérebro do crânio e para separar o cerebelo do resto do cérebro. Estes são essenciais porque eles têm uma ponta ligeiramente arredondada que ajuda a minimizar os danos ao cerebelo durante a dissecção. </td></tr><tr><td> Nutator (Fisher Scientific) </td><td> Utiliza-se para manter o tecido em movimento durante períodos de incubação. </td></tr><tr><td> 1,5 mL tubo (Sarstedt / Parafuso Micro Tube) </td><td> Todos os passos do seuhistoquímica protocolo ter lugar nestes microtubos. A parte inferior arredondada assegura que o cerebelo permanece em movimento. </td></tr><tr><td> Colher perfurada (FST/10370-17) </td><td> Usado para manter wholemounts nos microtubos enquanto suavemente decantação a solução passou. </td></tr><tr><td> Leica MZ16 FA microscópio </td><td> Usado para examinar coloração wholemount. </td></tr><tr><td> Leica DFC3000 FX câmera </td><td> Usado para capturar imagens wholemount. </td></tr></tbody></table> Tabela 1. <table border="1"><tbody><tr><td colspan="9"> Exemplo de calendário para um experimento típico wholemount </td></tr><tr><td> Dia 1 </td><td colspan="4"> Correção Dent, temperatura ambiente, 8 horas </td><td colspan="4"> Lixívia Dent, 4 ° C, durante a noite </td></tr><tr><td> Dia 2 </td><td colspan="3"> 100% de MeOH, temperatura ambiente, 2x, 30 min cada </td><td colspan="3"> 100% MeOH, congelamento / descongelamento, 4x, 30 min/15 min </td><td colspa<html> n = &quot;2&quot;&gt; MeOH a 100%, -80 ° C, durante a noite </td></tr><tr><td> Dia 3 </td><td> 50% MeOH/50% PBS, temperatura ambiente, 60-90 min </td><td colspan="2"> 15% de MeOH / PBS a 85%, à temperatura ambiente, 60-90 min </td><td colspan="2"> 100% de PBS, à temperatura ambiente, 60-90 min </td><td> 10μg/mL proteinase K em PBS, à temperatura ambiente, 2-3 min </td><td> 100% de PBS, à temperatura ambiente, 3x, 10 min cada </td><td> PMT, 4 ° C, durante a noite </td></tr><tr><td> Dia 4-5 </td><td colspan="8"> PMT + 1 ° de anticorpos + 5% de DMSO, 4 ° C, 48 horas </td></tr><tr><td> Dia 6 </td><td colspan="3"> PMT, 4 ° C, 2-3x, 2-3 horas em cada </td><td colspan="5"> PMT + 2 ° anticorpo + 5% de DMSO, 4 ° C, 24 horas (ou iniciar a passos de amplificação com ABC complexo) </td></tr><tr><td> Dia 7 </td><td colspan="2"> PMT, 4 ° C, 2-3x, 2-3 horas em cada </td><td colspan="3"> PBT, temperatura ambiente, 2 horas </td><td colspan="3"> Incubar em DAB fresco em PBS até que a coloração ideal é visualizado </td></tr></tbody></table>_content &quot;&gt; Tabela 2. <table border="1"><tbody><tr><td colspan="2"> Receitas (* = preparar uma nova a cada vez) </td></tr><tr><td> PBS (solução salina tamponada com fosfato) </td><td> 0,1 M de tampão fosfato salino em água desionizada. pH 7,2 (Sigma; comprimidos P4417) </td></tr><tr><td> PFA (paraformaldeído) </td><td> Feito e congelado armazenado como uma solução a 20% e, em seguida diluído para 4% em PBS para a solução de trabalho (Fisher Scientific; T353) </td></tr><tr><td> * Dent 3 de Fixação </td><td> 4 partes de metanol 1 parte dimetilsulfóxido (DMSO; Fisher Scientific, D159-4) </td></tr><tr><td> Bleach Dent 3 * </td><td> 4 partes de metanol 1 parte dimetilsulfóxido (DMSO; Fisher Scientific, D159-4) 1 parte de peróxido de hidrogênio a 30% </td></tr><tr><td> Digestão enzimática </td><td> 10 ug / ml de proteinase K (Roche Diagnostics; 03115828001) em PBS. </td></tr><tr><td> PBST </td><td> PBS contendo: 0,1% de Tween-20 (Fisher Scientific, BP337; Triton também pode ser utilizado em lugar de Tween-20 em todos os casos). </td></tr><tr><td> PMT 25 * </td><td> PBS contendo: 2% desnatado em pó de leite desnatado (Carnation preferido) 0,1% de Tween-20 (Fisher Scientific; BP337) </td></tr><tr><td> PBT 25 * </td><td> PBS contendo: Bovino a 0,2% (Sigma; B9001S) de albumina de soro 0,1% de Tween-20 (Fisher Scientific; BP337) </td></tr><tr><td> DAB * </td><td> Dissolve-se um comprimido de 10 mg de 3,3-diaminobenzidina (Sigma-Aldrich; D5905) em 40 ml de PBS. Adicionar 10 ul de peróxido de hidrogénio a 30% para iniciar a reacção). </td></tr><tr><td> ABC solução complexa </td><td> Vectastain kit (Vector Laboratories, Inc; PK-4000) </td></tr></tbody></table> Tabela 3.

imuno-histoquímica para topografia wholemount cerebrais, complexo

Wholemount Immunohistochemistry for Revealing Complex Brain Topography

A arquitetura repetida e bem-entendido celular do cerebelo torná-lo um sistema modelo ideal para explorar a topografia do cérebro. Subjacente a sua citoarquitetura relativamente uniforme é um complexo conjunto de domínios parassagitais de expressão gênica e protéica. A compartimentação molecular do cerebelo é espelhada pela organização anatômica e funcional das fibras aferentes. Para apreciar plenamente a complexidade da organização do cerebelo que anteriormente uma abordagem refinada coloração wholemount para análise de defeitos de alto rendimento de padronização no cerebelo mouse. Este protocolo descreve em detalhes os reagentes, instrumentos e medidas práticas que são úteis para o sucesso revelar padrões de expressão de proteínas no cerebelo do rato adulto usando imunomarcação wholemount. Os passos em destaque aqui demonstrar a utilidade do presente método utilizando a expressão de zebrinII / aldolaseC como um exemplo de como a topografia fina do cérebro pode ser revelado na suaconformação tridimensional nativa. Também descritos são adaptações para o protocolo que permite a visualização de expressão da proteína em projeções aferentes e cerebelo grande para estudos comparativos de topografia molecular. Para ilustrar estas aplicações, os dados de coloração aferente do cerebelo de rato estão incluídos.

Circuitos neurais são topograficamente organizados em compartimentos funcionais específicas com perfis moleculares. Aqui, apresentamos os passos práticos e técnicos para revelar topografia cérebro global usando uma abordagem de coloração imuno-histoquímica wholemount versátil. Nós demonstrar a utilidade do método utilizando o citoarquitetura bem compreendida e os circuitos de cerebelo.

Imuno-histoquímica para Topografia Wholemount cerebrais, Complexo

A arquitetura celular repetitiva e bem compreendida do cerebelo torna-o um sistema modelo ideal para explorar a topografia cerebral. Subjacente à sua ...

O objetivo geral deste procedimento é revelar padrões complexos de expressão gênica em uma estrutura cerebral inteira e intacta. Isso é realizado primeiramente por meio da perfusão do animal e da remoção do cérebro. Em seguida, o cerebelo é dissecado e processado utilizando o protocolo de coloração em montagem inteira.O passo final consiste em visualizar a expressão gênica utilizando uma reação colorimétrica histoquímica. Em última instância, utiliza-se microscopia de campo claro para imagens dos padrões de expressão gênica na superfície. A principal vantagem desta técnica em relação a métodos existentes, como imunohistoquímica em cortes de tecido, é a capacidade de visualizar padrões complexos em três dimensões sem a necessidade de reconstrução.Quem demonstra o procedimento é Joshua White, um estudante de pós-graduação do meu laboratório. Após sacrificar o animal e remover o cérebro do crânio, separe o cerebelo do restante do cérebro inserindo primeiro as pontas de um par de pinças no meio dos colículos superiores e inferiores. Em seguida, utilizando um segundo par de pinças, separe lentamente os colículos e o córtex do cerebelo.Oriente o cerebelo de modo que o lado anterior estej

wholemount-immunohistochemistry-for-revealing-complex-brain-topography

Research

JoVE Journal

Neuroscience

Neurociência

Grande escala imunodetecção de proteínas-alvo em todo o cérebro dos primatas é possível através do emprego de tecido romance incorporação e secção métodos combinados com o uso de aparelhos criativas para a coloração de vários lotes de livre flutuação seções em um determinado momento.

A imunocoloração lote de Grande Escala da detecção de proteínas no cérebro do macaco inteiro

Nós fornecemos um guia prático para entregar...

Revelando Topografia Circuito Neural em Multi-Color

Este vídeo demonstra o procedimento para imunomarcar uma seção fixa de tecido cerebral de camundongo com astrócitos marcados com fluorescência usando anticorpos primários e secundários e capturar as imagens dos astrócitos corados por meio de microscopia confocal.

Imunocoloração de astrócitos marcados com fluorescência em uma seção de tecido cerebral de camundongo

Neste artigo vamos descrever o procedimento experimental completo para reconstruir, com alta resolução, a anatomia do cérebro multa de cérebros fluorescente etiquetado do mouse. O protocolo descrito inclui preparação de amostras e limpeza, espécime de montagem para a imagem latente, os dados de pós-processamento e visualização multi-escala.

Micron escala Resolução óptica Tomografia de todo cérebro do rato com confocal Luz Folha de Microscopia

Aqui descrevemos um procedimento para tecido limpando, etiquetando fluorescente e imagens em grande escala do tecido de cérebro de rato que, desse modo, permite a visualização da organização tridimensional de tipos de células no neocórtex.

Imagem tridimensional em grande escala de organização celular no neocórtex Mouse

Este artigo descreve um método simples para preparar pequenos cérebros de animais para a imagem latente de micro-CT, nas quais as lesões podem ser quantificadas e eletrodos localizados com elevada precisão no contexto do cérebro inteiro.

Um método de Micro-CT-baseado para caracterizar as lesões e localização de eletrodos nos cérebros de animais pequenos

Este artigo introduz um protocolo experimental utilizando tecnologia de digitalização 3D que constrói duas escalas espaciais: a escala espacial macroscópica da anatomia do cérebro inteiro imaged por RM a &gt; 100 μm e a escala espacial microscópica de distribuições neuronais utilizando Coloração imuno-histoquímica e um sistema de arranjo multieletrodo e outros métodos (~ 10 μm).

Tecnologia de digitalização 3D Bridging microcircuitos e imagens cerebrais Macroscale em 3D Novel incorporação de protocolo de sobreposição

Este protocolo descreve um fluxo de trabalho passo a passo para a costainização imunofluorescente de IBA1 e TMEM119, além da análise da densidade microglial, distribuição e morfologia, bem como infiltração periférica de células mieloides no tecido cerebral do rato.

Imunofluorescência Manchausando IBA1 e TMEM119 para densidade microglial, morfologia e análise periférica de infiltração de células mieloides no cérebro do rato

A técnica de flutuação livre permite que os pesquisadores realizem colorações histológicas, incluindo imuno-histoquímica em seções de tecido fixas para visualizar estruturas biológicas, tipo de célula e expressão e localização de proteínas. Esta é uma técnica histoquímica eficiente e confiável que pode ser útil para investigar uma infinidade de tecidos, como cérebro, coração e fígado.

Coloração histológica usando seções de tecido flutuantes livres

Este protocolo descreve uma abordagem eficiente e reprodutível para estudos histológicos cerebrais do camundongo, incluindo perfusão, seção cerebral, imunostaining flutuante livre, montagem de tecido e imagem.

Imunostaining flutuante livre de cérebros de rato

A tomografia serial de dois fótons (STPT) é uma técnica para obter imagens de uma massa de tecido em sua forma tridimensional, combinando imagens de dois fótons com controle automático de estágio e corte de micrótomo. Aqui descrevemos um protocolo para implementá-lo para cérebros de saguis para entender melhor suas características estruturais.

Tomografia seriada de dois fótons de todo o cérebro do sagui para análises neuroanatômicas

Aprenda imuno-histoquímica em wholemount para visualizar padrões tridimensionais de expressão gênica no cerebelo intacto. Esta técnica permite observar topografias complexas sem necessidade de reconstrução tecidual.

Imuno-histoquímica para Topografia Wholemount cerebrais, Complexo

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