Back to chapter

11.6:

Стабильность мРНК и экспрессия генов

JoVE Core
Biologia Molecular
É necessária uma assinatura da JoVE para visualizar este conteúdo.  Faça login ou comece sua avaliação gratuita.
JoVE Core Biologia Molecular
mRNA Stability and Gene Expression

Idiomas

COMPARTILHAR

степень и сроки экспрессии гена зависят от стабильности мРНК. Стабильные мРНК могут иметь период полураспада в несколько часов и кодировать белки, которые нужно производить постоянно. Синтез белка может продолжаться долгое время после остановки транскрипции, если мРНК не деградировала.Напротив, нестабильная mРНК обычно имеет короткие периоды полураспад менее 30 минут и быстро деградируют. Если только транскрипция этих генов не непрерывна, мРНК может транслироваться только короткое время. Это помогает организму быстро остановить производство ненужных белков.мРНК деградируются тремя различными способами. Самый распространенный метод это зависимый путь деаденилирования где удаляются аденины поли-А-хвоста мРНК, приводя к его деградации с обоих концов транскрипта. Комплекс деаденилирующей нуклеазы Разрушает хвост Poly-A в направлении между праймами 3 и 5.Когда аденины удалены, мРНК еще более деградируется в том же направлении цитоплазмическим экзосомным комплексом. Конец прайм 5 мРНК имеет кэп для защиты от экзонуклеаз. мРНК часто образует петлю где его кэп при прайм-5 и хвост Poly-A при прайм-3 тесно связаны друг с другом специфическими белками.Когда в хвосте Poly-A остаётся менее чем 15 остатков, многие из этих белков не привязаться к хвосту Poly-A, который открываетет кэпы в прайм-5 де-кэппирующим ферментам. Впоследствии это приводит к декэппированию конца прайм-5. Эта декэппированная мРНК деградируется в направлении от прайм-5 до прайм-3 другой экнуклеазой.Второй тип деградации независимый от деаденилирования путь, где энзимы, удаляющие кэпы, снимают кэпы у прайм-5. После этого экнуклеаза разрушает Незащищенные мРНК от прайм-5 до конца прайм-3. Третий и наименее частые способ включает внутренние расщепление мРНК с помощью специальных эндонуклеаз.Фрагменты мРНК имеют незащищённые прайм-5 и прайм-3 концы. Специфичные экзонуклеазы, в таком случае, могут действовать на этих незащищенных концах, и деградируют мРНК. Происходит деградация мРНК в агрегированных белковых телах, известная как обработка, или Р-тела.Эти тела P содержат ферменты, в том числе те, которые участвуют в декэппировании от прайм-5 до прайм-3 деградации мРНК.

11.6:

Стабильность мРНК и экспрессия генов

Структура и стабильность молекул мРНК регулируют экспрессию генов, поскольку мРНК являются ключевым звеном на пути от гена к белку. У эукариот период полужизни мРНК варьируется от нескольких минут до нескольких дней. Стабильность мРНК необходима для роста и развития. Отсутствие белков, регулирующих ее стабильность, таких как тристетрапролин у мышей, может вызвать системные проблемы, включая разрастание костного мозга, воспаление и аутоиммунитет.

Цис -активные элементы, вовлеченные в стабильность мРНК

Последовательность мРНК не только кодирует белки, но также содержит различные цис -активные области, которые либо сами по себе, либо с помощью транс-действующих белков регулируют стабильность мРНК. 5'-конец мРНК имеет кэп 7-метилгуанилат (m7G), а 3'-конец имеет поли-А-хвост, оба из которых защищают мРНК от экзонуклеаз. Поли-А-хвост короче 15-20 нуклеотидов может приводить к декэппированию и последующей деградации мРНК; следовательно, длина поли-А-хвоста важна для стабильности мРНК. 5'- и 3'-нетранслируемые области (НТО) мРНК содержат различные последовательности, которые действуют как сайты связывания для белков, участвующих в деградации и стабильности мРНК. 5'-НТО содержит области связывания для белков, которые способствуют декэппированию, или удалению 5' m7G кэпа . 3'-НТО в некоторых мРНК, особенно с периодом полужизни менее 30 минут, несет множественные “AUUUA” повторы, известные как AU-богатые последовательности. Когда белки, дестабилизирующие мРНК, связываются с этими AU-богатыми последовательностями, они способствуют быстрому деаденилированию и деградации мРНК. С другой стороны, когда присутствуют стабилизирующие мРНК белки, они конкурируют с дестабилизирующими белками за связывание с AU-богатыми последовательностями и снижают скорость деградации мРНК. Некоторые другие мРНК также несут специфические последовательности распознавания для эндонуклеаз.

Основные пути деградации мРНК

Наиболее распространенные механизмы деградации мРНК включают удаление поли-А хвоста с 3'-конца и 5' m7G кэпа. Деаденилирование, удаление аденинов из поли-A-хвоста, может приводить к деградации мРНК по двум различным механизмам. Первый механизм включает укорочение поли-А-хвоста до менее чем 15-20 нуклеотидов, что дестабилизирует ассоциацию между мРНК и связывающимися с ней белками.  Это обнажает 5' m7G кэп для ферментов декэппирования, DCP1 и DCP2. Декэппированные и незащищенные 5'-концы мРНК затем могут быть расщеплены с помощью 5'-3'-экзонуклеазы, XRN1. Другой механизм деградации включает полное удаление 3'-поли-A-хвоста под действием деаденилаз и последующую деградацию незащищенного 3'-конца цитоплазматическим комплексом экзосом в 3'-5' направлении. Деградация мРНК из 5' в 3' является основным путем у дрожжей, в то время как деградация мРНК от 3' к 5' является основной в клетках млекопитающих. Однако мРНК также может разрушаться двумя механизмами одновременно. В некоторых мРНК деаденилирование не является предварительным условием деградации.  Один из механизмов включает декэппирование 5'-конца, за которым следует 5'-3' деградация мРНК с использованием экзонуклеазы XRN1. Другой, реже наблюдаемый путь деградации включает внутреннее расщепление мРНК с помощью эндонуклеаз. Возникающие незащищенные концы разорванной мРНК затем могут быть легко расщеплены в 5'-3' и в 3'-5' направлениях с помощью XRN1 и комплекса экзосом соответственно.

Leitura Sugerida

  1. Beelman, Clare A., and Roy Parker. "Degradation of mRNA in eukaryotes." Cell 81, no. 2 (1995): 179-183.
  2. Steinman, R. A. "mRNA stability control: a clandestine force in normal and malignant hematopoiesis." Leukemia 21, no. 6 (2007): 1158-1171.
  3. Green, Pamela J. "Control of mRNA stability in higher plants." Plant Physiology 102, no. 4 (1993): 1065.