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11.11:

CRISPR et crARNs

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Biologia Molecular
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CRISPR and crRNAs

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Les bactéries font continuellement face à des infections de bactériophages-virus qui infectent les bactéries. Pour faire face à cette menace, les bactéries ont mis au point un système immunitaire sophistiqué et adaptatif appelé système CRISPR-cas pour détruire l’ADN bactériophage en cas de réinfection. Ce système implique trois processus différents-l’incorporation du segment d’ADN bactériophage dans le génome bactérien, la production de l’ARN CRISPR et de la protéine Cas et le clivage de l’ADN bactériophage par le complexe CRISPR-Cas.Quand un bactériophage attaque, il se fixe à la surface de la cellule bactérienne et insère son ADN dans la bactérie qui est ensuite clivée par le système bactérien. Un segment court de l’ADN bactériophage est ensuite ajouté dans des régions spécifiques du génome bactérien appelé CRISPR-Courtes Répétitions Palindromiques Groupées et Régulièrement Espacées. Il s’agit de régions génomiques où les répétitions de séquences bactériennes sont entrecoupé avec les séquences espacées variables courtes de différents bactériophages.Ces séquences espacées servent de mémoire pour les bactéries de tous les bactériophages qui ont déjà attaqué. Les bactéries utilisent des séquences espacées pour identifier et détruire rapidement l’ADN d’un type particulier de bactériophage s’il attaque à nouveau. Les transcrits de la région CRISPR sont traitées pour produire les molécules d’ARN CRISPR autour de 30 nucléotides de long qui contiennent la séquence d’espacement et la séquence de répétition bactérienne voisine.Les systèmes associés à CRISPR, ou à Cas, codent la protéine Cas. Cette protéine Cas s’associe ensuite à la molécule d’ARN CRISPR pour former un complexe ribonucléoprotéine. Lorsque le même type de bactériophage attaque à nouveau, son ADN est reconnu par sa séquence d’espacement spécifique présente dans l’ARN CRISPR.La protéine Cas associée, soit seule ou à l’aide de protéines multiples, coupe alors les deux brins de l’ADN du bactériophage. Les principes du système CRISPR Cas et de ses composants peuvent être utilisés pour le knock-down ou la modification d’un gène dans un organisme à l’aide de son ARN guide complémentaire. Différents types de système CRISPR Cas sont présents dans les bactéries et les archées.Parmi eux, le système CRISPR Cas9 est l’un des mieux étudiés et largement utilisés pour différentes applications pratiques car il peut être facilement et efficacement reprogrammé pour cibler différents gènes.

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CRISPR et crARNs

Les bactéries et les archées sont sensibles aux infections virales tout comme les eucaryotes ; par conséquent, elles ont développé un système immunitaire adaptatif unique pour se protéger. Des répétitions palindromiques courtes régulièrement espacées en cluster et des protéines associées à CRISPR (CRISPR-Cas) sont présentes dans plus plus de 45 % des bactéries connues et 90 % des archées connues.

Le système CRISPR-Cas stocke une copie de l’ADN étranger dans le génome de l’hôte et l’utilise pour identifier l’ADN étranger lors de la réinfection. CRISPR-Cas a trois étapes différentes pour attaquer un virus réinfectant. Au stade de l’acquisition, la région protospacer de l’ADN viral est clivée par les systèmes CRISPR. La région spécifique du protospacer est identifiée pour le clivage à l’aide d’un motif adjacent au protospacer (PAM) présent dans l’ADN viral cible. La séquence de protospacer clivée est ensuite incorporée dans le locus bactérien CRISPR.  Au stade de l’expression, les gènes CRISPR et CAS sont transcrits pour produire l’ARN pré-CRISPR (crRNA) et l’ARNm Cas. Le pré-crRNA est ensuite traité pour produire un crRNA mature. Au stade de l’interférence, l’ARNr et la protéine Cas traduite forment un complexe ribonucléoprotéique qui cible et clive l’ADN viral d’une manière spécifique à la séquence.

Les systèmes CRISPR-Cas peuvent être divisés en trois types distincts caractérisés par leurs types de protéines Cas. Dans les systèmes de type I, Cas3 a une activité hélicase ainsi qu’une activité nucléase. Plusieurs protéines Cas supplémentaires créent une cassure double brin dans l’ADN viral. Dans les systèmes de type II, la nucléase Cas9 agit seule pour cliver l’ADN. En plus de l’ARNcr, les systèmes de type II ont également de l’ARN CRISPR trans-activant (tracrRNA) qui est requis pour la maturation de l’ARNcr.  Dans les systèmes de type III, Cas10 a une fonction inconnue, mais comme le système de type I, il a besoin de plusieurs protéines pour le clivage de l’ADN. Le système de type III peut également cibler l’ARN pour le clivage. Les types I et III se trouvent à la fois chez les bactéries et les archées, tandis qu’à ce jour, le type II n’a été trouvé que chez les bactéries. Comparé aux techniques conventionnelles d’édition du génome telles que les enzymes de restriction, le système CRISPR-Cas est plus simple à utiliser et peut cibler plusieurs gènes dans la même expérience. par conséquent, il est devenu un puissant outil de génie génétique et est largement utilisé pour modifier le génome des organismes procaryotes et eucaryotes.

Leitura Sugerida

  1. Thurtle‐Schmidt, Deborah M., and Te‐Wen Lo. "Molecular biology at the cutting edge: a review on CRISPR/CAS9 gene editing for undergraduates." Biochemistry and Molecular Biology Education 46, no. 2 (2018): 195-205.
  2. Rath, Devashish, Lina Amlinger, Archana Rath, and Magnus Lundgren. "The CRISPR-Cas immune system: biology, mechanisms and applications." Biochimie 117 (2015): 119-128.
  3. Wang, Haifeng, Marie La Russa, and Lei S. Qi. "CRISPR/Cas9 in genome editing and beyond." Annual Review of Biochemistry 85 (2016): 227-264.
  4. Adli, Mazhar. "The CRISPR tool kit for genome editing and beyond." Nature Communications 9, no. 1 (2018): 1-13.