Summary

Civciv Embriyo Sinir İndüksiyon için Testi

Published: February 13, 2009
doi:

Summary

Sinir indüksiyon beyin oluşumunda ilk adımdır. Hensen düğüm (düzenleyen), sinir kaderi kabul komşu doku talimatını hangi bir mekanizma, yani sinir sistemi yol açmaları. Bu video civciv embriyo sinir indüksiyonu için bir test göstermektedir.

Abstract

Civciv embriyo erken embriyonik gelişim çalışmaya değerli bir araçtır. Şeffaflık, erişilebilirlik ve manipülasyon kolaylığı, sinir sisteminin oluşumu ve ilk desenlendirme çalışmak için ideal bir araçtır. Bu video bir konak içine greft düzenleyen doku Hensen s düğümü (civciv embriyo düzenleyen) bir yöntem olan bir ana yetkili ektoderm aşılı nasıl gösteriyor. Organizatörü greft dokusu, sinir indükleyici sinyalleri aracılığıyla bir sinir kaderi kabul ettik na örten bildirir. Bu mekanizma nöral indüksiyon olarak adlandırılır ve amniotları beyin ve omurilik oluşumunda ilk adım teşkil etmektedir. Bu yöntem aslında piliç varsayılan sinir indükleyici moleküllerin karakterizasyonu için kullanılır. Bu video tayininde sinir indüksiyonu için farklı adımları gösteriyor; İlk olarak, donnor embriyo eksplante ve bir çanak üzerine tutturulmuş. Sonra, ev sahibi embriyo Yeni kültür için hazırlanmıştır. Greft eksize ve ev sahibi pellusida marjı nakledilen. Ev sahibi 18-22 saat kültüre. Montaj sabit ve başka uygulamalar (örneğin in situ hibridizasyon) işlenir. Bu yöntem başlangıçta Waddington icat edildi<sup> 1,2</sup> Ve Gallera<sup> 3,4</sup>.

Protocol

I. Şematik Bakış: Bu video civciv embriyo sinir indüksiyonu için tahlil farklı adımları gösteriyor. İlk olarak, ana embriyo Yeni kültür eksplante [NI1]. Sonra, donnor embriyo tuzlu ve Hensen düğüm (civciv "organizatör") eksplante, floresan boya DII ile etiketlenmiş [NI2]. Hensen düğümünden donnor embriyo eksize [NI3] ve [NI4 ko…

Discussion

Bu video nöral indüksiyonu için bir test farklı adımları gösteriyor; Bu testte aslında piliç varsayılan sinir indükleyici moleküllerin karakterizasyonu için kullanılır ve böylece embriyolojik micromanipulations 1-4 arasında değişen çok çeşitli uygulamalar için kullanılabilir; 6 çözülüyor yeni sinyalizasyon kaskadlar 7,8, beyin oluşumu ve sinir sisteminin geri kalan ilk adım anlayışı hedefliyor.

Acknowledgements

DP Uyuşturucu İstismarı Ulusal Enstitüsü Ruth Kirschstein Ödülü 1F32 DA021977-01A1 alıcı. Bu çalışma, Margaret M. RHF Alkek Vakfı tarafından desteklenmiştir.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Eggs Animal Charles River Laboratories Premium Fertile Fertilized, HH3+ (14 hr)
Stereomicroscope Microscope Leica Microsystems MZ9.5 or similar  
Hybridization Incubator Equipment Robbins Scientific M1000 Use with inverted Pyrex dish and 500 ml ddH2O beaker
Marsh Automatic Incubator Equipment Lyon RX  
Pyrex dish        
Watchmaker’s glass 50mm Tool VWR 66112-060  
Glass rings Tool Physical Plant facility   cut 4 mm thick sections of glass tubing (27 mm outer diam, 25 mm inner diam). Do not fine polish.
Curved Forceps (1) Tool Electron Microscopy Sciences 72991-4C  
Forceps (2) Tool Fine Science Tools 11002-13 blunt ended using sharpening Stone and 100ul mineral oil
Fine scissors Tool Fine Science Tools 14161-10  
Plastic dishes Tool Falcon 353001  
Rubber Bulb Tool Electron Microscopy Sciences 70980  
DiI Reagent Invitrogen D-282  
Aspirator tube assembly Tool Sigma A5177-5EA  
Microelectrode puller Equipment Sutter Instruments Sutter Instruments P-97 Flaming/Brown Micropipette  
Pasteur Capillary Pipette Tool Electron Microscopy Sciences 70950-12 round edge under flame
Culture chamber Tool Pioneer Plastics 030C  
Microcapillary tube Tool Sigma P1049-1PAK  
Microdissecting knife Tool Fine Science Tools 10056-12 Use to puncture cavities prior to in situ hybridization
Minuten pins 0.2mm diam Tool Fine Science Tools 26002-20 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
Diethylpyrocarbonate (depc) Reagent Electron Microscopy Sciences 15710  
Sylgard 184 Silicon Elastomer Curing Agent and Base   Dow Corning 0001986475 Mix 1 part Curing Agent, 9 parts Base; set O/N at 37C
Diethylpyrocarbonate (depc)   Acros Organics 10025025 Add 1ml depc to 1l PBS; shake; autoclave
16% PFA   Electron Microscopy Sciences 15710  

Referências

  1. Waddington, C. H. Experiments on the development of chick and duck embryos, cultivated in vitro. Phil. Trans. R. Soc. Lond. B. 221, 179-230 (1932).
  2. Waddington, C. H. Induction by the primitive streak and its derivatives in the chick. J. Exp. Biol. 10, 38-46 (1933).
  3. Gallera, J. Excision et transplantation des diff&eacute;rentes r&eacute;gions de la ligne primitive chez le poulet. C. R. Ass. Anat. 49, 632-639 (1964).
  4. Gallera, J. Primary induction in birds. Adv. Morph. 9. , 149-180 (1971).
  5. Serbedzija, G. N., Fraser, S. E., Bronner-Fraser, M. Pathways of neural crest cell migration in the mouse embryo as revealed by vital dye labeling. Development 108. , 605-612 (1990).
  6. Psychoyos, D., Stern, C. D. Restoration of the organizer after radical ablation of Hensen’s node and the anterior primitive streak in the chick embryo. Development 122. , 3263-3273 (1996).
  7. Joubin, K., Stern, C. D. Molecular interactions continuously define the organizer during the cell movements of gastrulation. Cell. 98, 559-571 (1999).
  8. Streit, A., Berliner, A. J., Papanayotou, C., Sirulnik, A., Stern, C. D. Initiation of neural induction by FGF signaling before gastrulation. Nature. , 406-474 (2000).
  9. Psychoyos, D., Finnell, R. Method for Culture of Early Chick Embryos ex vivo (New Culture. JoVE. 20, 10-3791 (2008).

Play Video

Citar este artigo
Psychoyos, D., Finnell, R. Assay for Neural Induction in the Chick Embryo. J. Vis. Exp. (24), e1027, doi:10.3791/1027 (2009).

View Video