Summary

Elektrofysiologische methoden voor opname Synaptic Potentials van de NMJ van Drosophila Larven

Published: February 06, 2009
doi:

Summary

Hier beschrijven we elektrofysiologische methoden voor het meten van synaptische transmissie bij de neuromusculaire junctie van Drosophila larve. Evoked release wordt kunstmatig geïnitieerd door het stimuleren van de motorische neuron axonen, en de transmissie door middel van de NMJ kan worden gemeten door de postsynaptische respons opgeroepen in de spier.

Abstract

In deze video, beschrijven we de elektrofysiologische methoden voor het opnemen van synaptische transmissie bij de neuromusculaire junctie (NMJ) van Drosophila larve. Het larvale neuromusculaire systeem is een model synaps voor de studie van synaptische fysiologie en neurotransmissie, en is een waardevol onderzoeksinstrument dat heeft gedefinieerd genetica en is toegankelijk voor experimentele manipulatie. Larven kunnen worden ontleed om het lichaam muur spieren, het centraal zenuwstelsel en perifere zenuwen bloot te leggen. De spieren van Drosophila en hun innervatie patronen zijn goed gekarakteriseerd en de spieren zijn gemakkelijk te bereiken voor de intracellulaire opname. Individuele spieren kunnen worden geïdentificeerd door hun locatie en oriëntatie binnen de 8 buik-segmenten, elk met 30 spieren gerangschikt in een patroon dat wordt herhaald in segmenten A2 – A7. Ontleed Drosophila larven zijn dun en individuele spieren en bundels van de motor neuron axonen kan worden gevisualiseerd door transilluminatie<sup> 1</sup>. Transgene constructen kunnen worden gebruikt om de doelcellen voor visuele identificatie of voor het manipuleren van genproducten in specifieke weefsels label. In larven, zijn prikkelende knooppunt potentials (EJPs) gegenereerd in reactie op de vesiculaire afgifte van glutamaat uit de motoneuronen in de synaps. In ontleed larven, kan het EJP worden opgenomen in de spier met een intracellulaire elektrode. Actiepotentialen kan kunstmatig worden opgeroepen de motorische neuronen die zijn gesneden posterior aan de ventrale ganglion, getrokken in een glazen pipet met zachte zuigkracht en gestimuleerd met een elektrode. Deze motor neuronen hebben verschillende vuren drempels bij het gestimuleerd, en als ze tegelijkertijd vuur, genereren ze een reactie in de spier. Signalen over de NMJ synaps kunnen worden opgenomen in de spieren die de motor neuronen innerveren. De EJPs en miniatuur prikkelende knooppunt potentials (mEJPs) worden beschouwd als veranderingen in de membraanpotentiaal. Elektrofysiologische reacties worden geboekt bij kamertemperatuur in gewijzigde minimale hemolymfe-achtige oplossing<sup> 2</sup> (HL3) die 5 mM Mg bevat<sup> 2 +</sup> En 1,5 mM Ca<sup> 2 +</sup>. Veranderingen in de amplitude van de opgeroepen EJPs kan duiden op verschillen in de synaptische functie en structuur. Gedigitaliseerde opnames worden geanalyseerd op EJP amplitude, mEJP frequentie en amplitude, en quantale inhoud.

Protocol

Voordat u begint te bereiden: Wandering yhird instar Drosophila larven HL3.1 (Gewijzigd hemolymfe-achtige)-oplossing Sylgard (transparant silicone rubber) dissectie platen bereid in kleine (35 x 10 mm) plastic petrischaaltjes met behulp van methoden beschreven door Brent en McCabe (2008) 3. Snijd dissectie pinnen kort Elektrode pipetten Scherpe opname pipetten HL3 Oplossing: Tijdens de dissecties en elek…

Discussion

De hier beschreven methoden zorgen voor een relatief snelle en brede manier om veranderingen in de synaptische functie te detecteren in de NMJ. De mogelijkheid om opnamen met behulp van elektrofysiologische intacte dieren uit te voeren in vivo, en het uitvoeren van genetische of farmacologische manipulatie, maken Drosophila een ideale diermodel voor onderzoek naar de fysiologische en genetische aspecten van neurotransmissie.

Omdat spiercellen zijn zeer groot, kunnen de voorkeur aan een extra…

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Small Petri dishes (35 x 10 mm)   Becton Dickinson 1008  
SYLGARD 182 Silicone Elastomer Kit   Dow Corning Corporation 3097366-1004  
Dissecting microscope   Carl Zeiss 475002-9902  
Light for microscope   Schott KLI500  
Dissection pins   Fine Science Tools 26002-10  
pClamp 9 software   Axon CNS, Molecular Devices PCLAMP 9 STANDARD  
Dissection scissors: 3mm Vannas Spring Scissors   Fine Science Tools 15000-0  
Dumont SS Forceps   Fine Science Tools 11200-33  
Dumont #5 Forceps   Fine Science Tools 11252-20  
Thin-walled borosilicate glass capillaries, with filament (1.0 mm, 4 in)   World Precision Instruments, Inc. TW100F-4  
Borosilicate glass capillaries, with filament (1.2 mm, 4 in)   World Precision Instruments, Inc. 1B120F-4  
Sutter P-2000 Laser Based Micropipette Puller   Sutter Instruments Model P-2000  
Pipette polisher   Narishiga MF-83  
Axon HS-2A head stage   Axon CNS, Molecular Devices Model HS-2A  
Micromanipulators   Sutter Instruments MP-85  
Axoclamp 2B amplifier   Axon CNS, Molecular Devices AXOCLAMP 2B  
Clampex Software   Axon CNS, Molecular Devices v 8.2.0.235  
Mini analysis software. v 6.0.3   Synaptosoft    
Brownlee Precision Amplifier   Brownlee Model 410  
NaCl   Baker 4058-01  
KCl   Sigma p-9333  
NaHCO3   Sigma s6297-1kg  
Trelahose   Sigma TO167  
Sucrose   Fisher bp220-212  
HEPES   Sigma h-3375  
MgCl-6H2O   Sigma m2670-1kg  
CaCl2   Fisher c79-500  
Master-8 Pulse Generator   A.M.P.I    
Vibration table for electrophysiology set up   Technical manufacturing corporation    
Faraday Cage        

Referências

  1. Atwood, H. L., Govind, C. K., Wu, C. F. Differential ultrastructure of synaptic terminals on ventral longitudinal abdominal muscles in Drosophila larvae. J. Neurobiol. 24 (8), 1008-1024 (1993).
  2. Feng, Y., Ueda, A., Wu, C. F. A modified minimal hemolymph-like solution, HL3.1, for physiological recordings at the neuromuscular junctions of normal and mutant Drosophila larvae. J Neurogenet. 18 (2), 377-402 (2004).
  3. Estes, P. S., Roos, J., van der Bliek, A., Kelly, R. B., Krishnan, K. S., Ramaswami, M. Traffic of dynamin within individual Drosophila synaptic boutons relative to compartment-specific markers. J Neurosci. 16, 5443-5456 (1996).
  4. Brent, J. R., Werner, K. M., McCabe, B. D. Protocol for dissection of Drosophila larvae. J Vis Exp. , (2008).
  5. Jan, L. Y., Jan, Y. N. Properties of the larval neuromuscular junction in Drosophila melanogaster. J Physiol (Lond). 262, 189-214 (1976).
  6. Katz, L. C., Shatz, C. J. Synaptic activity and the construction of cortical circuits. Science. 274, 1133-1138 (1996).
check_url/pt/1109?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Imlach, W., McCabe, B. D. Electrophysiological Methods for Recording Synaptic Potentials from the NMJ of Drosophila Larvae. J. Vis. Exp. (24), e1109, doi:10.3791/1109 (2009).

View Video