Summary

Tillverkning av Myogenic vävnadstekniska Konstruerar

Published: May 01, 2009
doi:

Summary

Här visar vi tillverkning av kollagen-baserade konstruktioner vävnad innehåller skelett myoblasts. Dessa 3-D-tillverkade konstruktioner kan användas för att ersätta eller reparera vävnader<em> In vivo</em>. För våra syften har vi utformat dessa som en atrioventrikulärt elektriska isolerrör för reparation av kompletta hjärtblock<sup> [1]</sup>.

Abstract

Trots att elektroniska pacemaker är livräddande medicinsk utrustning, kan deras långsiktiga resultat hos barn vara problematisk på grund av de begränsningar som ett barns lilla storlek och deras oundvikliga tillväxt. Följaktligen finns det ett verkligt behov av innovativa terapier som utformats speciellt för barn med hjärtrytm störningar. Vi föreslår att en ledande biologiskt alternativ som består av en kollagenbaserade matris som innehåller autologously som härrör cellerna bättre kan anpassa sig till tillväxten, minska behovet av återkommande operationer, och avsevärt förbättra livskvaliteten för dessa patienter. I den aktuella studien beskriver vi en metod för att införliva primär skelett kulturer myoblast cell inom en hydrogel matris till mode ett kirurgiskt implanterbara vävnad konstruktion som kommer att fungera som en elektrisk ledning mellan övre och undre kammare i hjärtat. I slutändan räknar vi använda denna typ av vävnadstekniska att återställa atrioventrikulär elektrisk ledningsförmåga hos barn med komplett hjärtblock. Med tanke på att isolera vi myoblasts från skelettmuskulaturen av neonatal Lewis råttor och platta ut dem på laminin-belagd vävnadsodling rätter med hjälp av en modifierad version av fastställda protokoll<sup> [2, 3]</sup>. Efter en till två dagar, odlade celler samlas och blandas med antibiotika, typ 1 kollagen, Matrigel ™ och NaHCO<sub> 3</sub>. Resultatet är en trögflytande, enhetlig lösning som kan gjutas i en form av nästan alla former och storlekar<sup> [1, 4, 5]</sup>. För våra vävnad konstruktioner, sysselsätter vi typ 1 kollagen isolerade från foster lamm huden med hjälp av standardprocedurer<sup> [6]</sup>. När vävnad har stelnat vid 37 ° C, odlingssubstrat försiktigt läggas på plattan tills konstruktion är under vatten. Den vävnadstekniska får sedan ytterligare kondensera genom uttorkning i 2 dagar, då den är klar för<em> In vitro</em> Bedömning eller kirurgisk implantation.

Protocol

Del 1: Montera bygga gjutformar Använd ett rakblad för att halvera silikonslang (VWR) och skär den i 3 cm långa bitar. Placera en droppe implantat-grade RTV silikon lim (Rhodia) på insidan av vardera änden av slangen. Snabbt placera en liten bit (1 cm x 1 cm) av polyester mesh (McMaster-Carr) på silikonytskikt sjunka och rikta in det mot slutet av slangen. Detta kommer att ge en något höjd och plan yta för att konstruera fäste. Upprepa för den andra änden. Låt forme…

Discussion

De formar i vilka vävnaden bygga kommer att kastas kan göras i någon form och storlek, men det måste finnas minst två fästpunkter. Annars matrisen och cellerna bildar en sfärisk struktur och cellerna dör. I det nuvarande protokollet beskriver vi användandet av en polyester mesh för detta ändamål, men vi har även framgångsrikt använt rostfritt stål. Självklart kommer större formar kräver mer celler och en större volym av de andra ingredienserna. Vid formarna är det viktigt att minimera mängden av si…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Detta arbete stöds av forskningsanslag från National Institutes of Health (HL068915, HL088206), en ny forskare Award från Thrasher Research Fund, och bidrag till hjärtöverledning fonden vid barnsjukhuset Boston.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Silicone tubing   VWR 60985-724  
Silicone adhesive   Rhodia Silicones MED ADH 4300 RTV  
Polyester Mesh   McMaster-Carr 93185T17  
Laminin   Sigma L2020  
Nutrient Mixture F-10 HAM   Sigma N6908  
Fetal Bovine Serum   Atlanta Biologicals S11550  
Penicillin/Streptomycin   Invitrogen 15140  
Fungizone   Invitrogen 15290-018  
Dispase-2   Roche 10295825001  
Collagenase 2   Worthington 46H8863  
Basic Fibroblast Growth Factor   Promega G5071  
150 mm tissue culture dishes   BD Falcon 353025  
0.05% (1X) Trypsin-EDTA   Gibco 25300  
1X Hanks Balanced Salt Solution   Invitrogen 14170-112  
7.5% NaHCO3   Gibco 25080-094  
70 μm cell strainer   BD Falcon 352350  
6-well plates   BD Falcon 353046  
50 mL Conical Vial   BD Falcon 352098  
15 mL Conical Vial   BD Falcon 352099  
0.2 μm filter   Nalgene 194-2520  

Referências

  1. Choi, Y. H. Cardiac conduction through engineered tissue. Am J Pathol. 169 (1), 72-85 (2006).
  2. Rando, T. A., Blau, H. M. Primary mouse myoblast purification, characterization, and transplantation for cell-mediated gene therapy. J Cell Biol. 125 (6), 1275-1287 (1994).
  3. Blau, H. M., Webster, C. Isolation and characterization of human muscle cells. Proc Natl Acad Sci U S A. 78 (9), 5623-5627 (1981).
  4. Powell, C. Tissue-engineered human bioartificial muscles expressing a foreign recombinant protein for gene therapy. Hum Gene Ther. 10 (4), 565-577 (1999).
  5. Vandenburgh, H. Tissue-engineered skeletal muscle organoids for reversible gene therapy. Hum Gene Ther. 7 (17), 2195-2200 (1996).
  6. Gallop, P. M., Seifter, S. Preparation and Properties of Soluble Collagens. Methods in Enzymology. 6, 635-641 (1963).
check_url/pt/1137?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Pacak, C. A., Cowan, D. B. Fabrication of Myogenic Engineered Tissue Constructs. J. Vis. Exp. (27), e1137, doi:10.3791/1137 (2009).

View Video