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Artigo de método

Vivem de imagem do cérebro Zebrafish embrionárias por microscopia confocal

18.8K visualizações

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DOI:

10.3791/1217

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1 de abril de 2009

 , 

Neste artigo

Resumo

Neste vídeo, demonstramos um método pelo qual para analisar o cérebro em desenvolvimento em embriões vertebrados zebrafish viver em resolução única célula por microscopia confocal. Isso inclui o método pelo qual injetamos o embrião do zebrafish de uma única célula e, posteriormente, montar e imagem do cérebro em desenvolvimento.

Resumo

Neste vídeo, demonstramos o método de nosso laboratório tem desenvolvido para analisar as mudanças de células forma e rearranjos necessários para dobrar e dobrar o cérebro zebrafish em desenvolvimento (Gutzman et al, 2008). Essa análise permite uma nova compreensão da biologia das células subjacentes necessários para o desenvolvimento da estrutura 3D do cérebro de vertebrados, e aumenta significativamente a nossa capacidade de estudar a morfogênese do tubo neural. O cérebro zebrafish embrionárias é moldada a partir das 18 horas pós-fertilização (hpf) como os ventrículos dentro do neuroepitélio inflar. Por 24 hpf, os passos iniciais da morfogênese do tubo neural estão completos. Usando o método descrito aqui, embriões em fase de uma célula são injetados com a codificação do mRNA membrana-alvo a proteína verde fluorescente (memGFP). Após a injeção e de incubação, o embrião, agora entre 18 e 24 hpf, é montado, invertido, em agarose e visualizados por microscopia confocal. Nomeadamente, o embrião do zebrafish é transparente tornando-se um sistema ideal para imagens fluorescentes. Enquanto nossas análises se concentraram na fronteira mesencéfalo e rombencéfalo o rombencéfalo, este método pode ser estendido para a análise de qualquer região do peixe-zebra a uma profundidade de 8-10 mM.

Protocolo

1. Preparando o mRNA para Injeção

  1. O mRNA utilizado neste procedimento é transcrito a partir de um plasmídeo CAAX-eGFP (memGFP) mRNA. Primeira linearizar o plasmídeo de acordo com Gutzman et al, 2008.
  2. Em seguida, transcrever mRNA memGFP usando o mMessage mMachine kit.
  3. Diluir o mRNA resultante para 1μg/μl, alíquota, e armazenar a -80 ° C.
  4. Prepare um molde de injeção de agarose 1% com faixas da largura de embriões no estágio uma célula.
  5. No dia antes da injeção, criada gaiolas de acasalamento separar o macho das fêmeas.
  6. No dia da injeção, agulhas de puxar capilar utilizando um extrator micropipeta para se prepa....

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Discussão

Neste vídeo, demonstramos um método para injeção de mRNA em embriões de peixe-zebra única célula. Aqui, usamos mRNA que codifica uma membrana GFP-alvo para rotular cada célula. Nós, então, demonstrar como montar e imagem do cérebro em desenvolvimento na resolução única célula. Esta técnica permitiu-nos a estudar um novo tipo de célula mudar de forma, a constrição basal, necessária para a formação da fronteira mesencéfalo rombencéfalo (Gutzman et al, 2008). Análise semelhante de outros fenômenos tem o potencial para expa.......

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Agradecimentos

Muito obrigado a Dr. Jennifer Gutzman quem primeiro desenvolveu essa técnica no laboratório Sive. Graças também ao JB Verde no Dana-Farber Cancer Institute em Boston, MA que gentilmente forneceu o plasmídeo CAAX-GFP mRNA. A imagem confocal foi realizada na Fundação WM Keck Facilidade de imagem Biológicas da Whitehead. HS é suportada por NIHMH70926. EG é apoiado por uma bolsa NSF pré-doutoramento.

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Materiais

Lista de materiais utilizados neste artigo
NomeEmpresaNúmero de catálogoComentários
Agarose SeaKem GTG ReagenteLonza Inc.50027
Éster etílico do ácido 3-aminobenzoico (Tricaine)ReagenteSigma-AldrichA-5040
Tubos capilaresFerramentaFrederick Haer and Co.30-30-1Borosil 1,0 mm OD x 0,5 mm ID/fibra 100 mm
Graxa de silicone para vácuoReagenteVWR internationalW0S717
PincetaFerramentaFine Science Tools11232-20Dumont nº 5 Bio Inox
Pontas de pipeta 1-200 μlFerramentaUSA Scientific, Inc.111-0806Este é o tamanho correto para embriões com 24 hpf.
Kit de transcrição mMessage mMachineReagenteAmbionAM1340Polimerase SP6 de RNA
Microscópio confocal de varredura Zeiss LSM 510MicroscópioCarl Zeiss, Inc.
MicromanipuladorFerramentaNarishige International
MicroinjetorFerramentaHarvard ApparatusPLI-100
Puxador de micropipetasFerramentaSutter Instrument Co.

Referências

  1. Gutzman, J. H., Graeden, E., Sive, H. Formation of the zebrafish midbrain-hindbrain boundary constriction requires laminin-dependent basal constriction. Mech Dev. 125 (974), 11-12 (2008).
  2. Westerfield, M. The Zebrafish Book: a Guide for the Laborat....

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Reimpressões e permissões

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