Summary

Imaging Exocytose in Retinal bipolaren Zellen mit TIRF-Mikroskopie

Published: June 09, 2009
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Summary

In diesem Video zeigen wir, wie Label und visualisieren einzelne synaptische Vesikel Exozytose und Menschenhandel in Goldfische Netzhaut bipolaren Zellen mit insgesamt internen Reflexion Fluoreszenz (TIRF)-Mikroskopie.

Abstract

Insgesamt internen Reflexion Fluoreszenz (TIRF)-Mikroskopie ist eine Technik, dass die Studie die Geschehnisse an der Zellmembran ermöglicht, durch selektive Darstellung von fluoreszierenden Molekülen, die zu einem hohen Brechungsindex Substanz wie Glas am nächsten sind,<sup> 1</sup>. In diesem Artikel wenden wir diese Technik, um Bild Exozytose synaptischer Vesikel in der Netzhaut bipolaren Zellen aus dem Goldfisch Netzhaut isoliert. Diese Neuronen sind sehr geeignet für diese Art der Studie aufgrund ihrer großen Axonterminalen. Durch die gleichzeitige Patch-Clamp der bipolaren Zellen, ist es möglich, die Beziehung zwischen präsynaptischen Spannung und synaptische Freisetzung untersuchen<sup> 2,3</sup>. Synaptischer Vesikel innerhalb der bipolaren Zellen Terminals sind mit einem Fluoreszenzfarbstoff (FM 1-43 ®) von geladenen Co-schnaufend dem Farbstoff und einem Ringer-Lösung mit einem hohen K<sup> +</sup> Konzentration auf die synaptischen Terminals. Dies depolarisiert die Zellen und regt die Endozytose und damit Farbstoffaufnahme in die glutamaterge Vesikel. Nach dem Waschen der überschüssige Farbstoff entfernt für etwa 30 Minuten werden die Zellen bereit für sein Patch gespannt und bebildert gleichzeitig mit einem 488 nm-Laser. Die Patch-Pipette Lösung enthält ein Rhodamin-basierte Peptid, das selektiv an den synaptischen Bandes Protein RIBEYE<sup> 4</sup>, Damit die Kennzeichnung Bänder speziell, wenn die Klemmen mit einem 561 nm Laser abgebildet werden. Dies ermöglicht die genaue Lokalisierung der aktiven Zonen und die Trennung von synaptischen aus extra-synaptischen Ereignisse.

Protocol

Teil 1: Dissection und Bipolar Zellisolation Bereiten Sie Lösungen in Tabelle 2 aufgeführt; Der pH-Wert von Beringer "(extern)-Lösungen sollten mit NaOH auf 7,4 eingestellt und der pH-Wert der internen Lösung sollte auf 7,2 mit CsOH eingestellt werden. Schützen interne Lösung vor Licht mit Alufolie und halten Sie sie bei 4 ° C bis zur Verwendung; Dark-Anpassung einen Goldfisch für mindestens 30 Minuten vor der Dissektion; Während das Tier dunkel passt, bereiten 5 mL der Hyalu…

Discussion

Die Vorteile der Ziel-Typ TIRF-Mikroskopie werden, dass 1) es hervorragende optische Schnitte bietet durch die Beschränkung Anregungslicht auf einen schmalen Bereich in der Brennebene des Objektivs und minimiert dadurch out-of-focus Licht, 2), da Licht fällt exponentiell mit der Entfernung kann eine Bewegung in vertikaler Richtung als eine Änderung in der Fluoreszenz-Intensität überwacht werden; 3) effiziente Lichtausbeute durch die hohe numerische Apertur Ziel 1,5.

Der größte Nachteil dieser Technik ist, dass es z…

Acknowledgements

Diese Arbeit wurde vom NIH Grant EY 14990 unterstützt.

Referências

  1. Axelrod, D. Total internal reflection fluorescence microscopy in cell biology. Traffic. 2, 764-774 (2001).
  2. Zenisek, D., Steyer, J. A., Almers, W. Transport, capture and exocytosis of single synaptic vesicles at active zones. Nature. 406, 849-854 (2000).
  3. Zenisek, D. Vesicle association and exocytosis at ribbon and extraribbon sites in retinal bipolar cell presynaptic terminals. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 105, 4922-4927 (2008).
  4. Zenisek, D., Horst, N. K., Merrifield, C., Sterling, P., Matthews, G. Visualizing synaptic ribbons in the living cell. J. Neurosci. 24, 9752-9759 (2004).
  5. Axelrod, D. Selective imaging of surface fluorescence with very high aperture microscope objectives. J. Biomed. Opt. 6, 6-13 (2001).
  6. Rouze, N. C., Schwartz, E. A. Continous and transient vesicle cycling at a ribbon synapse. J. Neurosci. 18, 8614-8624 (1998).
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Citar este artigo
Joselevitch, C., Zenisek, D. Imaging Exocytosis in Retinal Bipolar Cells with TIRF Microscopy. J. Vis. Exp. (28), e1305, doi:10.3791/1305 (2009).

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