Summary

مكتبة كبيرة إدراج الجينوم البيئية الإنتاج

Published: September 23, 2009
doi:

Summary

يوصف بناء مكتبة fosmid مع الحمض النووي الجيني البيئية معزولة عن عمق التواصل الرأسي لالمضيق البحري ميتة موسميا. يتم اختيار مكتبة استنساخ الناتج إلى 384 لوحات وكذلك المحفوظة في التسلسل الوظيفي المصب والفرز من تطبيق نظام اختيار مستعمرة الآلي.

Abstract

الغالبية العظمى من الميكروبات في الطبيعة تبقى غير قابلة للوصول في الوقت الراهن لأساليب الزراعة التقليدية. على مدى العقد الماضي ، والثقافة المستقلة الجينومية البيئية (<em> أي</emبرزت> metagenomic) النهج ، وتمكين الباحثين من سد هذه الفجوة من خلال زراعة التقاط المحتوى الجيني للمجتمعات الميكروبية الأصلية مباشرة من البيئة. ولهذه الغاية ، هي التي شيدت المكتبات الحمض النووي الجيني باستخدام معيار وإن كان داهية تقنيات الاستنساخ المختبر. نحن هنا وصف لبناء مكتبة كبيرة تضاف الجينومية البيئية fosmid مع الحمض النووي المستمدة من عمق التواصل الرأسي لالمضيق البحري ميتة موسميا. ويرتبط هذا البروتوكول مباشرة على سلسلة من البروتوكولات مرتبطة بما في ذلك أخذ عينات المياه الساحلية البحرية [1] ، والترشيح كمية كبيرة من الكتلة الحيوية الميكروبية [2] ، واستخراج الحمض النووي والبروتوكول تنقية [3]. في البداية ، وارتفاع الحمض النووي الجيني نوعية نهاية اصلاحها مع إنشاء 5 – فسفرته ينتهي حادة. يخضع نهاية إصلاح الحمض النووي لهلام إستشراد نابض الميدان (PFGE) لاختيار الحجم ويتم تنفيذ استخراج الهلام لاسترداد شظايا الحمض النووي بين 30 و 60 ألف زوج قاعدة (ك) في الطول. يتم تنقية الحمض النووي بعيدا عن تحديد حجم المصفوفة هلام PFGE وligated لمعاملة فظة الفوسفاتيز نهاية fosmid pCC1 ناقلات CopyControl (EPICENTRE<a href="http://www.epibio.com/item.asp?ID=385"> http://www.epibio.com/item.asp؟ID=385</a>). concatemers pCC1 خطية من والدنا وتضاف لاحقا headfull حزم جسيمات في فج من قبل terminase امدا ، مع الإصابة اللاحقة مقاومة بالعاثية<em> E. القولونية</em> الخلايا. يتم استرداد استنساخ transduced بنجاح على لوحات أجار LB تحت اختيار المضادات الحيوية والمؤرشفة في 384 لوحة كذلك تنسيق باستخدام مستعمرة الروبوت الآلي قطف (Qpix2 ، GENETIX). البروتوكول الحالي يستمد من مصادر مختلفة بما في ذلك طقم Fosmid CopyControl إنتاج مكتبة من EPICENTRE والأعمال المنشورة للمجموعات بحثية متعددة [4-7]. يتم تقديم كل خطوة مع أفضل الممارسات في الاعتبار. كلما كان ذلك ممكنا نبرز الدقيقة في التنفيذ لتحسين الجودة الكلية وكفاءة الإنتاج المكتبة. كامل عملية الإنتاج الآلي والمكتبة fosmid اختيار مستعمرة يستغرق ما لا يقل عن 7-10 أيام وهناك خطوات عديدة شملت حضانة. ومع ذلك ، هناك العديد من نقاط التوقف المحتملة التي يتم المذكورة في البروتوكول.

Protocol

وقد تم تقسيم المكتبة Fosmid البناء في أربع خطوات رئيسية وفرعية مقسمة إلى عدة أجزاء (انظر Fig.1 لمحة عامة). الخطوة الأولى (راجع "استخراج الحمض النووي من 0.22 ميكرومتر مرشحات Sterivex" بروتوكول [3]) <p class="jove_step" style=";text-align:right;direction:rt…

Discussion

ووصف الإجراء كيفية بأكبر قدر من الكفاءة إنشاء مكتبة واسعة مع إدراج fosmid الحمض النووي الجيني المستمدة من عينة المياه الساحلية. يوصف أعلى المصب استخراج الحمض النووي الجيني في بروتوكول منفصل [3].

حيث بلغ الإنتاج fosmid مكتبة هي متعددة ال…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

نود أن نشكر المؤسسة الكندية للإبداع ، ومعارف كولومبيا البريطانية وصندوق التنمية الوطنية للعلوم والهندسة مجلس البحوث (NSERC) من كندا لدعم الدراسات الجارية على المناطق المنخفضة من الأوكسجين مياه المحيطات والمناطق الساحلية المفتوحة. ودعمت طن متري والزمالات التي SL من مركز تولا مؤسسة ممولة للتنوع وتطور الميكروبية (CMDE). كما تلقى دعم MT الزمالة من جمعية الألمانية للبحوث (DFG).

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Step II        
CopyControl™ Fosmid Library Production Kit   EPICENTRE CCFOS110 sufficient to generate 9-10 fosmid libraries
SeaPlaque Agarose   Cambrex 50100  
stirring hot plate   Corning PC-420D  
1.0X TAE running buffer        
CHEF Mapper XA pulsed field electrophoresis system including cooling module and variable speed pump   Bio-Rad    
λ DNA-HindIII Digest   NEB N3012S  
MidRange I PFG Marker   NEB N3551S  
10,000X SYBR Gold   Invitrogen S11494  
microwavable plastic wrap   Saran premium wrap    
Safe Imager transilluminator   Invitrogen S37102  
GELase Agarose Gel-Digesting Preparation   EPICENTRE G09100  
scalpel   Fisher Scientific 08-927-5D  
Amicon Ultra-4 Centrifugal Filter Unit with Ultracel-10 membrane   Millipore UFC801024  
Microcon YM-30 Centrifugal Filter Unit   Millipore 42410  
nuclease free water   Ambion AM9932  
Quant-iT PicoGreen dsDNA Assay Kit *2000 assays*#   Invitrogen P7589  
digital dry block heater   VWR 12621-088  
water bath   VWR 14231-854  
centrifuge   Beckman Coulter Avanti J-E  
centrifuge rotor   Beckman Coulter JA 5.3  
table top centrifuge   Eppendorf 5415D  
microcentrifuge tubes, 1.7 mL, clear   Axygen MCT-175-C  
15 mL centrifuge tubes   Fisher-Corning 430052  
Step III        
LB broth   Fisher Scientific BP 1426-2  
MgSO4   Sigma-Aldrich M2643  
phage dilution buffer       10 mM Tris-HCl [pH 8.3], 100 mM NaCl, 10 mM MgCl2
cryogenic vials   Fisher-Corning 430488  
Step IV        
96 well plate with lid   Fisher-Corning CS003370(3370)  
384 well plate with lid   Fisher-Corning 07201157(3680)  
Petri dishes 100 O.D. x 15mm H   Fisher 08-757-12  
Petri dishes 150 Dia. x 15mmH   Fisher 08-757-14  
BD Falcon BioDish XL 245 X 245 mm   VWR CABD351040  
glycerol   Sigma-Aldrich G5516  
chloramphenicol   Sigma-Aldrich C0378  
LB broth   Fisher Scientific BP 1426-2  
Difco Agar   BD 214530  
glass beads   Fisher Scientific 10-310-1  
QFill3   Genetix X3050  
Bleach   Javex    
Ethanol   Sigma-Aldrich E7023  
15 mL centrifuge tubes   Fisher-Corning 430052  
QPix colony picker   Genetix QPix2  
picking head (E. coli)   Genetix X4006  

Referências

  1. Zaikova, E., Hawley, A., Walsh, D. A., Hallam, S. J. Seawater sampling and. J Vis Exp. , (2009).
  2. Walsh, D. A., Zaikova, E., Hallam, S. J. Large volume (20L+) filtration of coastal seawater samples. J Vis Exp. 28, (2009).
  3. Wright, J. J., Lee, S., Zaikova, E., Walsh, D. A., Hallam, S. J. DNA Extraction from 0.22 μM Sterivex Filters and Cesium Chloride Density Gradient Centrifugation. J Vis Exp. 31, 10-3791 (2009).
  4. Stein, J. L., Marsh, T. L., Wu, K. Y., Shizuya, H., DeLong, E. F. Characterization of uncultivated prokaryotes: isolation and analysis of a 40-kilobase-pair genome fragment from a planktonic marine archaeon. J. Bacteriol. 178, 591-599 (1996).
  5. Béjà, O., Suzuki, O., Koonin, M. T., Aravind, E. V., Hadd, L., Nguyen, L. P. A., Villacorta, R., Amjadi, M., Garrigues, C., Jovanovich, S. B., Feldman, R. A., DeLong, E. F. Construction and analysis of bacterial artificial chromosome libraries from a marine microbial assemblage. Environ. Microbiol. 2, 516-529 (2000).
  6. DeLong, E. F., Preston, C. M., Mincer, T., Rich, V., Hallam, S. J., Frigaard, N. -. U., Martinez, A., Sullivan, M. B., Edwards, R., Brito, B. R., Chisholm, S. W., Karl, D. M. Community genomics among stratified microbial assemblages in the Ocean’s interior. Science. 311, 496-503 (2006).
  7. Hallam, S. J., Putnam, N., Preston, C. M., Detter, J. C., Rokhsar, D., Richardson, P. M., DeLong, E. F. Reverse methanogenesis: testing the hypothesis with environmental genomics. Science. 305, 1457-1462 (2004).
check_url/pt/1387?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Taupp, M., Lee, S., Hawley, A., Yang, J., Hallam, S. J. Large Insert Environmental Genomic Library Production. J. Vis. Exp. (31), e1387, doi:10.3791/1387 (2009).

View Video