Summary

L'instillation trachéale directe des solutés dans les poumons de souris

Published: August 29, 2010
doi:

Summary

Instillations intratrachéale offrir solutés directement dans les poumons. Cette procédure vise la livraison de l'instillation dans les régions distales du poumon, et est donc souvent incorporées dans des études visant à étudier les alvéoles. Nous fournissons un protocole de survie détaillées pour effectuer des instillations intra-trachéale chez les souris.

Abstract

Instillations intratrachéale offrir solutés directement dans les poumons. Cette procédure vise la livraison de l'instillation dans les régions distales du poumon, et est donc souvent incorporées dans des études visant à étudier les alvéoles. Nous fournissons un protocole de survie détaillées pour effectuer des instillations intra-trachéale chez les souris. En utilisant cette approche, on peut cibler la livraison des solutés de test ou des solides (comme les traitements du poumon, tensioactifs, les virus et les oligonucléotides de petite taille) dans le poumon distal. Instillations trachéales peut être la méthode privilégiée, sur les protocoles d'inhalation qui peut ciblent principalement les voies respiratoires supérieures et peut exposer le chercheur à des substances potentiellement dangereuses. En outre, en utilisant le protocole d'instillation trachéale, les animaux peuvent se remettre complètement de la procédure non-invasive. Cela permet de faire suite des mesures physiologiques sur les animaux d'essai, ou à la réinstallation en utilisant le même animal. Le montant de l'instillation introduit dans les poumons doit être soigneusement déterminé et osmotiquement équilibrée pour assurer la récupération des animaux. Typiquement, le volume de 30 à 75 uL instillation peuvent être introduits dans des poumons de souris.

Protocol

1. L'anesthésie Anesthésier les souris avec de l'isoflurane peut faciliter la manipulation des animaux et à la retenue avant d'administrer l'anesthésie intraperitaneally. En utilisant un anesthésique par inhalation peut être ou ne pas être approprié pour une étude particulière: d'abord déterminer l'impact de l'utilisation de l'isoflurane, ou tout autre anesthésique, sur l'étude des poumons proposé. Anesthetize animaux à l'isoflurane. La vidéo m…

Discussion

Instillations intra-trachéale ont été utilisées dans plusieurs études différentes pour évaluer la toxicité des composés d'essai (6), induisent des lésions pulmonaires alvéolaires (4, 7), remplacer les tensioactifs (8), ainsi que de modifier l'expression des gènes via la livraison de petits oligonucleotides directement dans le poumon (5). Nous explorons actuellement l'utilisation d'instiller 1) fluorescentes redox matériau sensible dans les poumons afin de mesurer le stress oxydatif in vivo d…

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par le NIH K99 HL09222601 et le S & R Fondation Ryaji Uneo Award décerné à MNH.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Isoflurane   Webster Veterinary Sterling , MA 14043-220-05  
Xylazine   Lloyd Laboratories Shenandoah, IA   New Animal Drug Application #139-236
Ketamine   Bioniche Pharma Lake Forest, IL 67457-001-10  
Nair       Available at drug stores
1mL SubQ Syringe   BD Syringe Franklin Lakes, NJ 309597 26 5/8 G
4-0 Nylon Suture   Ethicon San Lorenzo, Puerto Rico 1894G.S30  

Referências

  1. Driscoll, K. E., Costa, D. L., Hatch, G., Henderson, R., Oberdorster, G., Salem, H., Schlesinger, R. B. Intratracheal instillation as an exposure technique for the evaluation of respiratory tract toxicity: uses and limitations. Toxicol Sci. 55, 24-35 (2000).
  2. Helms, M. N., Jain, L., Self, J. L., Eaton, D. C. Redox regulation of epithelial sodium channels examined in alveolar type 1 and 2 cells patch-clamped in lung slice tissue. J Biol Chem. 283, 22875-22883 (2008).
  3. Helms, M. N., Self, J., Bao, H. F., Job, L. C., Jain, L., Eaton, D. C. Dopamine activates amiloride-sensitive sodium channels in alveolar type I cells in lung slice preparations. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 291, L610-L618 (2006).
  4. Iyer, S. S., Ramirez, A. M., Ritzenthaler, J. D., Torres-Gonzalez, E., Roser-Page, S., Mora, A. L., Brigham, K. L., Jones, D. P., Roman, J., Rojas, M. Oxidation of extracellular cysteine/cystine redox state in bleomycin-induced lung fibrosis. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 296, L37-L45 (2009).
  5. Li, T., Folkesson, H. G. RNA interference for alpha-ENaC inhibits rat lung fluid absorption in vivo. Am J Physiol Lung Cell Mol Physiol. 290, L649-L660 (2006).
  6. Sager, T., Porter, D., Robinson, V., Lindsley, W., Schwegler-Berry, D., Castranova, V. An improved method to disperse nanoparticles for in vitro and in vivo investigation of toxicity. Nanotoxicol. 1, 118-129 (2007).
  7. Xu, J., Gonzalez, E. T., Iyer, S. S., Mac, V., Mora, A. L., Sutliff, R. L., Reed, A., Brigham, K. L., Kelly, P., Rojas, M. Use of senescence-accelerated mouse model in bleomycin-induced lung injury suggests that bone marrow-derived cells can alter the outcome of lung injury in aged mice. J Gerontol A Biol Sci Med Sci. 64, 731-739 (2009).
  8. Yeh, T. F., Lin, H. C., Chang, C. H., Wu, T. S., Su, B. H., Li, T. C., Pyati, S., Tsai, C. H. Early intratracheal instillation of budesonide using surfactant as a vehicle to prevent chronic lung disease in preterm infants: a pilot study. Pediatrics. 121, e1310-e1318 (2008).
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Citar este artigo
Helms, M. N., Torres-Gonzalez, E., Goodson, P., Rojas, M. Direct Tracheal Instillation of Solutes into Mouse Lung. J. Vis. Exp. (42), e1941, doi:10.3791/1941 (2010).

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