Summary

Cultures de cellules primaires à partir Drosophile Embryons Gastrula

Published: February 28, 2011
doi:

Summary

Nous fournissons un protocole détaillé pour la préparation de cellules primaires dissociées de<em> Drosophil</em> Un embryon. La capacité à mener à bien la perturbation effective ARNi, avec d'autres méthodes d'imagerie moléculaire, biochimique et cellulaire permettra une variété de questions qui seront abordées dans les<em> Drosophile</em> Cellules primaires.

Abstract

Nous décrivons ici une méthode de préparation et de la culture de cellules primaires dissociées à partir d'embryons de drosophile gastrula. En bref, une grande quantité d'embryons mis en scène des mouches jeunes et sains sont collectées, stérilisée, puis physiquement dissocié en une suspension cellulaire unique à l'aide d'un homogénéiseur de verre. Après avoir été plaqué sur des plaques de culture ou des diapositives de chambre à une densité appropriée dans le milieu de culture, ces cellules peuvent se différencier en d'autres de plusieurs types de cellules morphologiquement distinctes et qui peuvent être identifiés par leurs marqueurs cellulaires spécifiques. Par ailleurs, nous présentons les conditions pour le traitement de ces cellules avec double brin (ds) ARN pour susciter inactivation génique. Efficace ARNi dans les cellules de drosophile primaire est accomplie par la simple baignant les cellules dans un milieu de culture contenant ARNdb. La capacité de mener efficacement une perturbation ARNi, avec d'autres moléculaire, analyses biochimiques, d'imagerie cellulaire, permettra une variété de questions à répondre dans les cellules de drosophile primaire, en particulier ceux liés à la musculaires différenciées et des cellules neuronales.

Protocol

1. Préparation des cages volée Cultivez la drosophile (souches sauvages tels que l'Oregon-R ou tout autre génotype) dans des contenants pratiques tels que des tasses d'insectes 32-oz Transfert mouches nouvellement eclosed à de grandes cages d'embryon de collecte ou de voler des cages de la population. Déplacer les cages dans une pièce avec une température de ~ 25 ° C et une humidité ~ 65% dans une lumière de 12 h et une noire de 12 h du cycle afin de facilite…

Discussion

Le schéma de développement des cultures primaires de cellules de drosophile peut varier considérablement, probablement due à des variables de plusieurs cours du processus de préparation de cellules primaires. Tout d'abord, les mouches utilisées pour la ponte doivent être jeunes (dans une semaine) et saine (exempte d'infection virale ou bactérienne). Embryons non fécondés ou infectés doivent être évités, car ils sont inutiles et des cellules dérivées de ces embryons ne peuvent pas se diff…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

JB a été soutenue par la Damon Runyon Cancer Research Fellowship Foundation DRG-1716-1702. JZ a été soutenu par le NIH / NIGMS Bourse F32 GM082174-02. NP est un enquêteur de l'Institut médical Howard Hughes.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Shields and Sang M3 medium   Sigma S3652  
Fetal bovine serum   JRH Biosciences 12103-500M  
Insulin from bovine pancreas   Sigma I-6634  
Large embryo collection cages   Genesee Scientific 59-101  
#25 US standard testing sieve   VWR 57334-454  
#45 US standard testing sieve   VWR 57334-462  
#120 US standard testing sieve   VWR 57334-474  
Dounce tissue grinder, Wheaton 7 mL   VWR 62400-620  
Dounce tissue grinder,Kontes 40 mL   VWR KT885300-0040  
Dounce tissue grinder,Kontes 40 mL   VWR KT885300-0100  
Costar, 384-well plate   VWR 29444-078  
Lab-Tek II Chambered coverglass   Fisher Scientific 171080  

Referências

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  2. Bai, J., Hartwig, J. H., Perrimon, N. S. A. L. S. a WH2-domain-containing protein, promotes sarcomeric actin filament elongation from pointed ends during Drosophila muscle growth. Dev. Cell. 13, 828-842 (2007).
  3. Bai, J. RNA interference screening in Drosophila primary cells for genes involved in muscle assembly and maintenance . Development. 135, 1439-1449 (2008).
  4. Sepp, K. J. Identification of neural outgrowth genes using genome-wide RNAi. PloS. Genet. 4, e1000111-e1000111 (2008).
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  7. Bai, J., Sepp, K. J., Perrimon, N. Culture of Drosophila primary cells dissociated from gastrula embryos and their use in RNAi screening. Nature Protocols. 4, 1502-1512 (2009).
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Citar este artigo
Perrimon, N., Zirin, J., Bai, J. Primary Cell Cultures from Drosophila Gastrula Embryos. J. Vis. Exp. (48), e2215, doi:10.3791/2215 (2011).

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