Grampo patch e Técnicas de Perfusão para estudar canais iônicos Expresso em Xenopus Oócitos
Summary
Corrente iônica de canais BK é gravado usando técnicas de patch clamp. Canais BK são expressos em<em> Oócitos Xenopus</em> Através da injeção de RNA mensageiro. A solução intracelular durante gravações de patch clamp é controlado por um sistema de perfusão.
Abstract
O protocolo aqui apresentado foi concebido para estudar a ativação da condutância grande tensão e Ca 2 +-K + ativados (BK) canais. O protocolo também pode ser usado para estudar a relação estrutura-função de canais iônicos e outros receptores de neurotransmissores 1. Canais BK são amplamente expressos em diferentes tecidos e têm sido implicados em muitas funções fisiológicas, incluindo a regulação da contração do músculo liso, Afinação da frequência de células ciliadas internas e regulação da liberação de neurotransmissores 2-6. BK canais são ativados por despolarização da membrana e por Ca 2 + intracelular e Mg 2 + 6-9. Portanto, o protocolo é projetado para controlar a tensão de membrana ea solução intracelular. Neste protocolo, o RNA mensageiro dos canais BK é injetado dentro de oócitos Xenopus laevis (estágio V-VI), seguido de 2-5 dias de incubação a 18 ° C 10-13. Remendos da membrana que contêm um ou vários canais BK são excisadas com a configuração de dentro para fora usando técnicas de patch-clamp 10-13. O lado intracelular do patch é perfundido com soluções desejadas durante a gravação de modo que a ativação de canais em diferentes condições podem ser examinados. Para resumir, o mRNA de canais BK é injetado dentro de oócitos Xenopus laevis para expressar proteínas canal na membrana do oócito; técnicas de patch clamp são usados para gravar correntes que fluem através dos canais sob tensão controlada e soluções intracelular.
Protocol
Discussion
O sistema de expressão de ovócitos é ideal para a caracterização eletrofisiológica de canais voltagem-dependentes de íons devido ao fundo relativamente baixo de canais endógena. Além disso, uma vez que é um sistema de expressão transitória, ela fornece um método eficiente de realizar estudo de mutagênese destes canais. No entanto, deve-se notar que o sistema de expressão de ovócitos é diferente do que em células de mamíferos, assim, pode haver diferenças na modificação pós-traducional e associaç?…
Declarações
The authors have nothing to disclose.
Acknowledgements
Este trabalho foi financiado pelo National Institutes of Health bolsas R01-R01-HL70393 e NS060706 para JCJC é um professor de engenharia biomédica na T. Spencer Olin Endowment.
Materials
| Material Name | Tipo | Company | Catalogue Number | Comment |
|---|---|---|---|---|
| Nanoject II Auto-Nanoliter Injector | Drummond Scientific Company | 3-000-204 | ||
| P-97 Flaming/Brown Micropipette Puller | Sutter Instruments | P-97 | ||
| Perfusion System and Electronic Controller | AutoMate Scientific, Inc. | ValveLink 16 | Inner diameter of perfusion tip: 100 microns | |
| Inverted Microscope | Olympus | CKX31 | ||
| Glass Pipettes | VWR International | 53432-921 | ||
| Flaming/Brown Micropipette Puller | Sutter Instrument Co. | P-97 | ||
| Amplifier | Axon Instruments | AXOPATCH 200B | ||
| Computer Interface | INSTRUTECH Corporation | ITC-18 | ||
| Headstage | Axon Instruments | CV 203BU |
Referências
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