Summary

Анализ плюрипотентных стволовых клеток с помощью Cryosections из эмбриоидные тела

Published: December 08, 2010
doi:

Summary

Плюрипотентных стволовых клеток, растущих в виде суспензии дифференцироваться в эмбриоидных тел (ЭТ). Здесь показано, как получить высокое качество EB cryosections полезны для изучения клеточных и молекулярных аспектов эмбриогенеза, сохраняя при этом свою организацию как агрегаты.

Abstract

Эмбриональных стволовых (ЭС) клеток плюрипотентные клетки, полученные из внутренней клеточной массы бластоцисты ранней стадии эмбрионов млекопитающих 1. Важный этап в дифференцировку ЭС клеток образование эмбриоидные тела (ЭТ) агрегатов 2, 3. Е. Б. Формирование на основе спонтанной агрегации, когда ES клетки культивируют в не сторонник пластин. Трехмерная резюмирует Е. Б. многие аспекты раннего эмбриогенеза млекопитающих и дифференцироваться в трех зародышевых листков: эктодермы, мезодермы и энтодермы 4.

Иммунофлуоресценции и гибридизация широко используются методы выявления целевых белков и РНК присутствуют в клетках тканей раздел 5, 6, 7. Здесь мы приведем простой метод для получения высоких cryosections качество эмбриоидных органов. Этот подход опирается на пространственную ориентацию EB вложения в октябре следуют cryosection техники. В результате разделов может быть подвергнут широкий спектр аналитических процедур для характеристики популяции клеток, содержащих определенные белки, РНК или ДНК. В этом смысле подготовка EB cryosections (10 мкм) являются необходимыми инструментами для анализа окрашивания гистологии (например, гематоксилином и эозином, DAPI), иммунофлюоресценции (например Oct4, нестин) или на месте гибридизации. Эта техника также может помочь понять аспекты эмбриогенеза в отношении поддержания три-мерной сферической структуры ЭТ.

Protocol

1. Фиксация и Криоконсервация Плюрипотентные стволовые клетки культивировали на эмбриональных фибробластов мыши (MEF) инактивированные митомицином С и поддерживается в DMEM/F12 дополнена с 20% нокаут сыворотке замены (КСР) и 8ng / мл фактора роста фибробластов (FGF-2). Для того, чтоб…

Discussion

Описанный здесь метод обеспечивает простой в последующей протокол для получения PFA фиксированных тонких срезов криостат эмбриоидные тела полезно для иммунофлуоресценции и на месте гибридизации. В результате cryosections позволяют изучать клеточные и молекулярные аспекты человеческ?…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Эта работа была поддержана Fundação де Ампаро Pesquisa сделать Estado-ду-Риу-де-Жанейро (FAPERJ), Conselho Насьональ де Desenvolvimento Científico электронной Tecnológico (CNPq) и Национальным институтом Ciencia электронной Tecnologia (INCTC). Мы благодарны Бруно С. Паулсен и Алине Фернандес М. Б. для изображений.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
D (+) Sucrose Reagent Vetec 228  
Paraformaldehyde Reagent Rieden-de Haën 16005  
PBS solution Reagent LGC Biotecnology 13-30259.05  
Poly-L-lysine hydrobromide Reagent Sigma P2636 200mg/mL in water
Tissue-Tek O.C.T. Compound Reagent Sakura P2636  
Sucrose Solution Reagent     10% Sucrose Solution in PBS w/v
Sucrose Solution Reagent     20% Sucrose Solution in PBS w/v
Sucrose Solution Reagent     30% Sucrose Solution in PBS w/v
Conic Tube Tool TPP 91015 15mL conic tube
Plate shaker Tool Biomixer    
Cryostat Tool Leica CM 1850  
Mold for OCT platform Tool     Plastic mold plataform

Referências

  1. Thomson, J. A., Itskovitz-Eldor, J., Shapiro, S. S., Waknitz, M. A., Swiergiel, J. J., Marshall, V. S., Jones, J. M. Embryonic stem cell lines derived from human blastocysts. Science. 282, 1145-117 (1998).
  2. Itskovitz-Eldor, J., Schuldiner, M., Karsenti, D., Eden, A., Yanuka, O., Amit, M., Soreq, H., Benvenisty, N. Differentiation of human embryonic stem cells into embryoid bodies compromising the three embryonic germ layers. Mol Med. 6, 88-95 (2000).
  3. Kurosawa, H. Methods for inducing embryoid body formation: in vitro differentiation system of embryonic stem cells. J Biosci Bioeng. 103, 389-398 (2007).
  4. Conley, B. J., Young, J. C., Trounson, A. O., Mollard, R. Derivation propagation and differentiation of human embryonic stem cells. Int J Biochem Cell Biol. 36, 555-567 (2004).
  5. Moon, I. S., Cho, S. J., Jin, I., Walikonis, R. A simple method for combined fluorescence in situ hybridization and immunocytochemistry. Mol Cells. 24, 76-82 (2007).
  6. Daneshtalab, N., Doré, J. J., Smeda, J. S. Troubleshooting tissue specificity and antibody selection: Procedures in immunohistochemical studies. J Pharmacol Toxicol Methods. 61, 127-135 (2009).
  7. Krenacs, L., Krenacs, T., Stelkovics, E., Raffeld, M. Heat-induced antigen retrieval for immunohistochemical reactions in routinely processed paraffin sections. Methods Mol Biol. , 588-5103 (2010).
  8. Nones, J., Spohr, T. C., Furtado, D. R., Sartore, R. C., Paulsen, B. S., Guimarães, M. Z., Rehen, S. K. Cannabinoids modulate cell survival in embryoid bodies. Cell Biol Int. 12, 399-408 (2010).
  9. Huang, W. M., Gibson, S. J., Facer, P., Gu, J., Polak, J. M. Improved section adhesion for immunocytochemistry using high molecular weight polymers of L-lysine as a slide coating. Histochemistry. 77, 275-279 (1983).
  10. Kuenzi, M. J., Sherwood, O. D. Immunohistochemical localization of specific relaxin-binding cells in thecervix, mammary glands, and nipples of pregnant rats. Endocrinology. 136, 1367-1373 (1995).
check_url/pt/2344?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Gomes, I. C., Acquarone, M., Maciel, R. d. M., Erlich, R. B., Rehen, S. K. Analysis of Pluripotent Stem Cells by using Cryosections of Embryoid Bodies. J. Vis. Exp. (46), e2344, doi:10.3791/2344 (2010).

View Video