Summary

Изолированные сетчатки Подготовка к записи Света Ответ Генетически Маркированный ганглиозных клеток сетчатки

Published: January 26, 2011
doi:

Summary

В данной статье приводится описание того, как анализировать и записывать с изолированной сетчатки препарат в мышь. В частности, мы описываем, как записывать свет ответы от флуоресцентно меченных популяции клеток ганглия, а затем определить и проанализировать его морфологии.

Abstract

Первые шаги в позвоночных видения происходят, когда свет стимулирует палочек и колбочек, фоторецепторы сетчатки 1. Эта информация затем разделены на так называемые ВКЛ и ВЫКЛ путей. Фоторецепторов световой сигнал информацию биполярных клеток (БЦ), который деполяризовать в ответ на повышение (на БЦ) или уменьшается (Off БЦ) в интенсивности света. Это разделение света информация хранится на уровне ганглиозных клеток сетчатки (РГК), которые имеют дендриты стратификации в любом Off sublamina внутреннего слоя плексиформные (IPL), где они получают прямые возбуждающие вклад Off БЦ, или стратификации в На sublamina из IPL, где они получают прямые возбуждающие вклад На БЦ. Это разделение информации относительно увеличения или уменьшения освещения (включение и выключение пути) остается неизменной, а сигнал к мозгу параллельно.

РГК являются выход клетки сетчатки, и, таким образом, важные ячейки для изучения, чтобы понять, как свет информация сигналом для визуальной ядер в мозге. Прогресс в генетике мышей в течение последних десятилетий привели различные флуоресцентные репортер мыши линии, где конкретные РГК населения помечены флуоресцентным белком, чтобы для идентификации подтипов RGC 2 3 4 и таргетинга на электрофизиологические записи. Здесь мы представляем метод регистрации света ответы от флуоресцентно меченных ганглиозных клеток в неприкосновенности, изолированной сетчатки подготовки. Это изолировало сетчатки подготовка позволяет записей с РГК, где дендритных беседки не поврежден и входы на всей РГК беседка дендритных сохраняются. Этот метод применим в различных подтипов ганглиозных клеток и может принять самые разнообразные одноклеточные физиологических методов.

Protocol

Животное использования Соглашение о: Животные были уходом в соответствии с указаниями, приведенными в руководстве по уходу и использованию лабораторных животных, используя протоколы утверждаются Университетом Миннесоты Институциональные уходу и использованию животн?…

Discussion

Этот метод применим к любой ганглиозных клеток сетчатки записи с изолированной сетчатки. Хотя у мышей линии, используемой выше внутренне светочувствительная, меланопсин экспрессирующих РГК помечены 2 EGFP, 5, этот протокол можно легко перенести в другие флуоресцентно меченных РГК …

Acknowledgements

Эта работа была частично поддержана грантами NIH R01EY012949, R21EY018885, T32 EY0707133. Мы благодарим Дарвина повесить за его техническую помощь.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Ames’ Medium   Sigma A1420  
Collagenase   Whorthington Biochemical LS005273  
Hyaluronidase   Whorthington Biochemical LS002592  
Sodium Bicarbonate   Sigma S5761  
AlexaFluor 594 Hydrazyde   Invitrogen A10442  
Neurobiotin   Vector Laboratories SP1120  
Electrodes   Sutter Instruments BF120-69-10  
Forceps   Fine Science Tools 11252-30  
Ophthalmologic Scissor   Fine Science Tools 15000-00  
Streptavidin 594   Invitrogen S32356  
Vectashield   Vector Laboratories H-1000  
Goat Serum   Jackson ImmunoResearch 005-000-001  
Triton X-100   Sigma T8787  
Paraformaldehyde   Electron Microscopy Sciences 19210  

Referências

  1. Wassle, H. Parallel processing in the mammalian retina. Nat Rev Neurosci. 5, 747-757 (2004).
  2. Schmidt, T. M., Taniguchi, K., Kofuji, P. Intrinsic and extrinsic light responses in melanopsin-expressing ganglion cells during mouse development. J Neurophysiol. 100, 371-384 (2008).
  3. Huberman, A. D. Genetic identification of an On-Off direction-selective retinal ganglion cell subtype reveals a layer-specific subcortical map of posterior motion. Neuron. 62, 327-334 (2009).
  4. Siegert, S. Genetic address book for retinal cell types. Nat Neurosci. 12, 1197-1204 (2009).
  5. Schmidt, T. M., Kofuji, P. Functional and morphological differences among intrinsically photosensitive retinal ganglion cells. J Neurosci. 29, 476-482 (2009).
  6. Newman, E. A., Bartosch, R. An eyecup preparation for the rat and mouse. J Neurosci Methods. 93, 169-175 (1999).
  7. Haverkamp, S., Inta, D., Monyer, H., Wassle, H. Expression analysis of green fluorescent protein in retinal neurons of four transgenic mouse lines. Neurociência. 160, 126-139 (2009).
  8. Zhang, D. Q., Zhou, T. R., McMahon, D. G. Functional heterogeneity of retinal dopaminergic neurons underlying their multiple roles in vision. J Neurosci. 27, 692-699 (2007).
  9. Hu, E. H., Dacheux, R. F., Bloomfield, S. A. A flattened retina-eyecup preparation suitable for electrophysiological studies of neurons visualized with trans-scleral infrared illumination. J Neurosci Methods. 103, 209-216 (2000).
  10. Wu, S. M., Gao, F., Pang, J. J. Synaptic circuitry mediating light-evoked signals in dark-adapted mouse retina. Vision Res. 44, 3277-3288 (2004).

Play Video

Citar este artigo
Schmidt, T. M., Kofuji, P. An Isolated Retinal Preparation to Record Light Response from Genetically Labeled Retinal Ganglion Cells. J. Vis. Exp. (47), e2367, doi:10.3791/2367 (2011).

View Video