Summary

Respirometric окислительного фосфорилирования в оценке Saponin-проницаемыми Сердечные волокна

Published: February 28, 2011
doi:

Summary

Saponin-проницаемыми волокна подготовки в сочетании с respirometric окислительного фосфорилирования обеспечивает анализ интегративной оценки митохондриальной функции. Митохондриальная дыхания в физиологических и патологических состояний могут отражать различные регуляторных влияний в том числе митохондриальных взаимодействий, морфологии и биохимии.

Abstract

Исследование функции митохондрий, представляет собой важный параметр сердечной физиологии митохондрий принимают участие в энергетическом обмене, окислительный стресс, апоптоз, старение, митохондриальная encephalomyopathies и токсичности препаратов. Учитывая это, технологий для измерения сердечной функции митохондрий, пользуются спросом. Один из методов, который использует комплексный подход для оценки митохондриальной функции respirometric окислительного фосфорилирования (OXPHOS) анализа.

Принцип оценки respirometric OXPHOS сосредоточена вокруг измерения концентрации кислорода использованием электрода Кларка. Как проницаемыми расслоение потребляет кислород, концентрация кислорода в закрытой камере снижается. Использование выбранный субстрат-ингибитор-разобщающий агент протоколов титрования, электроны предоставляются участки, специально предназначенные электрон-транспортной цепи, позволяющие оценки митохондриальной функции. До respirometric анализ митохондриальной функции, механические и химические методы подготовительных используются для permeabilize сарколеммы мышечных волокон. Химическая пермеабилизации работают сапонин выборочно перфорировать мембраны клетки, сохраняя при этом сотовая архитектура.

Эта статья полностью описывает шаги, связанные с подготовкой сапонин кожей сердечных волокон для измерения потребления кислорода для оценки митохондриальной OXPHOS. Кроме того, устранение неполадок консультации, а также специфических субстратов, ингибиторов и разобщители, которые могут быть использованы для определения функции митохондрий в определенных участков электрон-транспортной цепи предоставляются. Важно отметить, что описанный протокол может быть легко применить к сердечной и скелетной ткани различных моделей животных и человека образцов.

Protocol

1. Подготовка реагентов Релаксации и сохранение решение (RP решения) получают, как описано выше, с незначительными изменениями 1. Короче говоря, решение RP состоит из 2.77mM CAK 2 EGTA, 7.23mM K 2 EGTA, 20 мМ имидазол, 0,5 мм дитиотреитол, 20мм таурин, 50 мМ К-MES, 6,56 MgCl 2, 5.7 мм АТФ, фосф…

Discussion

Сапонин-проницаемыми сердечной техника волокна предлагает уникальный компромисс между в пробирке и в естественных оценки митохондриальной потребления кислорода OXPHOS. Преимущества этого метода включают повышенную физиологическую значимость по сравнению с изолированными м…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Работа выполнена при поддержке Канадского института исследований в области здравоохранения и Геном Канада. JS имеет зарплату поддержки награды от Альберта Heritage Foundation медицинских исследований сердца и инсульта фонда Канады и Канадской Ассоциации Диабета. Лаборатория хотел бы выразить признательность технической помощи инструментов Oroboros при приобретении сапонин-проницаемыми волокна техники.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
100% Ethanol   Fisher Scientific HC600  
70% Ethanol   Fisher Scientific HC-1000  
Adenosine 5′-diphosphate monopotassium salt dihydrate (ADP)   Sigma A5285  
Albumin from bovine serum essentially fatty acid–free   Sigma A-6003  
Antimycin A   Sigma A8674  
Ascobic acid   Sigma A4403  
Adenosine 5′-triphosphate disodium salt hydrate (ATP)   Sigma A2383  
Atractyloside   Sigma A6882  
Calcium carbonate   Sigma C4830  
Carbonyl cyanide p-(trifluoromethoxy) phenylhydrazone (FCCP)   Sigma C2920  
Cytochrome c   Sigma C7752  
Digitonin   Sigma D141  
Dithiothreitol   Sigma D9779  
Ethylene glycol-bis-(2-aminoethylether)-N,N,N′,N′-tetraacetic acid (EGTA)   Sigma E4378  
Glutamic acid   Sigma 27647  
HEPES   Sigma H4034  
Imidazole   Sigma I5513  
Ketamine   Pfizer   Ketaset
Lactobionic acid   Sigma 153516  
Magnesium chloride (MgCl2)   Sigma M9272  
Magnesium chloride hexahydrate (MgCl2∙6H2O)   Sigma M9272  
Malic acid   Sigma M1000  
MES   Sigma M3671  
N,N,N’,N’-Tetramethyl- pphenylenediamine Dihydrochloride (TMPD)   Sigma T3134  
Oligomycin   Sigma O4876  
Phosphocreatine   Sigma P7936  
Potassium Chloride   Sigma P9541  
Potassium Hydroxide   Sigma P5958  
Potassium cyanide   Fluka 60178  
Potassium phosphate monobasic   Sigma P5655  
Rotenone   Sigma R8875  
Saponin   Sigma 47036  
Sodium Pentobarbital   Ceva Sante Animale 1715 138 Conc. 54.7 mg/ml
Sodium pyruvate   Sigma P2256  
Succinic acid   Sigma S3674  
Sucrose   Sigma S7903  
Taurine   Sigma T8691  
Xylazine   Bayer   Rompun
ddH2O        
Ice        
Oroboros Oxygraph-2k   Oroboros Instruments    
Kimwipes   VWR 21905-026  
15ml polypropylene centrifuge tubes   VWR 89004-368  
50ml polypropylene centrifuge tubes   VWR 89004-364  
Straight Jewelers Forceps   George Tiemann & Co. 160-50B  
Curved Jewelers Forceps   George Tiemann & Co. 160-57B  
Straight Surgery Scissors   George Tiemann & Co. 105-402  
Sterile Surgical Blade   VWR BD371610  
0.45-μm Syringe filters   VWR CA28145-485  
pH meter   VWR CA11388-308  
Glass Petri dishes   VWR 89000-300  
12-well Polystyrene Tissue Culture Plates   VWR 82050-926  
Plate Stirrer   VWR 97042-594  
Fisherbrand Microbars   Fisher Scientific 14-511-67  
Weigh Scale   VWR CA11278-162  
10μl Hamilton Micro Syringe   Fisher Scientific 14-815-1  
25μl Hamilton Micro Syringe   Fisher Scientific 14-824-7  
50μl Hamilton Micro Syringe   Fisher Scientific 14-824-5  
Nalgene Squeeze Bottles   Wilkem Scientific LNA2407-1000  
Polystyrene Weighing Dishes   VWR 89106-750  
Dissecting Microscope   Olympus    

Referências

  1. Saks, V. A., Veksler, V. I., Kuznetsov, A. V. Permeabilized cell and skinned fiber techniques in studies of mitochondrial function in vivo. Mol Cell Biochem. 184, 81-100 (1998).
  2. Gnaiger, E., Kuznetsov, A. V., Schneeberger, S., Heldmaier, G., Klingenspor, M. Mitochondria in the cold. Life in the Cold. , 431-442 (2000).
  3. Rasmussen, H. N., Rasmussen, U. F. Oxygen solubilities of media used in electrochemical respiration measurements. Anal Biochem. 319, 105-113 (2003).
  4. Visscher, G. D. e., Rooker, S., Jorens, P. Pentobarbital fails to reduce cerebral oxygen consumption early after non-hemorrhagic closed head injury in rats. J Neurotrauma. 22, 793-806 (2005).
  5. Kuznetsov, A. V., Veksler, V., Gellerich, F. N. Analysis of mitochondrial function in situ in permeabilized muscle fibers, tissues and cells. Nat Protoc. 3, 965-976 (2008).
  6. Gnaiger, E. Oxygen conformance of cellular respiration. A perspective of mitochondrial physiology. Adv Exp Med Biol. 543, 39-55 (2003).
  7. Gnaiger, E. Capacity of oxidative phosphorylation in human skeletal muscle: new perspectives of mitochondrial physiology. Int J Biochem Cell Biol. 41, 1837-1845 .
  8. Sena, S., Hu, P., Zhang, D. Impaired insulin signaling accelerates cardiac mitochondrial dysfunction after myocardial infarction. J Mol Cell Cardiol. 46, 910-918 (2009).
  9. Boudina, S., Sena, S., O’Neill, B. T. Reduced mitochondrial oxidative capacity and increased mitochondrial uncoupling impair myocardial energetics in obesity. Circulation. 112, 2686-2695 (2005).
  10. Lenaz, G., Genova, M. L. Structure and organization of mitochondrial respiratory complexes: a new understanding of an old subject. Antioxid Redox Signal. 12, 961-1008 .
  11. Lemieux, H., Hoppel, C. L. Mitochondria in the human heart. J Bioenerg Biomembr. 41, 99-106 (2009).
  12. O, . Retarded diffusion of ADP in cardiomyocytes: possible role of mitochondrial outer membrane and creatine kinase in cellular regulation of oxidative phosphorylation. Biochim Biophys Acta. 1144, 134-148 (1993).
  13. Endo, M., Kitazawa, T., Morad, M. E-C coupling studies in skinned cardiac fibers. Biophysical Aspects of Cardiac Muscle. , 307-327 (1978).
  14. Veksler, V. I., Kuznetsov, A. V., Sharov, V. G. Mitochondrial respiratory parameters in cardiac tissue: a novel method of assessment by using saponin-skinned fibers. Biochim Biophys Acta. 892, 191-196 (1987).
  15. Bangham, A. D., Horne, R. W., Glauert, A. M. Action of saponin on biological cell membranes. Nature. , 196-952 (1962).
  16. Daum, G. Lipids of mitochondria. Biochim Biophys Acta. 822, 1-42 (1985).
  17. Milner, D. J., Mavroidis, M., Weisleder, N. Desmin cytoskeleton linked to muscle mitochondrial distribution and respiratory function. J Cell Biol. 150, 1283-1298 (2000).
  18. Skladal, D., Sperl, W., Schranzhofer, R., Skladal, E., Gellerich, F., Wyss, M. Preservation of mitochondrial functions in human skeletal muscle during storage in high energy preservation solution (HEPS). What is Controlling Life?. , 268-271 (1994).
  19. Kuznetsov, A. V., Wiedemann, F. R., Winkler, K. Use of saponin-permeabilized muscle fibers for the diagnosis of mitochondrial diseases. Biofactors. 7, 221-223 (1998).
  20. Gnaiger, E., Dykens, J., Will, Y. Polarographic oxygen sensors, the oxygraph and high-resolution respirometry to assess mitochondrial function. Drug-Induced Mitochondrial Dysfunction. , 327-352 (2008).

Play Video

Citar este artigo
Hughey, C. C., Hittel, D. S., Johnsen, V. L., Shearer, J. Respirometric Oxidative Phosphorylation Assessment in Saponin-permeabilized Cardiac Fibers. J. Vis. Exp. (48), e2431, doi:10.3791/2431 (2011).

View Video