Summary

RNAi Interferentie door dsRNA Injectie in Drosophila Embryo's

Published: April 11, 2011
doi:

Summary

RNA-interferentie is bewezen zeer effectief te genfunctie te analyseren in<em> Drosophila</em> Tracheale ontwikkeling. Een gedetailleerd protocol dat wordt gebruikt door Jiang lab naar dsRNA injecteren in vliegen embryo's knockdown genexpressie wordt geïllustreerd. Deze techniek heeft het potentieel voor het screenen van genen die nodig zijn voor weefsels en organen ontwikkeling in<em> Drosophila</em>.

Abstract

Genetische screening is een van de meest krachtige methodes beschikbaar zijn voor het verkrijgen van inzicht in complexe biologische proces 1. In de loop der jaren veel verbeteringen en tools voor genetische manipulatie zijn beschikbaar in Drosophila 2. Al snel na de eerste ontdekking door Frie en Mello 3 dat dubbelstrengs RNA kan worden gebruikt om knockdown de activiteit van individuele genen in Caenorhabditis elegans, RNA interferentie (RNAi) is aangetoond dat een krachtige reverse genetische benadering van genfuncties te analyseren in Drosophila orgel ontwikkeling 4, 5.

Veel organen, zoals long-, nier-, lever-en vaatstelsel, zijn samengesteld uit vertakte netwerken die tubulaire transport vitale vloeistoffen of gassen 6, 7. De analyse van Drosophila tracheale vorming biedt een uitstekend model systeem om de morfogenese van andere buisvormige organen acht te bestuderen. De Berkeley Drosophila genoom project heeft geopenbaard honderden genen die worden uitgedrukt in de tracheale systeem. De studie van de moleculaire en cellulaire mechanismen van de buis vorming, de uitdaging is om de rol van deze genen te begrijpen in tracheale ontwikkeling. Hier beschreven we een gedetailleerde methode voor het dsRNA injectie in Drosophila embryo tot knockdown individuele genexpressie. Wij hebben met succes neergehaald endogene dysfusion (dys) genexpressie door dsRNA injectie. Dys is een bHLH-PAS eiwit, uitgedrukt in tracheale fusion-cellen, en het is nodig voor tracheale tak fusion 9, 10. dys-RNAi volledig geëlimineerd dys expressie en resulteerde in tracheale fusie defect. Deze relatief eenvoudige methode is een hulpmiddel om genen nodig voor Uw voor tissure en orgel ontwikkeling in Drosophila te identificeren.

Protocol

1. Embryoteams Stel kooien bij 25 ° C met behulp van 2-4 dagen oud w 1118 flies.Grape sap platen worden elke uur tijdens de dag om het ei collectie te synchroniseren gedurende 1-2 dagen periode voor collectie Verzamelen van embryo's voor 1 uur bij 25 ° C Knip een rechthoekig stuk druivensap agar, licht gesneden in het midden met een scheermesje, laat een lijn in de agar Gebruik een metalen sonde naar embryo transfer van druivensap plaat om jouw stuk druivensap ag…

Discussion

De dsRNA injectiemethode presenteren maakt hier een zeer gevoelige en snelle analyse van gen-functie in Drosophila tracheale ontwikkeling. Deze methode kan mogelijk worden toegepast op genfunctie te analyseren voor de andere weefsels en organen ontwikkeling.

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

De auteurs willen graag Stephen Crews bedanken voor dysfusion cDNA, Dys antilichaam en w 1118 vliegen.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Halocarbon oil 700   Sigma-Aldrich H8898  
Picospritzer III picopump   Parker Precision Fluidics 051-0500-900  
Micro-pipettes   Fisher 21170M  
Microloaders   Eppendorf 930001007  

Referências

  1. St Johnston, D., Nusslein-Volhard, C. The origin of pattern and polarity in the Drosophila embryo. Cell. 68, 201-219 (1992).
  2. Venken, K. J., Bellen, H. J. Emerging technologies for gene manipulation in Drosophila melanogaster. Nat. Rev. Genet. 6, 167-178 (2005).
  3. Fire, A. Potent and specific genetic interference by double-stranded RNA in Caenorhabditis elegans. Nature. 391, 806-811 (1998).
  4. Kennerdell, J. R., Carthew, R. W. Use of dsRNA-mediated genetic interference to demonstrate that frizzled and frizzled 2 act in the wingless pathway. Cell. 95, 1017-1026 (1998).
  5. Misquitta, L., Paterson, B. M. Targeted disruption of gene function in Drosophila by RNA interference (RNA-i): a role for nautilus in embryonic somatic muscle formation. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 96, 1451-1456 (1999).
  6. Horowitz, A., Simons, M. Branching morphogenesis. Circ. Res. 103, 784-795 (2008).
  7. Hogan, B. L., Kolodziej, P. A. Organogenesis: molecular mechanisms of tubulogenesis. Nat. Rev. Genet. 3, 513-523 (2002).
  8. Ghabrial, A., Luschnig, S., Metzstein, M. M., Krasnow, M. A. Branching morphogenesis of the Drosophila tracheal system. Annu. Rev. Cell Dev. Biol. 19, 623-647 (2003).
  9. Jiang, L., Crews, S. T. Dysfusion transcriptional control of Drosophila tracheal migration, adhesion, and fusion. Mol. Cell. Biol. 26, 6547-6556 (2006).
  10. Jiang, L., Crews, S. T. The Drosophila dysfusion basic helix-loop-helix (bHLH)-PAS gene controls tracheal fusion and levels of the trachealess bHLH-PAS protein. Mol. Cell. Biol. 23, 5625-5637 (2003).
check_url/pt/2477?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Iordanou, E., Chandran, R. R., Blackstone, N., Jiang, L. RNAi Interference by dsRNA Injection into Drosophila Embryos. J. Vis. Exp. (50), e2477, doi:10.3791/2477 (2011).

View Video