Summary

Jäst Colony Bädda Metod

Published: March 22, 2011
doi:

Summary

En metod för att bädda jäst kolonier möjliggör snittning för ljus-och elektronmikroskopi. Detta protokoll möjliggör bestämning av fördelningen av sporbildande celler och pseudohyphal celler i kolonierna som ger ett nytt verktyg till att förstå organisationen celltyper i en svamp gemenskap.

Abstract

Mönstring av olika celltyper i embryon är en viktig mekanism i flercelliga utveckling. Samhällen av mikroorganismer, såsom kolonier och biofilm visas också mönster av celltyper. Till exempel i jästen S. cerevisiae, är sporbildande celler och pseudohyphal celler inte jämnt fördelad i kolonier. Den funktionella betydelsen av mönstring och de molekylära mekanismer som ligger bakom dessa mönster är fortfarande dåligt kända.

En utmaning när det gäller att undersöka mönster av celltyper i svampkolonier är att till skillnad flercelliga vävnader, celler i kolonier relativt svagt knutna till varandra. I synnerhet innehåller svampkolonier inte samma omfattande grad av extracellulära matrix finns i de flesta vävnader. Här rapporterar vi om en metod för inbäddning och snittning jäst kolonier som avslöjar det inre mönster av celltyper i dessa kolonier. Metoden kan användas för att förbereda tjocka sektioner (0,5 μ) användbara för ljusmikroskopi och tunna sektioner (0,1 μ) lämplig för transmissionselektronmikroskopi. ASCI och pseudohyphal celler kan lätt skiljas från ovala jästceller med ljusmikroskop, medan den inre strukturen av dessa celler kan visualiseras av EM.

Metoden bygger på omgivande kolonier med agar, infiltrera dem med Spurr medellång och sedan snittning. Kolonier med en diameter i storleksordningen 1-2 mm är lämpliga för detta protokoll. Förutom att visualisera det inre av kolonierna, kan metoden visualisering i regionen av kolonin som invaderar den underliggande agar.

Protocol

1. Colony Isolering och Fixering Inkubera 300 kolonier på agar medium för den angivna tiden (en isolerad koloni bör vara 1-2 mm i diameter). Ta bort koloni (uppåt) och underliggande mediet med en smal spatel. Placera några droppar 2% agar 42 ° C på ett objektsglas med 1 mL pipetman spets och placera omedelbart koloni på agar ansikte upp innan det stelnar. Placera några droppar 2% agar 42 ° C på koloni och låt stelna. Använd handskar för alla steg genom åt…

Discussion

Metoden som presenteras visar det inre strukturer kolonier. Eftersom metoden är effektiv för att bestämma mönster av celltyper i en rad S. cerevisiae stammar med olika koloni morfologier, och även i en besläktad art S. paradoxus 5, är metoden också sannolikt att arbeta på ett brett spektrum av svamp och andra mikroorganismer.

Ett kritiskt steg för att lyckas med metoden är att se till att hela kolonin, bland annat toppen av kolonin, är inkapslad i agar hela pr…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Forskningen har finansierats av NIH 1R15GM094770.

Materials

Material Name Tipo Company Catalogue Number Comment
Osmium tetroxide   Electron Microscopy Sciences RT 19152  
Silicone embedding molds   Fisher Scientific NC 9975029  
Cycloaliphatic epoxide resin   Electron Microscopy Sciences RT 15004 ERL 4221
Epoxy resin   Electron Microscopy Sciences RT 13000 DER 736
Nonenyl Succinic Anhydride   Electron Microscopy Sciences RT 19050 NSA
2-Dimethyl aminoethanol   Electron Microscopy Sciences RT 13300 DMAE
Mounting media   KPL 71-00-16  
Rotating wheel   Ted Pella Pelco 1055  
Microtome   Leica Ultracut S  

Referências

  1. Kimmel, A. R., Firtel, R. A. Breaking symmetries: regulation of Dictyostelium development through chemoattractant and morphogen signal-response. Curr Opin Genet Dev. 14, 540-540 (2004).
  2. Palkova, Z., Vachova, L. Life within a community: benefit to yeast long-term survival. FEMS Microbiol Rev. 30, 806-806 (2006).
  3. Shapiro, J., Vachova, L. The significances of bacterial colony patterns. Bioessays. 17, 597-597 (1995).
  4. Shapiro, J., Vachova, L. Thinking about bacterial populations as multicellular organisms. Annu Rev Microbiol. 52, 81-81 (1998).
  5. Engelberg, D. Multicellular stalk-like structures in Saccharomyces cerevisiae. J Bacteriol. 180, 3992-3992 (1998).
  6. Scherz, R., Shinder, V., Engelberg, D. Anatomical analysis of Saccharomyces cerevisiae stalk-like structures reveals spatial organization and cell specialization. J Bacteriol. 183, 5402-5402 (2001).
  7. Piccirillo, S. The Rim101p/PacC pathway and alkaline pH regulate pattern formation in yeast colonies. Genética. 184, 707-707 (2010).
  8. Sniegowski, P. D., Dombrowski, P. G., Fingerman, E. Saccharomyces cerevisiae and Saccharomyces paradoxus coexist in a natural woodland site in North America and display different levels of reproductive isolation from European conspecifics. FEMS Yeast Res. 1, 299-299 (2002).
  9. Piccirillo, S., Honigberg, S. M. Sporulation patterning and invasive growth in wild and domesticated yeast colonies. Res Microbiol. 161, 390-390 (2002).
  10. Vachova, L. Architecture of developing multicellular yeast colony: spatio-temporal expression of Ato1p ammonium exporter. Environ Microbiol. , (2009).
check_url/pt/2510?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Piccirillo, S., Honigberg, S. M. Yeast Colony Embedding Method. J. Vis. Exp. (49), e2510, doi:10.3791/2510 (2011).

View Video