Abbildung 1. Schaltplan für SESI-MS-Analyse der bakteriellen volatiles. Der Kopfraum der Bakterienkultur wird durch CO 2 (1) in die SESI Reaktionskammer (2) verdrängt. Da die flüchtigen durchqueren die SESI Reaktionskammer sie durch die Elektrospray Wolke und ionisiert (3). Einmal ionisiert werden die flüchtigen Bestandteile in das Massenspektrometer für die Analyse (4) gezogen. Überschüssiges Trägergas und umgesetzten bakterielle flüchtigen Stoffe werden durch einen 0,22 um-Filter (5) weitergeleitet, wie ein zusätzliches Maß an Schutz und entlüftet werden, um eine chemische Kapuze. Kleines Bild: Die SESI Elektrospray Nadel ist eine Silica-Kapillare (40 um ID) mit einem geschärften Nadelspitze. Zur Demonstration des Einsatzes von SESI-MS zur Charakterisierung von bakteriellen volatiles, E. coli K12 und P. aeruginosa PAO1 sind aerob für 24 h in 50 mL LB-Lennox bei 37 ° C und die SESI-MS-Spektren der Kopfraum flüchtigen Stoffe werden in 2 Minuten gesammelt. Kohlendioxid (99,99%) bei einer Flussrate von 2 L / min wird als Trägergas für flüchtige Auslieferung an die Reaktionskammer verwendet. Die SESI Reaktionskammer wurde speziell gebaut und ausgestattet, um eine API-3000 (SCIEX) als Ersatz für die ursprüngliche Elektrospray-Ionenquelle. Die Spektren sind in Positiv-Ionen-Modus mit 0,1% Ameisensäure, 5,0% Methanol und 94,9% Wasser (v / v) als Elektrospray-Lösung gesammelt, geliefert mit 5 nl / s durch eine nicht leitende Silica-Kapillare mit einem geschärften Nadelspitze (40 um ID). Die angelegte Spannung beträgt 2,5 kV. – 500 Da, MCA-Modus, 40-Scans, 3 s / Scan-und 2 min Gesamtanalyse Zeit 20: Analyst 1.4.2 Software (Applied Biosystems) ist für die Datenerfassung mit den folgenden Parametern verwendet. 1. Anzucht-System Wählen Sie die passende Gefäß für das Wachstum Ihres Kulturen, wenn man bedenkt das Wachstum Anforderungen der Arten in Ihrem Experiment (z. B. Belüftung, Licht, Temperatur, etc.), sowie die effiziente Bereitstellung von flüchtigen dem Massenspektrometer. Die Kultur Flaschen, die wir wählen, zu verwenden sind Standard 100 mL Pyrex Medien-Flaschen mit Schraub-, dass mindestens zwei Luer-Ports ausgestattet. Eine Zuleitung wird durch einen Luer-Anschluss für Trägergas Lieferung an der Probeflasche und eine Ableitung durch einen anderen Anschluss für VOC Lieferung an das Instrument (Abbildung 1) eingesetzt ist. Jede zusätzliche Ports angeschlossen sind. Vor Kultivierung der Proben, unter Druck die Gefäße und in Wasser tauchen, um auf Dichtigkeit prüfen. Gaslecks sind eine Hauptursache für atypische Ergebnisse in Form von schwach oder nicht vorhanden flüchtigen Ionen-Signale. 2. Biologische Experimente: set-up-und Sicherheitsüberlegungen Steigern Sie Ihre Kulturen in den geeigneten Bedingungen, um Ihre Hypothese. Es wird empfohlen, mindestens zwei biologische, Wiederholungen mit jeweils zwei technischen Replikaten, sind für jede Variable verwendet. Bereiten Sie eine leere für jede Kultur Zustand (mittel, Antibiotika, etc.) und inkubieren Sie die leere unter den gleichen Bedingungen wie Ihre Proben. Beschäftigen Sicherheitsvorkehrungen, die für die biologische Arbeitsstoffe Sie verwenden werden, unter Berücksichtigung der biologischen Sicherheit (s) der Arten. Um zu verhindern Kontamination von Ihrem Instrument und das Gas Transferstraßen mit lebensfähigen biologischen Agenzien, installieren Filter der entsprechenden Porengröße in den Träger Gasleitung. Die Filter werden nicht mit der Übertragung von flüchtigen, die SESI Reaktionskammer stören, können aber etwas Einfluss auf die Effizienz der Aerosol-Übertragung. 6 Verwenden Sie Auffangbecken oder Biosicherheitswerkbank beim Anbringen des Gases Übertragungskappe Ihre Kultur Flasche auf die richtige Containment im Falle von Verschütten biologischen Arbeitsstoffen zu gewährleisten. Einleitung und Beendigung von Trägergasstrom Ihre Probeflasche in einer Weise, die nicht bauen steigt der Druck in der Flasche. 3. Instrument Optimierung HINWEIS: SESI-MS speziell auf Probe flüchtigen ausgelegt, so schränken die Verwendung von duftenden Körperpflegeprodukten (zB Kölnisch Wasser, Mundwasser, Lotionen, Weichspüler), Gummi, Zigaretten, etc. vor Gebrauch des Instruments. Fest verschließen alle flüchtigen Chemikalien im Labor, und die Kontrolle Zugluft so weit wie möglich während der Prüfung. Die folgende instrumentelle Parameter, die alle betreffen Signalintensität und Stabilität, müssen Sie für Ihr Instrument und Experiment optimiert werden. Elektrospray-Lösung und Durchfluss: Wählen Sie die passende Elektrospray Lösung für die Klasse von Molekülen gewünschten Ziel, unter Berücksichtigung der operativen Instrument Polarität (positiv oder negativ-Ionen-Modus) und molekularen Charakter der Zielverbindungen. In diesem Versuch wurde die Elektrospray-Lösung 0,1% Ameisensäure, 5,0% Methanol, 94,9% Wasser (v / v), der das Signal Intensität von weniger polaren Molekülen erhöht while eine gute Stabilität des Signals. Die Lösung ist bei einer Flussrate von 5 nl / s. geliefert Gasstrom: Der Gasstrom kann die Elektrospray Stabilität und die Signalintensität beeinflussen. CO 2 (≥ 99,99%) bei einer Flussrate von 2 l / min zum Einsatz. Needle Form und Funktion: Die Nadelspitze Form und Position stark auf die Signalintensität und Stabilität. Bei der Installation einer neuen Nadel, muss die Position der Nadel optimiert, um eine Balance zwischen geringem Hintergrund, hohe Analyt-Signal Intensität und Stabilität des Signals zu erzeugen. Um SESI Spektren nach einer Nadel ändern zu reproduzieren, ist es notwendig, in regelmäßigen Abständen zu sammeln Spektren, wie Sie die Nadel zu verstellen, bis Sie in der Lage, das beobachtete Spektrum, um Ihre Daten passen. Die Entfernung von Elektrospray Nadelspitze Massenspektrometrie Öffnung wird 1 – 5 mm. Angelegte Spannung: Die Spannung, die auf das System angewendet wird, betrifft das Signal Ionenintensität und die Stabilität der Elektrospray Taylor Kegel. Darüber hinaus ist die optimale Spannung abhängig von Ihrem Elektrospray-Lösung und die Nadelspitze zu gestalten. Zu Beginn Ihrer Reihe von Experimenten, bestimmen Sie die Spannung, die die optimale Bandbreite und Stabilität des Signals ergibt sich für Ihr System und verwenden Sie dann diese Spannung für alle nachfolgenden Experimente. Für unser System angelegten Spannungen von 2,0 – 5,0 kV bieten optimale Signalstärke und Elektrospray Stabilität. Für dieses Experiment 2,5 kV verwendet wird. 4. Einschalten und Einstellen des SESI-MS für die Analyse Beginnen Sie, indem sichergestellt wird, dass die Spannungsversorgung ausgeschaltet ist und dass das System der Elektrizität entladen. Tun Sie dies, indem 1) die Gewährleistung der Anzeige leuchtet die Spannungsversorgung abgeschaltet, 2) die Gewährleistung der Spannung auf dem Multimeter Null ist, und 3) die Erdung der elektrischen Leitungen. Installieren Sie die entsprechende Elektrospray-Lösung für Ihr Experiment. Schalten Sie das Trägergas und stellen Sie den Strom, um die Rate für Ihr Experiment. Druck auf die Elektrospray Reservoir zur Lieferung der Elektrospray-Lösung in die Reaktionskammer zu initiieren. Schalten Sie die Spannungsversorgung und die Spannung auf einen entsprechenden Wert für Ihre Experimente. HINWEIS: An dieser Stelle der Metalloberflächen der Ionisierungsquelle der Lage sind, liefern eine gefährliche Schock. Seien Sie äußerst vorsichtig bei der Arbeit rund um das Instrument, wenn die Spannungsversorgung eingeschaltet worden ist. Richten Sie ein Tuning-Verfahren zur Überwachung der SESI-MS-Spektrum während Sie fein abgestimmte Anpassungen der angelegten Spannung. Verwenden Sie die Aufnahme-Parameter, die Sie für Ihr System und Ihre Experiment optimiert. Deaktivieren Sie das Multiple Channel Acquisition (MCA) Kontrollkästchen (falls zutreffend), so dass jeder Scan eine unabhängige Spektrum erzeugt, stellen Sie die Aufnahmezeit auf 10 bis 15 min, und starten Sie die Übernahme. Spectra des Trägergases Hintergrund sollte nun beobachtet werden. Machen Feinabstimmung Anpassungen der angelegten Spannung zu einer stabilen Gesamtrendite (TIC) und reproduzierbare Scans, dass die CO 2-Scans für Ihre früheren Experimenten überein zu erhalten. Sobald die Spannung Anpassungen vorgenommen wurden, weiterhin Spektren und TIC für fünf Minuten, um sicherzustellen, das Instrument stabilisiert zu sammeln. Sobald instrumental Stabilität gewährleistet ist, bis der Erwerbsmethode entsprechend Ihrer Proben gesetzt, die Anpassung der Messzeit, Datenbereich und MCA Auswahl nach Bedarf. Sammeln Sie ein Trägergas Hintergrund Spektrum für Ihre Unterlagen. 5. Die Erteilung einer flüchtigen Fingerabdruck Ihrer Bakterienkultur Zum Sammeln ein leeres Spektrum, direkt das Trägergas durchströmt den Bypass-Leitungen, und fügen Sie die Blindprobe (Ventile geschlossen), um das Gas Transferstraßen des Instruments. Öffnen Sie die Ventile, um die Probe-Flasche, und schließen Sie die Ventile der Bypass-Leitungen. Lassen Sie das System für 30 Sekunden ausgleichen, während welcher Zeit die Feuchtigkeit in der Reaktionskammer stabilisiert. Diese Zeit der Äquilibrierung ist unerlässlich für den Erhalt von reproduzierbaren Spektren. Um sicherzustellen, dass das System äquilibriert ist, möchten Sie vielleicht die TIC, die während der Aquilibrierungsperiode Änderung überwachen und stabilisieren danach. Sobald das System äquilibriert, initiieren Spektrum Sammlung. Nach dem Spektrum gesammelt, entfernen Sie die Probeflasche von dem ersten Öffnen des Trägergases Bypass-Leitungen, dann schließt die Probe Ventile, und schließlich der Entnahme der Probe Flasche. Spülen Sie das System mit dem Trägergas für 2 bis 4 min, das Entfernen der Feuchtigkeit und adsorbierten flüchtigen Stoffen aus dem Transferstraßen, Verhinderung von Probe zu Probe Verschleppung. Wiederholen Sie die Schritte 5,2 bis 5,5 für jede bakterielle Probe intermittierend Erfassung zusätzlicher Leerspektren einer gründlichen blank Subtraktion zu gewährleisten. Unvollständige blank Subtraktion wird die FührungAussehen der chemischen Hintergrund Gipfel in Ihre verarbeitet Spektrum, die für Atmosphärendruck-Ionisation Techniken (z. B. Phthalate, Silikone, etc.). 9 Bei der Erhebung Ihrer Spektren, sicherzustellen, dass die Ionen-Signale werden nicht mehr als die lineare Nachweisgrenzen des Instruments, wie die TIC und die maximale Intensität der einzelnen Peaks ermitteln. Ionen Überschreiten des oberen Grenzen Ihres Instruments Detektor erzeugen kann Artefakt Peaks, die nicht repräsentativ sind Ihrer Probe. 6. Repräsentative Ergebnisse Als ein Beispiel für die SESI-MS-Spektren, die für bakterielle volatiles, die positive Ionen-Modus flüchtigen Fingerabdrücke für E. erhältlich coli und P. aeruginosa aerob in LB-Lennox für 24 h gezüchtet bei 37 ° C angezeigt (Abb. 2). Die E. coli flüchtigen Spektrum von Indol bei m / z = 118 dominiert, gibt die E. coli Kulturen ihre charakteristischen Geruch, während das Spektrum von P. aeruginosa enthält eine größere Vielfalt an protonierbare Gipfel. Bitte beachten Sie, dass die relativen Intensitäten der Peaks in den flüchtigen Spektrum abhängig von der instrumentalen Parameter in Abschnitt 3 beschrieben werden. Diese Parameter müssen dicht von Experiment zu Experiment kontrolliert werden, um reproduzierbare Spektren zu erhalten. Abbildung 2 Blank-subtrahiert positive Ionen-Modus SESI-MS-Spektren (20 bis 150 m / z). E. coli K12 und P. aeruginosa PAO1 volatiles nach 24 h aeroben Wachstumsbedingungen in LB-Lennox bei 37 ° C. Für weitere Informationen über die Gipfel in der SESI Spektren entnehmen Sie bitte Zhu et al. 8.