Summary

Criblage à haut débit activité endoglucanase fongique dans les Escherichia coli</em

Published: August 13, 2011
doi:

Summary

Nous décrivons un faible coût, la méthode à haut débit pour le dépistage de l'activité endoglucanase fongiques<em> E. coli.</em> La méthode repose sur une lecture visuelle simple de la dégradation de substrat, ne nécessite pas de purification de l'enzyme, et est très extensible. Cela permet pour le dépistage rapide des grandes bibliothèques de variants enzymatiques.

Abstract

Cellulase enzymes (endoglucanases, cellobiohydrolases, et β-glucosidases) cellulose en sucres hydrolyser composante, qui à leur tour peuvent être convertis en une alcools carburants. Le potentiel d'hydrolyse enzymatique de la biomasse cellulosique pour fournir l'énergie renouvelable a intensifié ses efforts pour concevoir des cellulases pour 2 à combustible de production économique. D'intérêt particulier sont les cellulases fongiques 3-8, qui sont déjà utilisées industriellement pour les aliments et le traitement des textiles.

Identifier les variantes actives parmi une bibliothèque de cellulases mutant est critique pour le processus d'ingénierie; mutants actifs peuvent encore être testés pour des propriétés améliorées et / ou soumis à une mutagenèse supplémentaire. Ingénierie efficace des cellulases fongiques a été entravée par un manque d'outils génétiques pour les organismes indigènes et par des difficultés à exprimer les enzymes dans des hôtes hétérologues. Récemment, Morikawa et collègues a développé une méthode pour exprimer dans E. coli les domaines catalytiques des endoglucanases de H. jecorina 3,9, un champignon industriel important avec la capacité à sécréter de grandes quantités de cellulases. Fonctionnelle E. l'expression coli a aussi été rapportés pour des cellulases à partir d'autres champignons, y compris Macrophomina phaseolina 10 et Phanerochaete chrysosporium 11-12.

Nous présentons une méthode de criblage à haut débit de l'activité endoglucanase fongiques dans E. coli. (Fig 1) Cette méthode utilise la commune microbienne colorant rouge Congo (RC) pour visualiser la dégradation enzymatique de la carboxyméthylcellulose (CMC) par les cellules en croissance sur milieu solide. Le dosage de l'activité nécessite des réactifs peu coûteux, une manipulation minimale, et donne des résultats sans ambiguïté que les zones de dégradation («halos») sur le site de la colonie. Même si une mesure quantitative de l'activité enzymatique ne peut être déterminé par cette méthode, nous avons constaté que la taille de halo est corrélée avec l'activité enzymatique totale dans la cellule. Une caractérisation plus poussée des différents clones positifs déterminera, fitness relative des protéines.

Bactériens traditionnels dosages toute l'activité des cellules MCC / CR 13 impliquent versant CMC sur gélose contenant des colonies, qui est soumis à la contamination croisée, ou des cultures en incubation dans les puits d'agar CMC, qui se prête moins à grande échelle d'expérimentation. Nous rapportons ici un protocole amélioré qui modifie les méthodes de lavage existants 14 pour l'activité cellulase: cellules cultivées sur gélose CMC sont retirés avant la coloration CR. Notre protocole réduit considérablement la contamination croisée et est hautement évolutive, permettant le dépistage rapide de milliers de clones. En plus de H. enzymes jecorina, nous avons exprimé et projeté variantes endoglucanase de la aurantiacus Thermoascus et Penicillium decumbens (figure 2), ce qui suggère que ce protocole est applicable à partir d'enzymes une gamme d'organismes.

Protocol

1. La préparation des plaques de dépistage Ajouter 25g de milieu de croissance LB, l'agar 15g, et 1.5g carboxyméthylcellulose (CMC) substrat à l'eau distillée 1L, et autoclave pour stériliser. Après autoclavage, permettra à moyen et à refroidir et ajouter des antibiotiques appropriés, et IPTG à une concentration finale de 100 microns. Verser 200 ml chacun en moyenne cinq grandes boîtes de Pétri carrées / plateaux bioessai (240 x 240 x 20mm ou plus). Laisser sécher co…

Discussion

Le protocole décrit ici permet l'identification rapide et de haute débit d'enzymes actives, avec une manipulation minimale. Détection d'activité est assez sensible, et reflète qualitativement la quantité d'activité au sein de la cellule. Sa facilité d'utilisation rend cette méthode convient à un large éventail de bibliothèques enzyme, seulement limité par l'expression fonctionnelle dans E. coli. Par ailleurs, le dépistage de ce type d'activité n'est pas limitée au…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été financé par la Gordon and Betty Moore Foundation, et par l'Initiative UNCF / Merck sciences.

Materials

Reagent Company Product number
IPTG Sigma I1284
Congo Red Sigma C6277
Carboxymethyl Cellulose Sigma 360384
NaCl Sigma S1679
Bacto-agar BD Biosciences 214030
Bioassay plates Thermo Scientific 240845

Referências

  1. Atsumi, S., Hanai, T., Liao, J. C. Non-fermentative pathways for synthesis of branched-chain higher alcohols as biofuels. Nature. 451, 86-89 (2008).
  2. Wilson, D. B. Cellulases and biofuels. Curr Opin Biotechnol. 20, 295-299 (2009).
  3. Qin, Y. Engineering endoglucanase II from Trichoderma reesei to improve the catalytic efficiency at a higher pH optimum. J Biotechnol. 135, 190-195 (2008).
  4. Nakazawa, H. Directed evolution of endoglucanase III (Cel12A) from Trichoderma reesei. Appl Microbiol Biotechnol. 83, 649-657 (2009).
  5. Heinzelman, P. A family of thermostable fungal cellulases created by structure-guided recombination. Proc Natl Acad Sci. 106, 5610-5615 (2009).
  6. Heinzelman, P. SCHEMA recombination of a fungal cellulase uncovers a single mutation that contributes markedly to stability. J Biol Chem. 284, 26229-26233 (2009).
  7. Lantz, S. E. Hypocrea jecorina CEL6A protein engineering. Biotechnol Biofuels. 8, 3-20 (2010).
  8. Mahadevan, S. A. Site-directed mutagenesis and CBM engineering of Cel5A (Thermotoga maritima). FEMS Microbiol Lett. 287, 205-211 (2008).
  9. Nakazawa, H. Characterization of the catalytic domains of Trichoderma reesei endoglucanase I, II, and III, expressed in Escherichia coli. Appl Microbiol Biotechnol. 81, 681-689 (2008).
  10. Wang, H., Jones, R. W. Properties of the Macrophomina phaseolina endoglucanase (EGL 1) gene product in bacterial and yeast expression systems. Appl Biochem Biotechnol. 81, 153-160 (1999).
  11. Howard, R. L. Enzyme activity of a Phanerochaete chrysosporium cellobiohydrolase (CBHI.1) expressed as a heterologous protein from Escherichia coli. Afr J Biotechnol. 2, 296-300 (2003).
  12. Howard, . Characterisation of a chimeric Phanerochaete chrysosporium cellobiohydrolase expressed from Escherichia coli. Afr J Biotechnol. 3, 349-352 (2004).
  13. Teather, R. M., Wood, P. J. Use of Congo red-polysaccharide interactions in enumeration and characterization of cellulolytic bacteria from the bovine rumen. Appl Env Microbiol. 43, 777-780 (1982).
  14. Gilkes, N. R. Mode of action and substrate specificities of cellulases from cloned bacterial genes. J Bio Chem. 259, 10455-10459 (1984).
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Citar este artigo
Farrow, M. F., Arnold, F. H. High Throughput Screening of Fungal Endoglucanase Activity in Escherichia coli. J. Vis. Exp. (54), e2942, doi:10.3791/2942 (2011).

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