Summary

ניבוי של שימוש בנגיף HIV-1 Coreceptor (זיקה) על ידי ניתוח רצף באמצעות גישת genotypic

Published: December 01, 2011
doi:

Summary

החיזוי של שימוש coreceptor של HIV-1 נדרש לניהול קבוצה חדשה של תרופות תרופתיות, יריבי coreceptor כלומר. זה יכול להתבצע על ידי ניתוח רצף<em> Env</em> גן ופרשנות לאחר מכן באמצעות מערכת פרשנות מבוססת אינטרנט (geno2pheno<sub> [Coreceptor]</sub>).

Abstract

Maraviroc (MVC) היא התרופה התרופתית המורשה הראשונה מהכיתה של יריבי coreceptor. הוא נקשר למארח coreceptor CCR5, המשמש את רוב זני HIV כדי להדביק את התאים החיסוניים האנושיים (1 איור). בידודי HIV אחרים משתמשים coreceptor שונה, CXCR4. שהקולטן משמש, נקבע בווירוס על ידי חלבון Env (איור 2). בהתאם coreceptor שימוש, הווירוסים מסווגים כR5 או X4, בהתאמה. MVC נקשר לקולטן CCR5 עיכוב כנסתם של וירוסי R5 לתא המטרה. במהלך המחלה, וירוסי X4 עשויים להתגלות ומתגברים על וירוסי R5. קביעת שימוש coreceptor (המכונה גם זיקה) היא אפוא חובה לפני מתן של MVC, כפי שדרש EMA וה-FDA.

הלימודים ליעילות MVC להניע, כשרון ו1029 בוצעו עם assay Trofile מMonogram, סן פרנסיסקו, ארה"ב זה assay איכות גבוהה המבוססים על sophiבדיקות רקומביננטי sticated. הקבלה לבדיקה זו לשגרת היומיום היא נמוכה למדי מחוץ לארה"ב, שכן רופאים באירופה ולא נוטים לעבוד עם מעבדות מומחים מבוזרות, אשר גם מספקות בדיקות עמידות הנגזרת ממנו. מעבדות אלו עברו כמה הערכות אבטחת איכות, אחרון שהוצגו ב2011 1.

כבר כמה שנים, יש לנו בצענו קביעות כמיהות מבוססות על ניתוח רצף מאזור HIV env-V3 הגן (V3) 2. אזור זה נושא מספיק מידע כדי לבצע חיזוי אמין. נחישות genotypic שימוש coreceptor מציגה יתרונות כגון: זמן קצר מחזור (שווה ערך לבדיקת התנגדות), עלויות נמוכות יותר, אפשרות להתאים את התוצאות לצרכיהם של המטופלים ואפשרות של ניתוח דגימות קליניות עם עומס נגיפי נמוך מאוד או אפילו גילוי (VL ), במיוחד מאז מספר הדגימות נותחו עם VL <1000 עותקים / μlגדל בערך בשנים האחרונות (3 איור).

השלבים העיקריים לבדיקת זיקה (איור 4) הוכיחו בסרט הזה:

1. אוסף של דגימת דם
2. בידודו של הנגיף RNA מפלזמה וה-DNA proviral HIV / או מתאי הדם mononuclear
3. הגברה של אזור env
4. הגברה של אזור V3
5. תגובת רצף של amplicon V3
6. טיהור של דגימות הרצף
7. סידור את הדגימות המטוהרות
8. עריכת רצף
9. סידור נתונים לפרשנות וחיזוי כמיהות

Protocol

הפרוטוקול מסוכם באיור. 4. 1. איסוף דגימות דם איסוף דם מ"ל לפחות 3 בצינורות EDTA באתר הקליני. הדוגמות ניתן לאחסן עד שבוע ב 4 ° C. שלח את דגימות דם EDTA-ההקדם האפשרי למעבדה בדואר רגיל. 2. בידודו של נגיף RNA ו / או DNA השג רנ"א הנגיפי ו / או דנ"א מדם כל 1000 μl, סרום או פלזמה, שימוש בבידוד Magna הטהור הקומפקטי חומצות הגרעין שערכה אני ומערכת הקומפקטית הטהורה Magna. Elute רנ"א או דנ"א זכה בחיץ TE 50 μl. לחלופין, תהליכי טיהור אחרות גרעין חומצות עשויים לשמש. 3. הגברה של אזור env Amplify אזור env (איורים 2 ו 4) משתי הפלזמה RNA או DNA proviral. 1245 מוצר BP-ארוך, הכולל את רוב חלבון Env (NT 6556-7811 accordinגרמתי לHXB2) שנוצר. דגימות RNA: תגובת RT-PCR רנ"א הנגיפי מציג מבנה משני מורכב מאוד (איור 4) שעשוי לעכב את תגובת RT. כדי להימנע מבעיה זו, דגירת 10 RNA μl על 65 מעלות צלזיוס למשך 10 דקות (כבר בצינור PCR ובמכונת PCR) ולאחר מכן מוריד את הטמפרטורה ל 50 מעלות צלזיוס הוסף 40 μl של מיקס מאסטר כולל PCR primers Env-F וEnv-R. מיקס מאסטר לRT-PCR בבית, מערכת: נפח / תגובה (μl) ריכוז סופי RNase ללא H 2 O 14.4 מאגר 5x (Qiagen OneStep RT-PCR קיט) 10 1x 5x Q-פתרון 10 1x dNTP מיקס (10 מ"מ כל אחת) <td> 2 400 מיקרומטר של כל dNTP Enzym-Mix (Qiagen OneStep RT-PCR קיט) 2 פריימר Env-F (100 מיקרומטר) 0.3 0.6 מיקרומטר פריימר Env-R (100 מיקרומטר) 0.3 0.6 מיקרומטר RNase אינהיביטור (RNasin) 1 5 יחידות / תגובה Env-F: -3 5'-CAAAGCCTAAAGCCATGTGTAAA "(6556 nt → 6586 פי HXB2) Env-R: -3 5'-AGTGCTTCCTGCTGCTCCTAAGAACCC '(NT 7785 ← 7811) הפעל את תגובת RT ב 50 מעלות צלזיוס למשך 30 דקות. הפעל את ה-PCR 1 כדלקמן: 95 מעלות צלזיוס, 15 דקות X 1 95 מעלות צלזיוס, 30 שניות 50 מעלות צלזיוס, 30 שניות 72 מעלות צלזיוס, 2 דקות </tד> X 1 95 מעלות צלזיוס, 30 שניות 56 ° C, 30 שניות 72 מעלות צלזיוס, 2 דקות 38 x 72 ° C, 10 דקות 4 מעלות צלזיוס ∞ דגימות DNA: תגובת PCR לדגימות DNA proviral, שום תגובת RT ראשונית דרושה, ותגובת PCR ישירות יכולה להתחיל. הוסף 40 μl של מיקס מאסטר PCR עד 10 μl של DNA provial. מאסטר מיקס לPCR בבית, מערכת: נפח / תגובה (μl) ריכוז סופי RNase ללא H 2 O 15.4 מאגר 5x (DNA פולימראז HotStarTaq) 10 1x 5x Q-פתרון 10 1x dNTP מיקס (10 מ"מ כל אחת) 2 400 מיקרומטר של כל dNTP Enzym-Mix (DNA פולימראז HotStarTaq) 2 פריימר Env-F (100 מיקרומטר) 0.3 0.6 מיקרומטר פריימר Env-R (100 מיקרומטר) 0.3 0.6 מיקרומטר Env-F: -3 5'-CAAAGCCTAAAGCCATGTGTAAA "(6556 nt → 6586) Env-R: -3 5'-AGTGCTTCCTGCTGCTCCTAAGAACCC '(NT 7785 ← 7811) הפעל את תנאי PCR כפי שתואר לעיל עבור דגימות RNA (שלב 3.1.4). 4. הגברה של אזור V3: PCR המקונן לPCR המקונן, השתמש 5 μl מתגובת PCR הראשונה (ללא ניתוח קודם בagarose ג'ל) כתבנית ולהוסיף 95 μl של מאס PCRמערבב ter. מיקס מאסטר ל- בית המקונן בPCR נפח / תגובה (μl) ריכוז סופי H 2 O 61.9 מאגר PCR 10x 10 1x 5x Q-פתרון 20 1x dNTP מיקס (10 מ"מ כל אחת) 2 200 מיקרומטר של כל dNTP פריימר Env-2F (100 מיקרומטר) 0.3 0.6 מיקרומטר פריימר Env-2R (100 מיקרומטר) 0.3 0.6 מיקרומטר פולימראז ה-DNA HotStarTaq 0.5 2,5 יחידות / תגובה Env-2F: -3 5'-GTCCAAAGGTATCCTTTGAGCCAATTC "(6838 nt → 6864) <strong>-2R Env: -3 5'-CACCACTCTTCTCTTTGCCTTGGTGGGTGC '(NT 7712 ← 7742) הפעל את ה-PCR כדלקמן: 93 ° C, 15 דקות X 1 95 מעלות צלזיוס, 30 שניות 50 מעלות צלזיוס, 30 שניות 72 מעלות צלזיוס, 90 שניות X 1 95 מעלות צלזיוס, 30 שניות 56 ° C, 30 שניות 72 מעלות צלזיוס, 90 שניות 43 x 72 ° C, 10 דקות 4 מעלות צלזיוס ∞ לנתח את מוצר PCR ב% agarose ג'ל 1 (איור 4). המוצר הצפוי הוא 902 נ"ב ארוכים. טיהור של דגימות רצף. לטהר את מוצר PCR עם ערכת Qiagen PCR-הטיהור, באמצעות פרוטוקול, פתרונות ועמודות מייקרו סופק על ידי הספק. Elute במאגר PE 30-100 μl, תלוי בעוצמת להקה. לחלופין, הדגימות יכולות להיות מטוהרות באמצעות exonucleaseאני והמהיר AP (Thermo אלקליין phosphatase). לצורך כך, להוסיף 6 מיקס μl Exo-AP למוצר ה-PCR 15 μl ודגירה 15 דקות בשעת 37 ° C. 580 μl H 2 O 66 μl AP המהיר 13.4 Exo μl אני 5. תגובת רצף של amplicon V3 תגובת הרצף מורכב מתגובת PCR רק באמצעות אחד מפריימרים הבאים: Env-2: -3 5'-GTACAATGYACACATGGAATTAGGC (NT 6959 → 6980) Env-5: 5'-AAAATTCCCCTCCACAATTA – 3 '(NT 7352 ← 7371) Env-6: 5'-GGCCAGTAGTATCAACTCAAC – 3 '(6979 nt → 7000) Env-7: 5'-TGTCCACTGATGGGAGGGGC – 3 '(NT 7530 ← 7549) Env-10: 5 '- GCAGAATAAAACAAATTATAAACATGTGGC – 3' (NT 7478 ← 7507) Env-11: 5 '- TACATTGCTTTTCCTACTTTCTGCCAC – 3' (NT 7638 ← 7664) פריימרים בחירה ראשונים הם: Env-2, Env-6 או Env-7, Env-11 השתמש μl 1 מ amplicon V3 המטוהר כתבנית ולהוסיף 9 μl של אדון תערובת PCR. סידור מיקס מאסטר: 4 תמהיל הרצף μl (HIV-genotyping קיט) 4 μl H 2 O 1 פריימר μl (100 pmol / μl) הפעל את תגובת הרצף כדלקמן: 96 מעלות צלזיוס, 10 שניות 50 מעלות צלזיוס, 10 שניות 36 x 60 ° C, 45 שניות 4 מעלות צלזיוס ∞ 6. טיהור של דגימות הרצף לטהר רצפים USIng Sephadex G-50 עדינים במיוחד. מלא את המספר המתאים של בארות ב" מטעין העמודה "עם G-50 superfine Sephadex. העברת Sephadex לMAHVN4510 צלחת הסינון לפי מתהפך. הוסף 300 מילים-Q H 2 O μl לכל באר בצלחת המסנן, ומדגיר אותו ל3h לפחות 2-8 מעלות צלזיוס צנטריפוגה הצלחות עבור 5 דקות ב910Xg ו4-15 ° C. השלך את הזרימה דרך. הוסף 10 μl H 2 O למוצר ולאחר מכן רצף pipet הרצף על צלחת Sephadex התנפחה. כדי לקבל את המוצר המטוהר, סרכזת הצלחת למשך 5 דקות. ב910Xg ו4-15 מעלות צלזיוס ולאסוף זרימה דרך. 7. סידור את הדגימות המטוהרות ברצף ABI פריזמה 3130 XL לפני כל ריצה, לשנות את החיץ ובדוק את עוצמת הקול של הפולימר (POP7). במידת צורך, להחליף את בקבוק הפולימר הישן באחד חדש. השתמש בתנאים לרוץ נשמרו, כולל זמן הזרקה של 18 שניות. במכונה הזאת, האוסף של נתוני האותות של ריצה אחת עם 16 דגימות רצף לוקח בערך 60 דקות (36 סנטימטרי נימים) או 150 דקות (50 סנטימטרי נימים). 8. עריכת רצף השתמש בתכנית Lasergene (DNA-Star) כדי ליישר ולערוך את הרצפים (איור 5). תוכניות עריכת רצף אחרות עשויות להיות בשימוש. השתמש "B-V3 הסכמה" ורצף קונסנסוס env כהפניות. Lasergene יוצר רצף קונסנסוס של המדגם נתח משתמש בכל נתוני הגלם זמין ולאחסן אותו כקובץ FASTA. קובץ FASTA הוא קובץ טקסט הכולל את כותרת עם השם של המדגם ורצף נוקליאוטידים. 9. סידור נתונים לפרשנות וחיזוי כמיהות סידור פרשנות נתונים מתבצע על ידי מערכת הפרשנות מבוססת האינטרנט geno2pheno [coreceptor] (http://coreceptor.bioinf.mpi-inf.mpg.de/index.php). לניבוי הכמיהות, הגדרות FPR שונות ניתן לבחור. הגדרת ברירת המחדל היא על פי הנחיות הטיפול הגרמני האוסטריות. לFPR ≥ 20%, הנגיף מסווג כR5 כאשר FPR ≥ 20% וX4 לFPR <12.5%. העלה את הקובץ לשרת FASTA. שרת זה מתרגם את רצף נוקליאוטידים לחומצות אמינו, מיישר אותו ברצף ב-V3 הקונצנזוס ומייצר תת סיווג. בנוסף, הוא מייצר ניבוי של שימוש coreceptor (איור 4) מבוטא בשיעור חיובי כוזב (FPR). 10. נציג תוצאות Geno2pheno [coreceptor] הפלט מציג פרשנות מדורגת של הכמיהות. בהתאם לסבירות של שימוש coreceptor, טקסט הפרשנות וצבע רקע משתנים מירוק (<FPR זה.

Discussion

רצף V3 מאפשר חיזוי כמיהות ויראלי אמין, כפי שמוצג במחקרים קליניים 3-9. למעשה, נחישות genotypic ששוקלת בהנחיות הנוכחיות באירופה ובגרמניה אוסטריות 10.

בהשוואה לבדיקה הפנוטיפית, לא רק הוא הזמן הקצר המחזור (שווה ערך לבדיקת התנגדות), אבל גם הם העלויות. בנוסף, יתרון גדול של בדיקת genotypic הוא כי התוצאות מדורגות כFPR ולכן ניתן להתאימו לצרכימים של המטופלים. תוצאות Trofile, לעומת זאת, הן פשוט דוחות R5 או X4, וגישה לנתונים הגולמיים אינה נתונה.

נכון לעכשיו, את ההנחיות האירופיות ממליצות FPR החתוך של 20% 10, בעוד שההנחיות אוסטריות הגרמניות תאפשרנה התאמת FPR חתוך במיוחד לצרכימים של כל מטופל 11. בקו הזה, לחולים עם מגוון רחב של אפשרויות תרופות תרופתיות, FPR הגבוה לחתוך-offs (> 20%) הם recommהסתיים. לעומת זאת, לכבדות חולים שטופלו מראש עם אפשרויות טיפוליות מוגבלות, FPR הנמוך לחתוך-offs (> 5%) עשויים לשמש. סוג זה של הדרכת טיפול נמשך כיום על ידי ההתנגדות לבדיקת NRTI, NNRTIs, חוקרים פרטיים, וINIS, שם ניתן לכלול תרופות באופן חלקי פעילות-בטיפול בחולים עם אפשרויות טיפוליות מופחתות. בנוסף, עם מספר גדל והולך של שינויי הטיפול genotypically מודרכים-, קליני רלוונטי FPR לחתוך-offs כל זמן להיות מותאם על ידי פנל של bioinformaticians, ירולוגים ורופאים.

יתרון חשוב נוסף של בדיקת זיקת genotypic הוא האפשרות של ניתוח דגימות קליניות עם עומס נגיפי נמוך מאוד או אפילו גילוי (VL). במקרים אלה, כאשר הפלזמה RNA הוא לא amplifiable, DNA proviral יכול להיות רצף ומשמש לתחזיות אמינות 9,12. מן ראוי לציין כי מספר החולים עם עומס נגיפי נמוך או בלתי ניתן לגילוי גדל בצורה חדה בשנים האחרונות. נכון להיום, ה-Trofile assay מאפשר ניתוח של דגימות רק מחולים עם VL <1000 עותקים / מ"ל. עם זאת, מחקרים ראשוניים הראו כי ה-DNA proviral ניתן גם adecuate להיבדק על ידי Trofile 13.

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

הכותבים ממומנים מקורוס, ערך התא MedSys, השרשרת ופרויקטי Resina.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
MagNA Pure Compact Nucleic Acid Isolation Kit I Roche Diagnostics 04 802 993 001  
MagNA Pure Compact System Roche Diagnostics 03731146001  
T3000 Thermocycler Biometra 050-723  
One Step RT-PCR Kit Qiagen 210215  
HotStarTaq Master Mix Kit Qiagen 203445  
QIAquick PCR Purification Kit Qiagen 28106  
Exonuclease I (Exo I) Fermentas EN0582  
FastAP Thermosensitive Alkaline Phosphatase Fermentas EF0651  
BigDye Terminator v3.1 Cycle Sequencing Kit Applied Biosystems 4337457  
Sephadex G-50 Superfine GE Healthcare 17-0041-01  
ABI Prism 3130 XL capillary sequencer Applied Biosystems 3130XL  

Referências

  1. Heger, E., Schuelter, E., Klimkait, T., Lengauer, T., Kaiser, R., Walter, H., Sierra, S. European coreceptor proficiency panel test. , (2011).
  2. Lengauer, T., Sander, O., Sierra, S., Thielen, T., Kaiser, R. Bioinformatic prediction of HIV coreceptor usage. Nature Biotech. 25 (12), 1407-1410 (2007).
  3. McGovern, R., Dong, W., Zhong, X., Knapp, D., Thielen, A., Chapman, D., Lewis, M., James, I., Valdez, H., Harrigan, P. R. Population-based Sequencing of the V3-loop Is Comparable to the Enhanced Sensitivity Trofile Assay in Predicting Virologic Response to Maraviroc of Treatment-na ve Patients in the MERIT Trial. , (2010).
  4. Reuter, S., Braken, P., Jensen, B., Sierra-Aragon, S., Oette, M., Balduin, M., Kaiser, R., Haussinger, D. Maraviroc in treatment-experienced patients with HIV-1 infection – experience from routine clinical practice. Eur. J. Med. Res. 15 (6), 231-237 (2010).
  5. Recordon-Pinson, P., Soulie, C., Flandre, P., Descamps, D., Lazrek, M., Charpentier, C., Montes, B., Trabaud, M. A., Cottalorda, J., Schneider, V., Morand-Joubert, L., Tamalet, C., Desbois, D., Mace, M., Ferre, V., Vabret, A., Ruffault, A., Pallier, C., Raymond, S., Izopet, J., Reynes, J., Marcelin, A. G., Masquelier, B. Evaluation of the genotypic prediction of HIV-1 coreceptor use versus a phenotypic assay and correlation with the virological response to maraviroc: the ANRS GenoTropism study. Antimicrob. Agents. Chemother. 54 (8), 3335-3340 (2010).
  6. Swenson, L. C., Knapp, D., Harrigan, P. R. Calibration and accuracy of the geno2pheno co-receptor algorithm for predicting HIV tropism for single and triplicate measurements of V3 genotype. , (2010).
  7. Macartney, M. J., Cameron, J., Strang, A., García, A., Booth, C., Marshall, N., Johnson, M., Geretti, A. M. Use of a genotypic assay for the prediction of HIV-1 coreceptor tropism and guiding the use of CCR5 antagonists in clinical practice. , (2010).
  8. Sierra, S., Thielen, A., Reuter, S., Jensen, B., Esser, S., Fätkenheuer, G., Lengauer, T., Pfister, H., Sichtig, N., Kaiser, R. Tropism determination and clinical outcome of 61 patients under MVC treatment. , (2010).
  9. Obermeier, M., Carganico, A., Bieniek, B., Schleehauf, D., Dupke, S., Fischer, K., Freiwald, M., Neifer, S., Schuler, C., Mayr, C., Klausen, G., Köppe, S., üünsche, T., Berg, T., Baumgarten, A. Tropism testing from proviral DNA – analysis of a subgroup from the Berlin Maraviroc cohort. , (2010).
  10. Vandekerckhove, L. P., Wensing, A. M., Kaiser, R., Brun-Vezinet, F., Clotet, B., De Luca, A., Dressler, S., Garcia, F., Geretti, A. M., Klimkait, T., Korn, K., Masquelier, B. European guidelines on the clinical management of HIV-1 tropism testing. Lancet Infect Dis. 11 (5), 394-407 (2011).
  11. Walter, H., Eberle, J., Möller, H., Noah, C., Wolf, E., St rmer, M., Braun, P., Krn, K., D umer, M., Berg, T., Obermeier, M., Thielen, A., Kaiser, R. Empfehlung zur Bestimmung des HIV-1-Korezeptor-Gebrauchs (DAIG Recommendations for the HIV-1 tropism testing). , (2011).
  12. Obermeier, M. J., Carganico, A., Dupke, S., Schranz, D., Cordes, C., Freiwald, M., Klausen, G., Köppe, S., Schuler, C., Mayr, C., Schleehauf, D., Berg, T., Krznaric, I., Baumgarten, A. Clinical application of genotypic co-receptor tropism testing from viral RNA and proviral DNA: week 24 analysis of the Berlin maraviroc cohort. Journal of the International AIDS Society. 13, 129-129 (2010).
  13. Toma, J., Frantzell, A., Hoh, R., Martin, J., Deeks, S., Petropoulos, C., Huang, W. Determining HIV-1 Co-receptor Tropism Using PBMC Proviral DNA Derived from Aviremic Blood Samples. , (2010).
check_url/pt/3264?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Sierra, S., Kaiser, R., Lübke, N., Thielen, A., Schuelter, E., Heger, E., Däumer, M., Reuter, S., Esser, S., Fätkenheuer, G., Pfister, H., Oette, M., Lengauer, T. Prediction of HIV-1 Coreceptor Usage (Tropism) by Sequence Analysis using a Genotypic Approach. J. Vis. Exp. (58), e3264, doi:10.3791/3264 (2011).

View Video