Summary

Direkte påvisning af acetat-dannende aktivitet af enzymet Acetat Kinase

Published: December 19, 2011
doi:

Summary

En metode til bestemmelse af acetat kinase aktivitet er beskrevet. Denne analyse anvender en direkte reaktion til bestemmelse af enzymaktivitet og kinetik af acetat kinase i acetat-dannende retning med forskellige phosphoryl receptorer. Desuden kan metoden anvendes til analysering andre acetyl fosfat eller acetyl-CoA udnytte enzymer.

Abstract

Acetat kinase, et medlem af acetat og sukker kinase-HSP70-actin (ASKHA) enzym superfamily 1-5, er ansvarlig for reversibel phosphorylering af acetat til acetyl fosfat udnytte ATP som substrat. Acetat kinaser er allestedsnærværende i de bakterier, der findes i en slægt af Archaea, og er også til stede i mikrober af Eukarya 6. Den mest velkarakteriserede acetat kinase er, at fra den metan-producerende archaeon Methanosarcina thermophila 7-14. En acetat kinase, der kun kan udnytte PP I, men ikke ATP i acetyl fosfat-dannende retning har været isoleret fra Entamoeba histolytica, det agens af dysenteri, og har hidtil kun fundet i denne slægt 15,16.

I retning af acetyl fosfat dannelse, er acetat kinase aktivitet typisk måles efter den hydroxamate assay, første gang beskrevet af Lipmann17-20, en koblet assay, hvor omdannelsen af ATP til ADP, er koblet til oxidation af NADH til NAD + ved de enzymer pyruvat kinase og laktat dehydrogenase 21,22, eller en assay måler frigivelse af uorganisk fosfat efter reaktion af acetyl fosfat produktet med hydroxylamin 23. Aktiviteten i det modsatte, er acetat-dannende retning, målt ved at koble ATP dannelsen fra ADP til en reduktion af NADP + til NADPH af enzymer hexokinase og glucose 6-phosphat dehydrogenase-24.

Her beskriver vi en metode til påvisning af acetat kinase aktivitet i retning af acetat formation, der ikke kræver kobling enzymer, men er i stedet baseret på direkte bestemmelse af acetyl fosfat forbrug. Efter den enzymatiske reaktion, der er tilbage acetyl fosfat omdannes til en ferri hydroxamate kompleks, der kan måles spektrofotometrisk, som for hydroxamate analysen. Således, i modsætning til standard koblet assay for denne retning, er afhængig af produktionen af ATP fra ADP, kan denne direkte analyse skal bruges til acetat kinaser, der producerer ATP eller PP i.

Protocol

Den overordnede opbygning af denne protokol er skitseret i figur 1. 1. Løsning Forberedelse til Standard Kurver og Analyser Forbered 100 ml af en 2 mol / L opløsning af hydroxylamin-HCl. Der afvejes 13,9 g hydroxylamin hydrochlorid (MW 69,49 g / mol) og opløses i 50 ml destilleret, demineraliseret vand (Hedeselskabet 2 O). Justér pH til 7,0 ved hjælp af kaliumhydroxid piller eller en koncentreret opløsning. Bring den endelige volumen til 100 ml. Løsningen kan opb…

Discussion

Påvisning af acetyl fosfat i denne test er afhængig af en tilstrækkelig koncentration af hydroxylamin hydrochlorid og koncentrationen og surhedsgrad ferrichloridopløsning. Ændring af analysen volumen vil kræve en revurdering af begge disse komponenter. Den enzymatiske reaktioner beskrevet her blev udført ved 37 ° C med hydroxylamin opsigelse udføres ved 60 ° C i 5 minutter. Denne højere temperatur er afgørende for at muliggøre en hurtig konvertering af de resterende acetyl fosfat til acetyl hydroxamate. Tim…

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Dette arbejde blev støttet af NSF pris # 0920274 og South Carolina Experiment Station Project (SC-1700340) til KSS. Dette papir er teknisk bidrag nr. 5929 af Clemson University Experiment Station.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments
Acetyl phosphate Sigma Aldrich 01409 Lithium Salt (97% )
Sodium phosphate monobasic (dehydrate) ThermoFisher S381  
Sodium phosphate dibasic (anhydrous) ThermoFisher S374  
Magnesium chloride (hexahydrate) ThermoFisher M33  
Tris Base ThermoFisher B152  
Ferric chloride (hexahydrate) ThermoFisher I88  
Trichloroacetic acid ThermoFisher A324  
Hydroxylamine hydrochloride ThermoFisher H330  

Adenosine 5’-diphosphate

sodium salt
Sigma Aldrich A2754  
Biomate III Spectrophotometer ThermoFisher 142982082 Standard UV/Vis spectrophotometer

Referências

  1. Bork, P., Sander, C., Valencia, A. An ATPase domain common to prokaryotic cell cycle proteins, sugar kinases, actin, and hsp70 heat shock proteins. Proc. Natl. Acad. Sci. U. S. A. 89, 7290-7294 (1992).
  2. Bork, P., Sander, C., Valencia, A. Convergent evolution of similar enzymatic function on different protein folds: the hexokinase, ribokinase, and galactokinase families of sugar kinases. Protein Sci. 2, 31-40 (1993).
  3. Buss, K. A. Urkinase: structure of acetate kinase, a member of the ASKHA superfamily of phosphotransferases. J. Bacteriol. 183, 680-686 (2001).
  4. Hurley, J. H. The sugar kinase/heat shock protein 70/actin superfamily: implications of conserved structure for mechanism. Annu. Rev. Biophys. Biomol. Struct. 25, 137-162 (1996).
  5. Holmes, K. C., Sander, C., Valencia, A. A new ATP-binding fold in actin, hexokinase and Hsc70. Trends. Cell. Biol. 3, 53-59 (1993).
  6. Ingram-Smith, C., Martin, S. R., Smith, K. S. Acetate kinase: not just a bacterial enzyme. Trends. Microbiol. 14, 249-253 (2006).
  7. Aceti, D. J., Ferry, J. G. Purification and characterization of acetate kinase from acetate-grown Methanosarcina thermophila. Evidence for regulation of synthesis. J. Biol. Chem. 263, 15444-15448 (1988).
  8. Latimer, M. T., Ferry, J. G. Cloning, sequence analysis, and hyperexpression of the genes encoding phosphotransacetylase and acetate kinase from Methanosarcina thermophila. J. Bacteriol. 175, 6822-6829 (1993).
  9. Ingram-Smith, C., Barber, R. D., Ferry, J. G. The role of histidines in the acetate kinase from Methanosarcina thermophila. J. Biol. Chem. 275, 33765-33770 (2000).
  10. Miles, R. D., Iyer, P. P., Ferry, J. G. Site-directed mutational analysis of active site residues in the acetate kinase from Methanosarcina thermophila. J. Biol. Chem. 276, 45059-45064 (2001).
  11. Miles, R. D., Gorrell, A., Ferry, J. G. Evidence for a transition state analog, MgADP-aluminum fluoride-acetate, in acetate kinase from Methanosarcina thermophila. J. Biol. Chem. 277, 22547-22552 (2002).
  12. Ingram-Smith, C. Characterization of the acetate binding pocket in the Methanosarcina thermophila acetate kinase. J. Bacteriol. 187, 2386-2394 (2005).
  13. Gorrell, A., Lawrence, S. H., Ferry, J. G. Structural and kinetic analyses of arginine residues in the active site of the acetate kinase from Methanosarcina thermophila. J. Biol. Chem. 280, 10731-10742 (2005).
  14. Gorrell, A., Ferry, J. G. Investigation of the Methanosarcina thermophila acetate kinase mechanism by fluorescence quenching. Bioquímica. 46, 14170-14176 (2007).
  15. Reeves, R. E., Guthrie, J. D. Acetate kinase (pyrophosphate). A fourth pyrophosphate-dependent kinase from Entamoeba histolytica. Biochem. Biophys. Res. Commun. 66, 1389-1395 (1975).
  16. Fowler, M. L. Kinetic and structural characterization of the novel PPi-dependent acetate kinase from the parasite Entamoeba histolytica. , (2011).
  17. Lipmann, F. Enzymatic synthesis of acetyl phosphate. J. Biol. Chem. 155, 55-70 (1944).
  18. Lipmann, F., Tuttle, L. C. A specific micromethod for determination of acyl phosphates. J. Biol. Chem. 159, 21-28 (1945).
  19. Lipmann, F., Jones, M. E., Black, S., Flynn, R. M. The mechanism of the ATP-CoA-acetate reaction. J. Cell. Physiol. Suppl. 41, 109-112 (1953).
  20. Rose, I. A., Grunberg-Manago, M., Korey, S. F., Ochoa, S. Enzymatic phosphorylation of acetate. J. Biol. Chem. 211, 737-756 (1954).
  21. Allen, S. H., Kellermeyer, R. W., Stjernholm, R. L., Wood, H. G. Purification and properties of enzymes involved in the proponic acid fermentation. Journal of Bacteriology. 87, 171-187 (1964).
  22. Clarke, P. M., Payton, M. A. An enzymatic assay for acetate in spent bacterial culture supernatants. Anal. Biochem. 130, 402-405 (1983).
  23. Mukhopadhyay, S., Hasson, M. S., Sanders, D. A. A continuous assay of acetate kinase activity: measurement of inorganic phosphate release generated by hydroxylaminolysis of acetyl phosphate. Bioorg. Chem. 36, 65-69 (2008).
  24. Nakajima, H., Suzuki, K., Imahori, K. Purification and properties of acetate kinase from Bacillus stearothermophilus. J. Biochem. 84, 193-203 (1978).
check_url/pt/3474?article_type=t

Play Video

Citar este artigo
Fowler, M. L., Ingram-Smith, C. J., Smith, K. S. Direct Detection of the Acetate-forming Activity of the Enzyme Acetate Kinase. J. Vis. Exp. (58), e3474, doi:10.3791/3474 (2011).

View Video