Summary

Étiquetage cellules souches avec Ferumoxytol, une nanoparticule approuvé par la FDA d'oxyde de fer

Published: November 04, 2011
doi:

Summary

Nous décrivons une technique d'étiquetage et de suivi avec des cellules souches approuvé par la FDA, le fer superparamagnétiques d'oxyde (SPIO), ferumoxytol (Feraheme). Cette technique d'imagerie cellulaire qui utilise par résonance magnétique (IRM) pour la visualisation, est facilement accessible pour surveillance à long terme et le diagnostic de succès ou non engraftments cellules souches chez les patients.

Abstract

Thérapies basées sur les cellules souches offrent un potentiel important pour le domaine de la médecine régénérative. Cependant, il reste beaucoup à comprendre sur la cinétique in vivo des cellules transplantées. Une méthode non-invasive pour surveiller de façon répétitive des cellules souches transplantées in vivo permettrait aux enquêteurs de contrôler directement les greffes de cellules souches et de déterminer les résultats greffe réussie ou non.

Une large gamme de cellules souches continue à être étudiée pour des applications innombrables. Ce protocole se concentre sur trois différentes populations de cellules souches: embryonnaires de rein humain 293 (HEK293) les cellules, cellules souches mésenchymateuses humaines (hMSC) et souches pluripotentes induites (iPS). Cellules HEK 293 sont issus de cellules rénales embryonnaires humaines mises en culture par l'adénovirus 5 ADN cisaillé. Ces cellules sont largement utilisés dans la recherche parce qu'ils sont faciles à cultiver, se développent rapidement et sont facilement transfectées. hMSCs sont trouvées dans la moelle adulte. Ces cellules can être reproduits comme des cellules indifférenciées, tout en maintenant multipotence ou le potentiel de se différencier en un nombre limité de destins cellulaires. hMSCs peuvent se différencier pour des lignées de tissus mésenchymateux, y compris les ostéoblastes, les adipocytes, chondrocytes, tendons, muscles, et du stroma médullaire. Les cellules iPS sont des cellules adultes reprogrammées génétiquement qui ont été modifiées pour exprimer des gènes et des facteurs semblables à définir les propriétés des cellules souches embryonnaires. Ces cellules sont pluripotentes sens qu'ils ont la capacité de se différencier en tous les lignages cellulaires 1. Les deux hMSCs et les cellules iPS ont démontré la capacité de régénération des tissus in vivo.

Par résonance magnétique (IRM) en collaboration avec l'utilisation de l'oxyde de fer superparamagnétiques (SPIO) étiquettes cellulaire des nanoparticules se sont avérées efficaces dans le suivi in vivo des cellules souches en raison de la résolution anatomique microscopiques proximité, une plus longue demi-vie sanguine qui permet d'imagerie longitudinale et la haute SENSIBILITÉy pour la détection de cellules fournies par l'IRM du SPIO nanoparticules 2-4. En outre, l'IRM avec l'utilisation de SPIOs est cliniquement traduisible. SPIOs sont composées d'un noyau d'oxyde de fer avec une couche de surface de dextrane, carboxydextran ou de l'amidon qui sert à contenir le noyau de fer à partir de composants bioréactifs plasma. Ces agents créent locales inhomogénéités de champ magnétique qui conduisent à une diminution du signal sur les images IRM pondérées en T2 5. Malheureusement, SPIOs ne sont plus fabriqués. La deuxième génération, ultrapetites SPIOs (USPIO), cependant, offrir une alternative viable. Ferumoxytol (FerahemeTM) est l'un USPIO composé d'un noyau de magnétite non stœchiométrique entouré d'une couche carboxymethylether sorbitol polyglucose. Le colloïdale, taille des particules de 17-30 nm ferumoxytol est telle que déterminée par diffraction de la lumière. Le poids moléculaire est de 750 kDa, et la relaxivité champ constant à 2T IRM est 58,609 mm-1 sec-1 de force 4. Ferumoxytol a été récemment approuvé par la FDA unes un supplément de fer pour le traitement de la carence en fer chez les patients atteints d'insuffisance rénale 6. Notre groupe a appliqué cet agent dans un "hors étiquette" usage pour les applications de marquage cellulaire. Notre technique démontre l'étiquetage efficace des cellules souches avec ferumoxytol qui mène à d'importants effets de signal IRM de cellules marquées sur les images IRM. Cette technique peut être appliquée pour les non-invasif de surveillance de thérapies par cellules souches dans les paramètres pré-cliniques et cliniques.

Protocol

1. Jour 1 Cellules de la plaque 1) HMSC plaque dans une fiole T75 à un confluence de 80% au moins 18-24 heures avant l'étiquetage. Se reporter au Tableau 1 pour les instructions pour les navires de remplacement. 2. Jour 2 2) Préparer une solution d'étiquetage. Cette préparation d'étiquettes un (1) flacon T75 à 80% de confluence avec une concentration de 400 pg Fe / ml. Se reporter au Tableau 1 pour les inst…

Discussion

Améliorer l'efficacité des cellules souches engraftments est crucial pour l'avancement de la médecine régénérative. Une technique de visualisation non invasive des cellules souches in vivo améliore de façon significative notre capacité à comprendre les mécanismes qui conduisent à des résultats transplantés avec succès. Étiquetage magnétique pour visualiser MR, telles que la procédure, nous avons démontré, permet de suivre in vivo des cellules souches avec l'IRM….

Declarações

The authors have nothing to disclose.

Acknowledgements

Ce travail a été soutenu par une subvention du National Institute of Arthritis and musculo-squelettiques et les maladies cutanées: 3R01AR054458-02S2.

Materials

Name of the reagent Company Catalogue number Comments (optional)
D-MEM High Glucose Sigma D5648 Or other base medium for desired stem cell line to be used
D-PBS (Ca++, Mg++ free) GIBCO 14190-144  
Trypsin-EDTA 0.05% Invitrogen 25300-120  
Fetal Bovine Serum (FBS) Hyclone SH30071.03  

Ferumoxytol

(Feraheme)

AMAG 59338-0775-01  
Protamine Sulfate APP Pharm. 22930  

Referências

  1. Narsinh, K. H., Plews, J., Wu, J. C. Comparison of human induced pluripotent and embryonic stem cells: fraternal or identical twins?. Mol Ther. 19, 635-638 (2011).
  2. Bulte, J. W. In vivo MRI cell tracking: clinical studies. AJR. Am. J. Roentgenol. 193, 314-325 (2009).
  3. Henning, T. D., Boddington, S., Daldrup-Link, H. E. Labeling hESCs and hMSCs with Iron Oxide Nanoparticles for Non-Invasive in vivo Tracking with MR Imaging. J. Vis. Exp. (13), e685-e685 (2008).
  4. Tallheden, T., Nannmark, U., Lorentzon, M. In vivo MR imaging of magnetically labeled human embryonic stem cells. Life. Sci. 79, 999-1006 (2006).
  5. Jung, C. W., Jacobs, P. Physical and chemical properties of superparamagnetic iron oxide MR contrast agents: ferumoxides, ferumoxtran, ferumoxsil. Magn. Reson. Imaging. 13, 661-674 (1995).
  6. Coyne, D. W. Ferumoxytol for treatment of iron deficiency anemia in patients with chronic kidney disease. Expert. Opin. Pharmacother. 10, 2563-2568 (2009).
  7. Li, Z., Suzuki, Y., Huang, M. Comparison of reporter gene and iron particle labeling for tracking fate of human embryonic stem cells and differentiated endothelial cells in living subjects. Stem Cells. 26, 864-873 (2008).
  8. Metz, S., Bonaterra, G., Rudelius, M. Capacity of human monocytes to phagocytose approved iron oxide MR contrast agents in vitro. Eur. Radiol. 14, 1851-1858 (2004).
  9. Nedopil, A., Klenk, C., Kim, C. MR signal characteristics of viable and apoptotic human mesenchymal stem cells in matrix-associated stem cell implants for treatment of osteoarthritis. Invest. Radiol. 45, 634-640 (2010).
  10. Kraitchman, D. L., Heldman, A. W., Atalar, E. In vivo magnetic resonance imaging of mesenchymal stem cells in myocardial infarction. Circulation. 107, 2290-2293 (2003).
  11. Stuckey, D. J., Carr, C. A., Martin-Rendon, E. Iron particles for noninvasive monitoring of bone marrow stromal cell engraftment into, and isolation of viable engrafted donor cells from, the heart. Stem Cells. 24, 1968-1975 (2006).
  12. Henning, T. D., Sutton, E. J., Kim, A. The influence of ferucarbotran on the chondrogenesis of human mesenchymal stem cells. Contrast. Media. Mol. Imaging. 4, 165-173 (2009).
  13. Arbab, A. S., Yocum, G. T., Kalish, H. Efficient magnetic cell labeling with protamine sulfate complexed to ferumoxides for cellular MRI. Blood. 104, 1217-1223 (2004).
  14. Nedopil, A. J., Mandrussow, L. G., Daldrup-Link, H. E. Implantation of Ferumoxides Labeled Human Mesenchymal Stem Cells in Cartilage Defects. J. Vis. Exp. (38), e1793-e1793 (2010).
  15. Arbab, A. S., Yocum, G. T., Wilson, L. B. Comparison of transfection agents in forming complexes with ferumoxides, cell labeling efficiency, and cellular viability. Mol Imaging. 3, 24-32 (2004).
  16. Babic, M., Horak, D., Trchova, M. Poly(L-lysine)-modified iron oxide nanoparticles for stem cell labeling. Bioconjug Chem. 19, 740-750 (2008).
  17. Golovko, D. M., T, H. e. n. n. i. n. g., Bauer, J. S. Accelerated stem cell labeling with ferucarbotran and protamine. Eur. Radiol. 20, 640-648 (2010).
  18. Lu, M., Cohen, M. H., Rieves, D. FDA report: Ferumoxytol for intravenous iron therapy in adult patients with chronic kidney disease. Am. J. Hematol. 85, 315-319 (2010).
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Citar este artigo
Castaneda, R. T., Khurana, A., Khan, R., Daldrup-Link, H. E. Labeling Stem Cells with Ferumoxytol, an FDA-Approved Iron Oxide Nanoparticle. J. Vis. Exp. (57), e3482, doi:10.3791/3482 (2011).

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